許 華,鄧淑琴,何 清,蘇本金,江海香,黃亞?wèn)|
(暨南大學(xué)1.藥學(xué)院,2.中藥藥效物質(zhì)基礎(chǔ)及創(chuàng)新藥物研究廣東省高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,3.醫(yī)藥生物技術(shù)研究開(kāi)發(fā)中心,廣東廣州 510632)
堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)為成纖維細(xì)胞家族的重要成員之一,具有廣泛的生物學(xué)活性,可促進(jìn)細(xì)胞增殖和分化,促進(jìn)傷口的愈合,已在臨床用于燒傷、創(chuàng)傷等的治療。但該類藥物在臨床大劑量或長(zhǎng)時(shí)間應(yīng)用,特別是在育齡人群使用,是否會(huì)引起胚胎干細(xì)胞的異常分化而導(dǎo)致潛在的生殖發(fā)育毒性,令人擔(dān)憂。由于該類藥物自身的生物學(xué)特性和作用機(jī)制不同于常規(guī)的化合物,難以用傳統(tǒng)的檢測(cè)方法確定其可能出現(xiàn)生殖發(fā)育毒性。本實(shí)驗(yàn)欲建立小鼠胚胎干細(xì)胞試驗(yàn)(EST)模型,初步判斷bFGF是否具有發(fā)育毒性,為生長(zhǎng)因子類藥物的安全用藥提供初步的依據(jù)。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 清潔級(jí)昆明種小鼠,♀♂各半,6~8周齡,體質(zhì)量(20±2)g,購(gòu)自中山大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,動(dòng)物許可證號(hào):SCXK(粵)2009-0011。
1.2 細(xì)胞系 BALB/c 3T3購(gòu)自中山大學(xué)細(xì)胞庫(kù),ES-D3由浙江大學(xué)朱丹燕教授惠贈(zèng)。
1.3 主要試劑 bFGF,購(gòu)自廣東南海朗泰制藥有限公司,批號(hào)C20110301;堿性磷酸酶試劑盒,購(gòu)自碧云天生物技術(shù)研究所;白血病抑制因子(leukemia inhibitory factor;LIF),貨號(hào) ESG1106購(gòu)自 Millipore公司;絲裂霉素C購(gòu)自Roche公司;ES細(xì)胞培養(yǎng)基(含有 15%胎牛血清 FBS,0.1 mmol·L-1β-巰基乙醇,2 mmol·L-1L-谷氨酰胺,0.1 mmol·L-1丙酮酸鈉,1%青-鏈霉素,0.1 mmol·L-1非必需氨基酸NEAA和1 000 kU·L-1LIF),高糖 DMEM 培養(yǎng)基(含10%FBS,1%青-鏈霉素)
1.4 方法
1.4.1 小鼠原代胚胎成纖維細(xì)胞的提?。?]取12.5~14.5 d的昆明種胎鼠,將軀干部分剪碎,采用胰酶多次消化的方法,取上層懸液并離心,收集細(xì)胞沉淀,即小鼠胚胎成纖維細(xì)胞,用高糖DMEM培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng),待細(xì)胞長(zhǎng)至80%即可傳代。
1.4.2 飼養(yǎng)層的制備[2]取第2~4代的處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的鼠胚胎成纖維細(xì)胞用10 mg·L-1的絲裂霉素C 37℃作用3 h抑制細(xì)胞的分裂,消化后接種于質(zhì)量濃度為0.1%明膠包被的新培養(yǎng)瓶中即制備成飼養(yǎng)層。
1.4.3 小鼠胚胎干細(xì)胞的培養(yǎng) 將復(fù)蘇的ES-D3接種于制備的飼養(yǎng)層中,用ES細(xì)胞培養(yǎng)基培養(yǎng),每天換液,每2~3天傳代至新的飼養(yǎng)層上。
1.4.4 小鼠胚胎干細(xì)胞未分化的鑒定 ESC通過(guò)形態(tài)學(xué)觀察、堿性磷酸酶染色及RT-PCR對(duì)ESC未分化基因Oct-4和Sox-2的表達(dá)這三方面的檢測(cè)對(duì)ESC進(jìn)行鑒定。所用引物如Tab 1。
1.4.5 bFGF 對(duì) ESC 和 3T3 的細(xì)胞毒性檢測(cè)[3]將處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的ESC和3T3以1×104·L-1的密度分別接種到96孔板中,每孔50 μl,待細(xì)胞貼壁后,每孔加入不同濃度的bFGF的培養(yǎng)基150 μl(0、10、20、30、40、50、60、70 和 80 mg·L-1)繼續(xù)培養(yǎng),同時(shí)設(shè)立陰性對(duì)照組,d 3、d 5進(jìn)行更換新的含藥培養(yǎng)基,d 10時(shí)用MTT法檢測(cè)細(xì)胞活性,于波長(zhǎng)570 nm處檢測(cè)其吸光度值,制成濃度-反應(yīng)曲線,求出相對(duì)應(yīng)的產(chǎn)生50%細(xì)胞毒性的受試物濃度,即IC50ESC和IC503T3。
Tab 1 Sequences of primers
