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    Maspin 在前列腺癌PC-3 細胞生物學(xué)行為中的作用

    2012-12-23 04:08:02劉美琴
    中國病理生理雜志 2012年7期
    關(guān)鍵詞:蛋白酶體細胞系前列腺癌

    劉美琴, 周 珺, 馬 亮, 國 風(fēng)

    (蘇州大學(xué)附屬第一醫(yī)院中心實驗室,江蘇 蘇州215006)

    乳腺絲氨酸蛋白酶抑制劑(mammary serine protease inhibitor,maspin)是絲氨酸蛋白酶抑制劑(serpin)超家族中的一個獨特成員[1]。maspin 表達的臨床意義受制于遺傳背景、組織類型和基礎(chǔ)表達水平等因素[2]。在包括前列腺癌在內(nèi)的多種實體瘤中,maspin 被認為是一個抑癌基因。本研究中,我們通過RNA 干擾技術(shù)并建立穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細胞系來探討maspin 如何影響前列腺癌細胞生物學(xué)行為的變化。

    材 料 和 方 法

    1 主要試劑、抗體和儀器

    RPMI-1640 購自Gibco-BRL;胎牛血清購自杭州四季青公司;限制性內(nèi)切酶Hpa I 和Xho l 購自NEB;質(zhì)粒小抽和大抽試劑盒購自O(shè)mega;SyberGreen Mix 購自美季公司;M-MLV 購自Invitrogen;轉(zhuǎn)染試劑Fugene HD 和蛋白酶抑制劑購自Roche;maspin 抗體(554292)購自BD Bioscience;RelA(sc-8008)和RelB(sc-226)抗體購自Santa Cruz Biotechnology;β-actin 抗體(AA128)購自碧云天公司;熒光Ⅱ抗購自Li-cor;MG-132 購自Sigma;流式細胞儀FACSCalibur 購自BD Bioscience;熒光倒置顯微鏡購自O(shè)lympus;NanoDrop 購自Thermo;LightCycler? 480 實時熒光定量PCR 儀和xCELLigence 系統(tǒng)購自Roche;Odyssey 紅外熒光掃描成像系統(tǒng)購自LI-COR。

    2 細胞培養(yǎng)

    雄激素非依賴型前列腺癌細胞株DU145 和PC-3 細胞為我實驗室長期保存,培養(yǎng)于含10%胎牛血清、1×105U/L 青霉素和100 mg/L 鏈霉素的RPMI-1640完全培養(yǎng)體系中,在37℃、5%CO2和飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。包裝細胞Phoenix A(由中科院動物所趙勇教授贈送)培養(yǎng)于含10%胎牛血清、1×105U/L 青霉素和100 mg/L 鏈霉素的DMEM 完全培養(yǎng)體系中。應(yīng)用倒置顯微鏡觀察細胞生長情況,2 ~3 d 傳代1 次,選用對數(shù)生長期的細胞進行后續(xù)實驗。

    3 Maspin-shRNA 的設(shè)計和表達載體的構(gòu)建

    按shRNA 靶序列的設(shè)計原則,針對maspin 基因的靶位點設(shè)計RNA 干擾片段,具體為1 171-1 189位(5’- GCACAAGGATGAATTGAAT-3’)并在Invitrogen 公司合成。將慢病毒載體pLL3.7(中科院動物所趙勇教授贈送)用Hpa I 和Xho l 酶切并去磷酸化,然后將合成的shRNA 正鏈和負鏈退火并連接至pLL3.7 載體,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到DH5α 大腸桿菌中,質(zhì)粒小量抽提鑒定后進一步測序鑒定(華大基因公司),鑒定好的載體質(zhì)粒采用試劑盒大量制備。

