高 楊,吳 芹,楊丹莉,鄧 江,黃燮南
(貴州省基礎(chǔ)藥理重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室暨遵義醫(yī)學(xué)院藥理學(xué)教研室,貴州遵義 563000)
經(jīng)皮腔內(nèi)冠狀動脈介入治療 (PCI)已成為治療冠心病的重要手段,然而,PCI術(shù)后存在的再狹窄問題卻嚴(yán)重影響了其遠(yuǎn)期療效[1]。一般認(rèn)為,血管平滑肌細(xì)胞(VSMC)增殖、肥大、遷移是血管術(shù)后再狹窄等的病理基礎(chǔ)[2]。已有研究表明,人參皂苷Rg1(Rg1)能抑制腫瘤壞死因子-α所致VSMC增殖[3-4]。我們先前的研究也證實(shí),人參總皂苷及Rg1均能抑制球囊損傷所致大鼠頸動脈內(nèi)膜增厚[5-6],在培養(yǎng)的 VSMC,人參總皂苷對血小板源性生長因子誘導(dǎo)的VSMC增殖也具有抑制作用[7]。然而,VSMC增殖受多種因素的調(diào)控,其中,氧化應(yīng)激[8]和一氧化氮 (NO)形成[9]均明顯影響 VSMC增殖。因此,本研究擬觀察Rg1的抗血管內(nèi)膜增生作用與其抗氧化應(yīng)激和促NO生成的關(guān)系。
1.1 實(shí)驗(yàn)動物 ♂ SD大鼠,清潔級,體質(zhì)量300~350 g,由第三軍醫(yī)大學(xué)大坪醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動物中心提供[許可證號:SCXK-(軍)2007-017]。
1.2 藥品及試劑 Rg1:北京奧明興業(yè)科技有限責(zé)任公司提供 (純度95%);SOD、MDA檢測試劑盒(南京建成生物工程研究所);內(nèi)皮型一氧化氮合酶(eNOS)、β-actin引物、TRIzol(TaKaRa生物工程公司);逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系試劑盒(Applied Biosystems公司);SYBR?GREEN PCR Master Mix(Warrington WA14SR.UK);RNA純化試劑盒 (上海華舜生物工程有限公司)。
1.3 儀器 Fogarty導(dǎo)管(美國edwards lifescience公司);Leica光學(xué)顯微鏡及照相系統(tǒng)(德國Leica Microsystems Ltd);Mastercycler Gradient PCR儀、Centrifuge 5417R/5415D離心機(jī) (德國Eppendorf公司);icycler熒光定量PCR儀(美國BIO-RAD公司)。
1.4 方法
1.4.1 大鼠頸總動脈球囊損傷模型的制備 大鼠用20%水合氯醛 (2 ml·kg-1)腹腔注射麻醉后仰臥位固定,用碘伏消毒頸部皮膚并作前正中切口,分離左頸總動脈和頸外動脈,用血管夾阻斷前者近心端和左頸內(nèi)動脈;結(jié)扎頸外動脈遠(yuǎn)心端并在其近心端剪一小口,將2 F球囊導(dǎo)管插入去除血管夾后的頸總動脈起始部,注入約0.1 ml生理鹽水使球囊略充盈,緩慢推拉球囊導(dǎo)管3次以剝脫頸動脈內(nèi)皮,負(fù)壓回抽生理鹽水,退出導(dǎo)管,結(jié)扎左頸外動脈,縫合皮膚切口。假手術(shù)組除不插入球囊導(dǎo)管外,其余操作與模型組相同。術(shù)后每只大鼠注射12萬U芐星青霉素預(yù)防感染,清醒后置籠喂養(yǎng)。
1.4.2 動物分組及取材 大鼠隨機(jī)分5組:假手術(shù)組和模型組給予等體積生理鹽水;3個給藥組造模后分別給 Rg1 4、8、16 mg·kg-1。術(shù)后次日腹腔注射給藥,連續(xù)14 d。最后1次給藥的次日,將大鼠麻醉后取血用于SOD、MDA檢測,并迅速取出損傷的左頸總動脈,用預(yù)冷生理鹽水沖洗干凈,取中間段標(biāo)本放入10%中性福爾馬林中固定24 h,石蠟包埋后用于形態(tài)學(xué)觀察。剩余標(biāo)本用濾紙吸干后,立即置液氮中速凍,然后放-70℃冰箱中凍存用于Real-Time RT-PCR檢測。
