李 巷, 康慧聰, 劉曉艷, 胡 琦, 許 峰, 劉志廣, 朱遂強(qiáng)
華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬同濟(jì)醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,武漢 430030
近年來,腺苷(adenosine)作為內(nèi)源性神經(jīng)調(diào)節(jié)劑受到關(guān)注。研究表明,腺苷不僅有廣泛的腦保護(hù)作用[1],且對正常中樞神經(jīng)元和癇樣放電的神經(jīng)細(xì)胞都有抑制作用[2-3]。腺苷的抑制作用主要表現(xiàn)在影響癲癇發(fā)作后不應(yīng)期,使放電閾值增高;Acsar等[4]報(bào)道其主要是作用于突觸后膜,增大K+電導(dǎo)引起膜超極化。中樞神經(jīng)系統(tǒng)神經(jīng)元細(xì)胞膜上有多種鉀通道,大電導(dǎo)鈣激活性鉀通道(BKCa)在神經(jīng)元胞體、突觸、終末端廣泛表達(dá)。BKCa主要參與動(dòng)作電位復(fù)極化和快速超極化,形成fastAHP(FAHP)。AHP電流參與神經(jīng)元峰電位頻率適應(yīng)過程,影響神經(jīng)元位相型放電和連續(xù)放電,從而調(diào)節(jié)神經(jīng)元興奮性[5]。BKCa開放時(shí)引起K+外流,使神經(jīng)元內(nèi)陽離子降低,促進(jìn)動(dòng)作電位復(fù)極化和超極化的形成,從而使神經(jīng)元的興奮性降低。因此,BKCa通道的開放可能在癲癇發(fā)病機(jī)制中起到保護(hù)作用?;谝陨腺Y料,我們試圖進(jìn)一步研究作為內(nèi)源性抗癲癇物質(zhì)的腺苷,其作用靶點(diǎn)是否在BKCa通道,以及如何影響B(tài)KCa通道變化。
乳鼠(SD 大鼠新生24h之內(nèi)),由華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物學(xué)部提供。DMEM 培養(yǎng)液、F12培養(yǎng)液、胎牛血清(FBS)、胰酶干粉、Neurobasal培養(yǎng)液、B27添加劑,均為Gibco公司產(chǎn)品,4-氨基吡啶(4-AP)、腺苷干粉為Sigma公司產(chǎn)品,其余試劑均為國產(chǎn)分析純。玻璃電極購于南京泉水教學(xué)實(shí)驗(yàn)器材廠,用兩步法拉制。細(xì)胞外液成分(mmol/L):NaCl 144,KCl 6,CaCl2×2H2O 2,MgCl2×6H2O 1.2,HEPES 10,D-Glucose 10,4-AP 5,pH 7.4。電極內(nèi)液成分(mmol/L):K-Glutamine 110,KCl 20,Na2ATP 3,EGTA 0.1,MgCl2×6H2O 3,HEPES 10,D-Glucose 10,pH 7.35。
SD 大鼠為24h內(nèi)的新生乳鼠,取海馬后在4℃PBS平衡液中清除血管。用眼科剪將組織剪碎后在0.125%胰酶37℃消化15min,然后用含有10%FBS的DMEM 培養(yǎng)液終止消化5 min。用尖端拋光的巴氏管吹打20下,200目篩網(wǎng)過濾后,濾液800 r/min離心4min,棄去上清。用DMEM-F12培養(yǎng)液混勻細(xì)胞沉淀成細(xì)胞懸液,種植于包被過的35 mm 培養(yǎng)皿中。24h 后用Neurobasal-B27 培養(yǎng)液全換液,以后每3d半換液,培養(yǎng)6~8d的細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。用MAPⅡ鑒別神經(jīng)元表面標(biāo)志。
在倒置顯微鏡下選擇形態(tài)典型的神經(jīng)元用于實(shí)驗(yàn)。玻璃微電極拉制后尖端直徑為1~2μm,充灌電極內(nèi)液后電阻2~4 MΩ。實(shí)驗(yàn)用EPC10膜片鉗放大器,調(diào)節(jié)三維顯微操縱器,使玻璃電極尖端與細(xì)胞表面接觸,稍加負(fù)壓形成高阻抗封接后,再加負(fù)壓形成全細(xì)胞記錄模式。記錄前進(jìn)行快慢電容補(bǔ)償和串聯(lián)電阻補(bǔ)償(達(dá)80%)。數(shù)據(jù)采集和分析用Pulse軟件(HEKA,德國)。用細(xì)胞外液灌流,封接,破膜,全細(xì)胞記錄模式形成后,待電流穩(wěn)定5min后開始記錄。實(shí)驗(yàn)均在24℃下進(jìn)行。
腺苷是水溶性,直接溶于細(xì)胞外液中配成母液,-20℃冰箱凍存。記錄電流前用細(xì)胞外液配成相應(yīng)的濃度(1、10、100μmol/L),以細(xì)胞旁方式給藥。