    4 建立穩(wěn)定轉(zhuǎn)染maspin-shRNA 細胞系

    接種0.5 ×106Phoenix A 細胞至35 mm 細胞培養(yǎng)皿,待細胞生長至70%~80%融合度時進行細胞轉(zhuǎn)染。細胞轉(zhuǎn)染試劑為Fugene FD,具體操作如說明書。包裝載體為pCMV-VSV-G 和pCMV-dR8.9,與制備好的pLL3.7-shRNA 質(zhì)粒(pLL3.7-siMaspin 或pLL3.7-control)共轉(zhuǎn)染。pLL3.7-control 為實驗陰性對照(non-silencing siRNA)。轉(zhuǎn)染18 h 后熒光顯微鏡下觀察GFP 信號并更換新鮮的DMEM 完全培養(yǎng)基。48 h 后,1 500 r/min 離心獲得含有病毒顆粒的上清,用0.45 μm 的濾器過濾除去細胞碎片等雜質(zhì)。將病毒上清和目的細胞(PC-3)混勻,培養(yǎng)48 h 后,用極限稀釋細胞克隆形成法得到單克隆轉(zhuǎn)染細胞。

    5 實時熒光定量RT-PCR(qRT-PCR)

    Trizol 一步法抽提細胞總RNA 并用NanoDrop 定量。取2 μg RNA 參照M-MLV 逆轉(zhuǎn)錄酶操作說明書逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。qRT-PCR 反應(yīng)在LightCycler?480 實時熒光定量PCR 儀上完成。每個反應(yīng)均設(shè)3 復(fù)孔,反應(yīng)共40 次循環(huán)。以β-actin 作為內(nèi)參照,檢測每個反應(yīng)管內(nèi)熒光強度達到設(shè)定域值時所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)(即Ct 值),mRNA 的相對表達水平用2-ΔΔCt方法進行計算。引物設(shè)計使用Primer-BLAST 軟件(NCBI)。

    6 全蛋白提取

    將5 ×106細胞用預(yù)冷的PBS 洗1 次,快速加入3 ~5 倍體積的緩沖液,再加入同體積的2 ×十二烷基硫酸鈉凝膠上樣緩沖液。95 ℃加熱10 min 后立即置于冰上,用1 mL 注射器反復(fù)抽吸約20 次,室溫,10 000 r/min 離心10 min,轉(zhuǎn)移上清置-80 ℃冰箱保存。

    7 Western blotting 法檢測蛋白的表達

    細胞裂解液,經(jīng)12%十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳后,轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上。5%脫脂奶粉封閉2 h 后,加入I 抗于4 ℃孵育過夜。熒光標(biāo)記的II 抗(1∶2 000 稀釋)2 h 室溫孵育,PBST(含1%Tween 的PBS)洗膜,用Odyssey 紅外熒光掃描成像系統(tǒng)檢測待測蛋白。

    8 實時細胞分析

    使用xCELLigence 系統(tǒng) 與RTCA 1.2 軟件進行細胞指數(shù)(cell index,CI)測定,并于E-Plate 16 中進行持續(xù)監(jiān)測。“細胞指數(shù)”是由測得的電阻抗(electrical impedance)頻譜推得的一種無量綱參數(shù),其數(shù)值反映細胞數(shù)目(活細胞或貼附細胞數(shù)目)。無細胞狀態(tài)下,加樣孔(E-Plate 16)底部排列的微電極陣列的阻抗分布近似均勻;加入細胞后,細胞與電極表面接觸,影響電極和溶液間離子環(huán)境,導(dǎo)致電阻抗升高。細胞越多電阻抗增加越多,即細胞指數(shù)值越高。用100 μL 含10% FCS 的RPMI-1640 進行細胞培養(yǎng)的背景電阻抗檢測。每孔體積調(diào)為100 μL,密度為3 000 個細胞。接種后,電阻抗以固定時間間隔被測定,對細胞持續(xù)監(jiān)測5 d。