1.4.3 SOD活性和MDA含量測定 按相應(yīng)試劑測試盒說明操作。
1.4.4 病理學(xué)組織觀察 將上述石蠟包埋標(biāo)本切片,行蘇木精-伊紅 (H.E.)染色,Leica光學(xué)顯微鏡下觀察血管腔形態(tài)、內(nèi)膜增厚情況,并拍照記錄。用Q Win圖像處理與分析系統(tǒng)測定新生內(nèi)膜面積和中膜面積,并計算內(nèi)膜面積/中膜面積比值,每個標(biāo)本觀察3張切片,取平均值。
1.4.5 Real-Time RT-PCR 檢測 VSMC 中 eNOS mRNA的表達(dá) 取冷凍血管標(biāo)本置于0.5 ml TRIzol液中,用研磨杵充分勻漿至組織完全裂解,在上述含有樣品的Eppendorf(EP)管中加入0.2 ml氯仿,快速搖勻,以12 000×g·min-1在4 ℃下離心10 min,取出上清液,小心吸取上層水相置于另一無菌的新EP管中,加等量異丙醇,輕搖混勻后,室溫靜置10 min,再以12 000×g·min-14℃離心10 min,肉眼可見白色半透明的細(xì)胞總RNA沉于管底,棄去上清液。加入75%乙醇0.5 ml,以12 000×g·min-1在4℃下離心10 min,小心棄去乙醇。將EP管倒置于濾紙上,讓沉淀的RNA在室溫下自然干燥,至乙醇完全揮發(fā),加DEPC水100 μl溶解。RNA純化后進(jìn)行樣品純度鑒定。兩步法逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)如下:首先從基因庫GeneBank中查出相關(guān)引物序列,由TaKaRa生物工程公司合成相應(yīng)引物(見Tab 1)。
Tab 1 Primer pairs used in Real-Time PCR
PCR反應(yīng)體系為20 μl第一步,95℃×10 min;第二步,95℃ ×15 s,退火溫度 ×1 min,循環(huán)45次。結(jié)果分析處理(相對定量法),以Ct值為統(tǒng)計參數(shù)依次計算下列數(shù)據(jù):(1)Ct average=(Ct1+Ct2+Ct3)/3(重復(fù)管);(2)dCt=Ct average-中間值;(3)基因的表達(dá)=2^(-dCt);(4)相對定量=目的基因的表達(dá)/內(nèi)參基因的表達(dá)
1.4.6 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS16.0統(tǒng)計軟件,所有數(shù)據(jù)均以±s表示,組間比較采用單因素方差分析(One Way ANOVA)。
Fig 1 Effects of Rg1 administration on morphological changes of ballon-injured carotid artery of rats
2.1 Rg1對大鼠頸動脈球囊損傷模型血管形態(tài)學(xué)變化的影響
2.1.1 H.E.染色血管形態(tài)學(xué)變化及Rg1對其影響
光鏡下,與假手術(shù)組(Fig 1A)比較,可見球囊損傷的各組血管標(biāo)本均有不同程度的內(nèi)膜增厚,管腔狹窄,大量新生內(nèi)膜形成,各處新生內(nèi)膜厚薄不一,以模型組(Fig 1B)最為嚴(yán)重。Rg1(4、8、16 mg·kg-1)給藥各組較模型組新生內(nèi)膜厚度明顯減小(Fig 1C,D,E)。
2.1.2 Rg1對大鼠球囊損傷后頸動脈形態(tài)學(xué)指標(biāo)的影響 H.E.染色切片經(jīng)圖像分析的結(jié)果表明,與假手術(shù)組比較,模型組的新生內(nèi)膜面積和內(nèi)膜面積/中膜面積比值均分別增加了十多倍。Rg1(4、8、16 mg·kg-1)給藥可呈劑量依賴性減輕球囊損傷所致新生內(nèi)膜增厚(P<0.01),見Tab 2。