為消除細(xì)胞大小對電流大小的影響,所有數(shù)據(jù)都采用電流密度(Id),即單位細(xì)胞面積上的電流(電流/細(xì)胞電容,pA/pF),以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。加藥前后的Id采用配對t檢驗(yàn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析;用Boltzmann方程對電流的激活曲線進(jìn)行擬合。所有圖表都由Excel 2003和Sigmaplot10.0制成。
培養(yǎng)6~8d的細(xì)胞在高倍鏡下可見:海馬神經(jīng)元胞體呈梭形、橢圓形、三角形和多角形不等;突起很明顯,特別是樹突粗大可有分支;狀態(tài)較好的神經(jīng)元胞體較厚,立體感強(qiáng),周圍可見光暈,看不到明顯的胞核。背景細(xì)胞中可見神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞和成纖維細(xì)胞等。MAPⅡ免疫熒光染色后,熒光顯微鏡下可見神經(jīng)元胞體和突起均呈紅色,背景下可見少許非特異性染色,未見其他背景細(xì)胞著色(圖1)。
圖1 海馬神經(jīng)元培養(yǎng)與鑒定Fig.1 Culture and identification of hippocampal neurons
保持鉗制電壓為-80mV,給予從-40mV 到+60mV 的脈沖刺激,階躍電壓為10 mV,可以引出一串幅值較大(nA)快速激活、幾乎不失活的外向電流。隨著測試電壓的增大,BKCa電流幅值不斷增大,并表現(xiàn)出外向整流的特性。給予選擇性BKCa通道阻斷劑CdCl2100μmol/L,可使BKCa電流顯著減小,給藥前后Id分別為(0.44±0.06)pA/pF 和(0.25±0.08)pA/pF,抑制率為(43.18±1.56)%(P<0.05,n=6),見圖2、3。
以細(xì)胞旁給藥方式分別加入1、10、100μmol/L的腺苷后可以看到電流幅值較加藥前增大,加藥后的電流(Id)較加藥前的增長幅度分別為(3.35±1.72)%(n=6,P<0.05),(8.87±2.91)%(n=7,P<0.05),(20.53±5.40)%(n=6,P<0.05),濃度越高,增長幅度越大。
100μmol/L 腺苷可使BKCa通道Ⅰ-Ⅴ曲線上移,從圖4可以看出,隨著命令電壓的增大,電流增長的幅度也加大,說明腺苷對BKCa電流的作用具有電壓依賴性。但加藥前后電流達(dá)到峰值的電位和電流持續(xù)時(shí)間沒有明顯改變(n=6,P<0.05)。
圖2 海馬神經(jīng)元BKCa通道的電生理特性Fig.2 Electrophysiological properties of BKCachannels in hippocampal neurons
圖3 CdCl2(100μmol/L)可顯著降低BKCa通道電流Fig.3 Decreased current of BKCachannels by CdCl2(100μmol/L)
圖4 腺苷(100μmol/L)對海馬神經(jīng)元BKCa通道的影響Fig.4 Effect of adenosine(100μmol/L)on BKCachannels in hippocampal neurons
以相應(yīng)電壓下電導(dǎo)與最大電導(dǎo)的比值對應(yīng)階躍刺激作圖,以Boltzmann方程:G/Gmax=1/(1+Exp(-(V-V1/2)/K))擬合曲線,V1/2為50%最大激活時(shí)的膜電位(mV),K 為激活曲線的斜率,G 為各個(gè)膜電位下測定的電流值,V 為各膜電位。從擬合圖形(圖5)分析數(shù)據(jù)得出:腺苷使激活曲線負(fù)向漂移[對照組V1/2(16.50±2.33),K(1.11±0.98);腺苷組V1/2(9.83±1.20),K(1.04±0.60);n=6,P<0.05]。
圖5 腺苷(100μmol/L)使海馬神經(jīng)元BKCa通道激活曲線負(fù)向漂移Fig.5 Effect of adenosine at 100μmol/L on the activated curve of BKCain hippocampal neurons
實(shí)驗(yàn)證實(shí)在原代培養(yǎng)的SD 大鼠海馬神經(jīng)元上可以記錄到BKCa通道電流,選擇性BKCa通道阻斷劑CdCl2可以顯著抑制BKCa通道電流。腺苷(1、10、100μmol/L)可以增大BKCa電流,且具有濃度依賴性。腺苷(100μmol/L)可以電壓依賴性增大BKCa電流,使BKCa電流的激活曲線負(fù)向漂移,即使通道激活加快。