    9 流式細胞儀檢測細胞死亡

    收集0.5 ×106個細胞,用流式緩沖液洗1 次,加入碘化丙啶(propidium iodide,PI)染色液50 μL,室溫下避光孵育5 min,用流式緩沖液洗滌后,將細胞重懸于300 μL 的流式緩沖液中,在流式細胞儀上進行t 檢驗或細胞死亡檢測。

    10 統(tǒng)計學(xué)處理

    結(jié) 果

    1 雄激素非依賴型前列腺癌細胞株中maspin 的表達

    以β- actin 為對照,通過Western blotting 法檢測了雄激素非依賴型前列腺癌細胞株DU145 和PC-3 細胞中maspin 的表達情況。DU145 細胞中maspin 的蛋白表達較低,而PC-3 細胞中maspin 的蛋白表達顯著高于前者,見圖1,故選用PC-3 細胞進行靶向沉默maspin 的實驗。

    Figure 1. The expression of maspin in DU145 and PC-3 prostatic cancer cells. ±s.n=4. * P <0.05 vs DU145.圖1 前列腺癌DU145 和PC-3 細胞中maspin 的表達

    2 穩(wěn)定轉(zhuǎn)染maspin-shRNA 細胞系的建立與鑒定

    采用極限稀釋細胞克隆形成法分別得到單克隆轉(zhuǎn)染細胞PC-3-siMaspin1 和PC-3-siMaspin2,熒光實時定量qRT-PCR 法檢測結(jié)果顯示PC-3-siMaspin1 和PC-3-siMaspin2 細胞的maspin mRNA表達水平相比較PC-3-control 細胞有明顯變化,約呈4 倍下降,見圖2A。

    Western blotting 法檢測結(jié)果顯示,PC-3-si-Maspin1 和PC-3-siMaspin2 細胞系的maspin 蛋白表達水平顯著低于PC-3-control 細胞組,分別降低4 倍和6.4 倍,見圖2B,故選用PC-3-siMaspin2 細胞進行后續(xù)實驗。

    Figure 2. The expression of maspin in PC-3 cells after transfection with maspin-shRNA. A:qRT-PCR analysis of maspin mRNA expression in prostate cancer cells;B:Western blotting analysis of maspin protein expression in whole-cell extracts of prostate cancer cells. ±s.n=3. ** P <0.01 vs PC-3-control.圖2 maspin-shRNA 轉(zhuǎn)染PC-3 細胞對maspin mRNA 和蛋白表達水平的影響

    通過普通倒置顯微鏡和熒光倒置顯微鏡觀察PC-3-siMaspin2 細胞,可見綠色熒光蛋白在細胞內(nèi)廣泛表達,見圖3A。進一步采用流式細胞術(shù)檢測到綠色熒光蛋白在PC-3-siMaspin 2 細胞中的表達率可達到95.99%,見圖3B。

    Figure 3. Detection of flurorescence signal and GFP expression in PC-3-siMaspin2 cells. A:PC-3-siMaspin2 cells were detected using fluorescence microscope. a:phase-contrast microscope;b:fluorescence microscope. B:flow cytometric analysis of GFP expression in PC-3-siMaspin2 cells and PC-3-control cells.圖3 Maspin-shRNA 穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細胞系中熒光信號的觀察

    3 Maspin 沉默對PC-3 細胞生長的影響

    細胞計數(shù)顯示PC-3-control 與PC-3-si-Maspin2 細胞在接種后的第1 d 生長相似,而在第3 d PC-3-siMaspin2 細胞生長明顯快于PC-3-control 細胞,見圖4A。通過xCELLigence 系統(tǒng)對5 d 生長過程的細胞指數(shù)進行動態(tài)檢測,結(jié)果顯示,第1 d兩組細胞的生長速度相似(P >0.05),第2 d 起PC-3-siMaspin2 細胞生長明顯快于PC-3-control細胞(P <0.05 或P <0.01),見圖4B。PC-3-si-Maspin2 細胞的倍增時間為26.83 h,而PC-3-control 細胞的倍增時間為37.95 h。