Tab 2 Effects of Rg1 administration on neointimal area and the ratio of neointimal area/media area in balloon-injured carotid artery of rats(±s,n=6)
Tab 2 Effects of Rg1 administration on neointimal area and the ratio of neointimal area/media area in balloon-injured carotid artery of rats(±s,n=6)
##P <0.01 vs sham;**P <0.01 vs model
Group Neointimal area/μm2 Neointimal area/media area Sham 6774.67 ±1094.84 0.13 ±0.01 Model 105020.7 ±27616.15## 1.71 ±0.28##Rg1 4 mg·kg-1 50539.68 ±27920.20** 0.81 ±0.45**Rg1 8 mg·kg-1 41533.91 ±23274.37** 0.67 ±0.29**Rg1 16 mg·kg-1 28434.56 ±17236.42** 0.45 ±0.27**
2.2 大鼠血漿中SOD活力的變化 Tab 3的結(jié)果表明,模型組較假手術(shù)組SOD活力降低了22%(P<0.01),Rg1(4、8、16 mg·kg-1)各給藥組與模型組比較,該指標(biāo)分別升高了21%、23%、24%(P<0.05),3個劑量組間呈一定的劑量依賴性趨勢。
Tab 3 Effects of Rg1 administration on SOD activities in plasm of rats with balloon-injured carotid artery(±s)
Tab 3 Effects of Rg1 administration on SOD activities in plasm of rats with balloon-injured carotid artery(±s)
##P<0.01 vs sham;*P<0.05 vs model
Group n SOD/kU·L -1 Sham 8 104.30 ±11.37 Model 6 81.71 ±8.60##Rg1 4 mg·kg-1 8 98.68 ±4.99*Rg1 8 mg·kg-1 8 100.71 ±2.97*Rg1 16 mg·kg-1 7 101.62 ±7.20*
2.3 大鼠血漿中MDA含量的測定 模型組大鼠血漿中 MDA 的含量為 14.42 μmol·L-1,較假手術(shù)組約升高了168%(P<0.01);另一方面,Rg1(4、8、16 mg·kg-1)各給藥組的MDA含量均較模型組明顯降低(P<0.01),且3個劑量組間呈一定的劑量依賴關(guān)系(Tab 4)。
Tab 4 Effects of Rg1 administration on MDA level in
blood plasm of rats with balloon-injured carotid artery(±s)
##P <0.01 vs sham;**P <0.01 vs model
2.4 Rg1對球囊損傷后血管壁eNOS mRNA表達(dá)的影響 Real-Time RT-PCR檢測結(jié)果顯示,球囊擴(kuò)張損傷頸動脈可明顯下調(diào)eNOS mRNA表達(dá)。與假手術(shù)組比較,模型組的eNOS mRNA表達(dá)僅為前者的4%(P<0.01)。Rg1 4 mg·kg-1對 eNOS mRNA表達(dá)下調(diào)雖無統(tǒng)計學(xué)上明顯的改善作用(P>0.05),但仍有上調(diào)的趨勢,當(dāng)其劑量為8、16 mg·kg-1時,便能明顯上調(diào)由球囊損傷所降低的eNOS mRNA表達(dá),使之分別恢復(fù)到假手術(shù)組的54%和56%(P<0.01)。