BKCa與癲癇的聯(lián)系非常密切,Du 等[6]觀察到BKCaα亞基的突變可以導(dǎo)致全身性癲癇的發(fā)作。Brenner等[7]證實(shí)BKCaβ4亞基可以降低齒狀回的興奮性,防止顳葉癲癇發(fā)作。Huang等[8]用單通道和全通道記錄方法證實(shí)唑尼沙胺的抗癲癇作用部分上是通過激活BKCa通道引起的。Shanley等[9]發(fā)現(xiàn)來普?。ㄒ环N體重調(diào)節(jié)藥)可以通過磷酸肌醇激酶3激活BKCa通道來介導(dǎo)神經(jīng)抑制作用。BKCa作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)的抑制性通道的認(rèn)識(shí)越來越深入。原位雜交和放射配體技術(shù)表明BKCa通道m(xù)RNA 在腦中下列區(qū)域表達(dá)明顯增高:大腦皮層、松果體、海馬結(jié)構(gòu)的顆粒和錐體細(xì)胞層。BKCa通道在腦中的分布可能與其在神經(jīng)保護(hù)和神經(jīng)遞質(zhì)傳遞中發(fā)揮作用有重要關(guān)系[10-11]。BKCa通道在調(diào)節(jié)神經(jīng)元興奮性中主要起以下幾方面的作用:①參與神經(jīng)元?jiǎng)幼麟娢坏膹?fù)極化和超極化,影響動(dòng)作電位的時(shí)程;②形成快后超極化電位(fAHP),影響神經(jīng)元放電頻率;③降低細(xì)胞缺氧和其他損傷情況下過多鈣內(nèi)流,避免鈣超載;④減少興奮性神經(jīng)遞質(zhì)(谷氨酸)釋放,降低神經(jīng)細(xì)胞損傷[12-13]。BKCa通道開放時(shí)形成的鉀離子內(nèi)流以及對鈣離子內(nèi)流的負(fù)反饋?zhàn)饔?,不僅降低了神經(jīng)元的興奮性放電,同時(shí)也可以起到神經(jīng)保護(hù)作用。
Dunwiddie等[3]利用耐藥性癲癇模型研究證實(shí)腺苷水平降低是促進(jìn)癇樣放電向癲癇持續(xù)狀態(tài)演變的關(guān)鍵因素,本課題組之前的大量研究也發(fā)現(xiàn)慢性癲癇點(diǎn)燃模型腺苷受體表達(dá)明顯降低,腺苷抑制系統(tǒng)作用的喪失導(dǎo)致癲癇發(fā)作持久存在。因此,研究腺苷的作用靶點(diǎn)對癲癇的治療有很大的意義。研究證實(shí),腺苷可以通過增加鉀通道電導(dǎo)來降低突觸前和突觸后興奮性信號傳遞,從而調(diào)節(jié)神經(jīng)元興奮和突觸效能,這可能是其發(fā)揮抗癲癇作用的機(jī)制[14-16]。而BKCa通道作為形成靜息膜電位和動(dòng)作電位的重要通道可能參與了腺苷的調(diào)節(jié)機(jī)制,在大鼠主動(dòng)脈內(nèi)膜上已經(jīng)證實(shí)腺苷作用于BKCa通道引起血管舒張[17]。
本實(shí)驗(yàn)首先在培養(yǎng)的第6~8天大鼠海馬神經(jīng)元上記錄BKCa電流,其具有電壓依賴性和鈣激活特性,可被特異性鉀通道阻斷劑阻斷,與文獻(xiàn)報(bào)道相符[13]。在此基礎(chǔ)上,選取腺苷3 個(gè)可能的有效濃度,證實(shí)腺苷可以增大BKCa電流,且在所選范圍內(nèi)有濃度依賴性。同時(shí)腺苷可使BKCa通道I-V 曲線上移,但不同的電壓下電流增大的幅度不同,電壓越大,電流增加的幅度越大,說明腺苷對BKCa電流的增大作用具有電壓依賴性,但是腺苷的這種作用沒有改變通道的激活電位及電流持續(xù)時(shí)間,推測腺苷可能是通過增加BKCa通道開放的數(shù)量來增加鉀電導(dǎo)的。實(shí)驗(yàn)還證實(shí),腺苷可以使激活曲線負(fù)向漂移,即激活加快,差異有顯著性。上述結(jié)果說明BKCa可能是腺苷發(fā)揮抑制性作用的一個(gè)作用位點(diǎn)。腺苷系統(tǒng)有A1,A2,A3三種受體,放射自顯影技術(shù)顯示存在于神經(jīng)系統(tǒng)海馬部位的主要是A1受體,該受體與腺苷有高親和力;動(dòng)物實(shí)驗(yàn)也證實(shí)A1受體是腺苷發(fā)揮突觸抑制,介導(dǎo)神經(jīng)保護(hù)的主要受體[18-19];在大鼠主動(dòng)脈內(nèi)膜上,腺苷可作用于A1 受體通過cAMP依賴的PKA 使通道磷酸化,從而使BKCa通道構(gòu)象改變,引發(fā)通道開放[17]。因此,我們推測腺苷可通過作用于海馬神經(jīng)元A1受體(cAMP-PKA途徑)使BKCa通道開放引發(fā)一系列的保護(hù)效應(yīng)。
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華中科技大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2012年3期