    4 Maspin 沉默對細胞凋亡相關(guān)基因表達的影響

    qRT-PCR 結(jié)果顯示,抗凋亡基因(bcl-2 和A20)在PC-3-siMaspin2 細胞mRNA 表達水平較PC-3-control 細胞有不同程度升高;而促凋亡基因(bax 和bim)在PC-3-siMaspin2 細胞mRNA 表達水平較PC-3-control 細胞有不同程度降低,見圖5。

    Figure 4. The effect of maspin silencing on cell growth and proliferation of PC-3 cells. A:growth curves of PC-3-control and PC-3-siMaspin2 cells. ±s. n =4. * P<0.05 vs PC-3-control. B:the proliferation of PC-3-control and PC-3-siMaspin2 cells dynamically detected using xCELLigence system. ±s.n=3.圖4 Maspin 沉默對PC-3 細胞的生長和增殖的影響

    Figure 5. The expresison of bcl-2,A20,bax,and bim mRNA in PC-3-control and PC-3-siMaspin2 cells analyzed by qRT-PCR. ±s. n =3. * P <0.05,**P <0.01 vs PC-3-control.圖5 PC-3-control 和PC-3-siMaspin2 細胞bcl-2、A20、bax 和bim mRNA 的表達

    5 蛋白酶體抑制劑對PC-3-siMaspin2 細胞的作用

    應(yīng)用蛋白酶體抑制劑MG-132(1 μmol/L)處理PC-3-control 和PC-3-siMaspin2 細胞,采用PI染色法檢測細胞死亡率,未處理時細胞死亡率分別為9.2%±5.6%和3.8%±1.2%,MG-132 作用8 h細胞死亡率分別為27.1%±5.6%和7.5%±2.3%;作用24 h 細胞死亡率為24.2%±3.7%和8.2% ±2.5%,作用36 h 細胞死亡率為28. 7%±3. 7% 和7.6%±2.5%,見圖6A。故PC-3-siMaspin 2 細胞其自發(fā)性死亡率比PC-3-control 細胞低,在MG-132 作用后PC-3-control 細胞的死亡率呈時間依賴性上升,PC-3-siMaspin2 細胞的死亡率比PC-3-control 細胞顯著降低。xCELLigence 系統(tǒng)連續(xù)觀察細胞生長5 d,結(jié)果顯示PC-3-control 細胞數(shù)隨時間增長而減少,而PC-3-siMaspin2 細胞數(shù)無明顯變化,見圖6B。

    Figure 6. The effects of MG-132 treatment on the survival of PC-3-control and PC-3-siMaspin2 cells. A:PI-positive cells detected by flow cytometric analysis;B:the prolifertion of PC-3-control and PC-3-si-Maspin2 cells dynamically detected using xCELLigence system. ±s.n=3. **P <0.01 vs PC-3-control.圖6 MG-132 對PC-3-control 和PC-3-siMaspin2 細胞的毒性作用

    6 Maspin 基因沉默對蛋白酶體抑制劑誘導(dǎo)的NFκB 蛋白表達的影響

    Western blotting 法檢測結(jié)果顯示,PC-3-control 細胞在MG-132(1 μmol/L)作用下RelA 的表達逐漸下調(diào),而PC-3-siMaspin2 細胞中RelA 的表達無明顯變化。PC-3-control 和PC-3-siMaspin2細胞中RelB 的表達均無顯著變化,見圖7。

    Figure 7. The effects of MG-132 treatment on the expression of RelA and RelB in PC-3-control and PC-3-si-Maspin2 cells. ±s.n=3. **P <0.01 vs 0 h.圖7 MG-132 對PC-3-control 和PC-3-siMaspin2 細胞RelA 和RelB 蛋白表達的影響