Fig 2 Effects of Rg1 administration on the expression of eNOS mRNA in balloon-injured carotid artery of rats(±s,n=6)
本實(shí)驗(yàn)的結(jié)果顯示,Rg1 4,8,16 mg·kg-1給藥兩周,可明顯改善球囊損傷所致以血管新生內(nèi)膜增厚為主的形態(tài)學(xué)變化,提示其對血管內(nèi)膜異常增生有抑制作用。
研究表明,氧化應(yīng)激通過活化巨噬細(xì)胞釋放細(xì)胞因子和生長因子,刺激基質(zhì)重塑和平滑肌細(xì)胞增殖;活性氧還可調(diào)節(jié)基質(zhì)金屬蛋白酶參與基質(zhì)重塑,導(dǎo)致新的細(xì)胞外基質(zhì)和平滑肌細(xì)胞的積聚以致新生內(nèi)膜的形成,從而引起球囊損傷后管腔狹窄[8]。因此,氧化應(yīng)激被認(rèn)為與AS及經(jīng)皮腔內(nèi)冠狀動脈形成術(shù)(PCI)后再狹窄的發(fā)病有密切關(guān)系,抑制氧化應(yīng)激便有可能抑制血管損傷后的再狹窄[10-11]。已有研究發(fā)現(xiàn)[12],每天給小劑量抗氧化劑普羅布考(probucol)可減輕PCI所致血管再狹窄的發(fā)生率和嚴(yán)重性。業(yè)已明了,SOD活力的高低可反映機(jī)體內(nèi)抗自由基水平的高低。而測定MDA含量可間接反映自由基對機(jī)體的損傷程度。我們的實(shí)驗(yàn)表明,Rg1呈劑量依賴性地降低頸動脈球囊損傷后大鼠血漿中MDA的含量,而提高SOD的活力。表明Rg1能減輕氧化應(yīng)激,發(fā)揮抗脂質(zhì)過氧化作用,該作用可能是其抗球囊損傷所致血管內(nèi)膜增生的機(jī)制之一。
目前,NO抑制VSMC增殖的作用已得到充分肯定。有研究表明[9],NO生成藥如硝普鈉等能呈劑量依賴性地抑制VSMC增殖,給予NO前體藥左旋精氨酸、口服NO供體藥嗎多明(molsidomine)和長時間直接吸入NO均能明顯減輕球囊損傷所致血管內(nèi)膜增厚。還有文獻(xiàn)報道,損傷的VSMC在轉(zhuǎn)染了eNOS基因后能充分分化,降低細(xì)胞的增殖率[13],從而肯定了eNOS在抑制細(xì)胞增殖中的作用。
本室既往研究發(fā)現(xiàn),在培養(yǎng)的新生乳鼠心肌細(xì)胞,Rg1可促進(jìn)NO釋放,參與其抗心肌細(xì)胞肥大效應(yīng)[14];利用縮窄腹主動脈所致左室心肌肥厚模型的研究也發(fā)現(xiàn),NO生成在Rg1的抗心肌肥厚中發(fā)揮一定作用[15]。在本研究中,我們雖未能測定血管壁NO濃度的變化,但發(fā)現(xiàn)模型組eNOS mRNA表達(dá)量僅為假手術(shù)組的4%,而Rg1給藥后,特別是8 mg·kg-1和 16 mg·kg-1組,大鼠頸動脈 eNOS mRNA 表達(dá)量可恢復(fù)到假手術(shù)組的一半以上。該結(jié)果似能表明,Rg1可通過改善和恢復(fù)大鼠球囊損傷后血管壁eNOS的表達(dá),促進(jìn)NO的產(chǎn)生,減輕內(nèi)膜增殖,成為其抗囊損傷后血管再狹窄的另一個機(jī)制。
綜上所述,Rg1抑制球囊損傷后血管內(nèi)膜異常增生的作用,可能與其抗氧化應(yīng)激和上調(diào)NOS mRNA,促進(jìn)NO生成有關(guān)。
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