    討 論

    Maspin 是1994 年用消減雜交(subtractive hybridization)技術(shù)對正常乳腺組織和乳腺癌組織進行比較時發(fā)現(xiàn)的一個腫瘤抑制基因。Maspin 基因編碼產(chǎn)物為serpin 超家族中的一個獨特成員,定位和或分泌于細胞漿及細胞核內(nèi)[3]。最初的研究表明maspin 是一抑癌基因,可以通過促凋亡蛋白Bax 的介導(dǎo)而促進細胞凋亡從而抑制腫瘤細胞的生長[4]。Maspin 在不同腫瘤類型中表達意義不一,例如在乳腺癌、肝癌和肺鱗癌中maspin 的過表達預(yù)示預(yù)后良好[5]。原發(fā)性前列腺癌中maspin 的表達顯著下降,并與病理分級、臨床分期和淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移等臨床表現(xiàn)相關(guān),為預(yù)后較差的一個獨立因素[6]。本研究中我們利用慢病毒包裝系統(tǒng)建立了靶向沉默maspin 的PC-3 細胞系。利用xCELLigence 系統(tǒng)進行實時細胞觀測,發(fā)現(xiàn)靶向沉默maspin 的PC-3 細胞相比對照細胞生長速度明顯加快,倍增時間明顯縮短。另外,maspin 表達的降低導(dǎo)致自發(fā)性凋亡率減少,與促凋亡基因(bax 和bim)mRNA 表達水平下調(diào)的同時抗凋亡基因(bcl-2 和A20)mRNA 表達水平上調(diào)具有相關(guān)性。以上結(jié)果均表明maspin 表達沉默賦予了雄激素非依賴型前列腺癌細胞株P(guān)C-3 更強的腫瘤性,即maspin 在PC-3 細胞中起到抑制細胞增殖和促進細胞凋亡的作用。

    核因子κB(NF-κB)家族成員包括RelA/p65、p50、RelB、p52 和c-Rel,在炎癥發(fā)生、細胞增殖與凋亡和腫瘤形成等多種生物學(xué)過程中發(fā)揮作用[7]。以RelA-p50 二聚體為代表的經(jīng)典性NF-κB 的持續(xù)活化在前列腺癌發(fā)生發(fā)展中起重要作用并被認為是前列腺癌的共同特點[8]。代表著非經(jīng)典通路活性的RelB 蛋白逐漸被證實與實體瘤的發(fā)生發(fā)展相關(guān),包括乳腺癌、前列腺癌和胰腺癌等[9]。RelB 作用于前列腺的癌變過程并賦予了前列腺癌細胞的輻照耐受,嚴(yán)重影響前列腺癌的療效[10-12]。最新研究認為RelB 在maspin 的表達調(diào)控中起重要作用,但RelA并不影響maspin 蛋白的表達[13-14]。蛋白酶體抑制劑通過抑制NF-κB 依賴性的基因轉(zhuǎn)錄,已經(jīng)廣泛應(yīng)用于多發(fā)性骨髓瘤、套細胞淋巴瘤以及急性髓細胞白血病患者的治療。PC-3 細胞中NF-κB 呈持續(xù)性活化。當(dāng)PC-3 細胞受到蛋白酶體抑制劑MG-132 作用時,采用xCELLigence 系統(tǒng)實時監(jiān)測并結(jié)合PI 染色法觀察到細胞出現(xiàn)時間依賴性死亡并伴隨RelA 蛋白表達的下調(diào);而在maspin 沉默的PC-3細胞中并未出現(xiàn)明顯的細胞死亡,但細胞生長受到抑制,同時RelA 蛋白表達未發(fā)生明顯變化。RelB 蛋白的表達在對照和maspin 沉默的PC-3 細胞變化不顯著。以上結(jié)果均說明maspin 表達沉默賦予了PC-3 細胞對蛋白酶體抑制劑的耐藥性,并與RelA 的表達的變化直接相關(guān)。

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