1.4.6 bFGF對(duì) ESC分化抑制試驗(yàn)[4]用不含有LIF的ESC分化培養(yǎng)基制備成含不同濃度的bFGF的培養(yǎng)基(0、0.03、0.3、3 和 30 mg·L-1),將差速貼壁所收集的ESC與上述濃度混勻后,以2.5×104·L-1的密度(每滴 30 μl,大約 750 個(gè)細(xì)胞)進(jìn)行懸滴、懸浮、貼壁三步法培養(yǎng)。于d 10收集細(xì)胞進(jìn)行RT-PCR檢測(cè)ECS中未分化基因Sox-2和管家基因GADPH的表達(dá)量,并進(jìn)行灰度半定量分析,求出bFGF對(duì)ESC分化抑制率為50%時(shí)的作用濃度,即半數(shù)抑制濃度ID50ESC。
1.4.7 發(fā)育毒性的判斷 受試物發(fā)育毒性的計(jì)算公式和評(píng)價(jià)方法見(jiàn)文獻(xiàn)[5]。
1.5 數(shù)據(jù)處理 采用Image J分析軟件對(duì)RT-PCR凝膠圖像進(jìn)行灰度半定量分析。采用SPSS統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以±s表示。
2.1 小鼠胚胎干細(xì)胞未分化的鑒定
2.1.1 形態(tài)學(xué)觀察 鏡下可觀察到生長(zhǎng)在飼養(yǎng)層上的ESC呈克隆狀生長(zhǎng),類似圓形或島嶼狀,邊緣光滑清晰,集落中細(xì)胞密集,細(xì)胞界限不清。如Fig 1。
2.1.2 堿性磷酸酶染色 將生長(zhǎng)在飼養(yǎng)層上的ESC經(jīng)NBT/BCIP染色工作液作用后,細(xì)胞克隆被染成藍(lán)色,說(shuō)明ESC處于未分化狀態(tài)。如Fig 2。
2.1.3 未分化基因的表達(dá) ESC和MEF提取所得的總RNA進(jìn)行RT-PCR,并經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳。結(jié)果顯示,ESC未分化基因Oct-4和Sox-2均有表達(dá),表明實(shí)驗(yàn)所用的ESC處于未分化狀態(tài)。如Fig 3。
2.2 bFGF對(duì)ESC和3T3的細(xì)胞存活率的影響MTT檢測(cè)結(jié)果顯示,隨著bFGF濃度的增加,ESC和3T3的增殖均受到明顯的抑制,并有一定的劑量依賴性;在同等濃度下,bFGF對(duì)ESC增殖的抑制作用強(qiáng)于3T3細(xì)胞,表明 ESC對(duì) bFGF的敏感性高于3T3。應(yīng)用GraphPad Prism5.0軟件處理數(shù)據(jù),得出bFGF的IC50ESC和IC503T3分別為15.2 mg·L-1和 24.2 mg·L-1。如 Fig 4。
Fig 1 Embryonic stem cells cultured on mouse embryonic fibroblasts(×100)
Fig 2 Alkaline phosphatase staining of mouse embryonic stem cells(×200)
Fig 3 Expression of undifferentiated gene Sox-2 and Oct-4 in embryonic stem cells
Fig 4 Inhibitiory effect of different concentrations of bFGF on embryonic stem cells and 3T3 cells(±s,n=6)
2.3 bFGF對(duì)ESC分化的抑制作用 將PCR結(jié)果進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳,如Fig 5所示,隨著bFGF作用濃度的提高,未分化基因Sox-2的表達(dá)量呈劑量依賴性增高,表明ESC分化受到抑制。通過(guò)灰度半定量分析,求出各受試物相對(duì)應(yīng)的產(chǎn)生50%胚胎干細(xì)胞分化抑制作用的濃度ID50ESC為1.7 mg·L-1。
Fig 5 Expressions of Sox-2 after exposed to different concentrations of bFGF for 10 days
2.4 受試物發(fā)育毒性的判定結(jié)果 將上述所求得的IC503T3,IC50ESC和ID50ESC代入受試物發(fā)育毒性計(jì)算公式得到Ⅱ>Ⅰ,且Ⅱ>Ⅲ,則生長(zhǎng)因子類藥物bFGF發(fā)育毒性為二級(jí),即有弱胚胎毒性。
歐洲替代試驗(yàn)方法驗(yàn)證中心(European Center for Validation Alternative Methods,ECVAM)推薦的EST模型可用于外來(lái)物胚胎發(fā)育毒性的評(píng)價(jià)。EST對(duì)受試物的檢測(cè)終點(diǎn)由2個(gè)部分組成,一為細(xì)胞毒性(用半數(shù)抑制濃度IC50表示),二為胚胎毒性(用半數(shù)抑制分化濃度ID50表示)[6]。通過(guò)檢測(cè)受試物對(duì)ESC分化的影響(即ID50ESC)和對(duì)ESC與成纖維細(xì)胞BALB/c3T3的細(xì)胞毒性檢測(cè)結(jié)果(即IC50ESC和IC503T3),按照ECVAM推薦的胚胎發(fā)育毒性評(píng)價(jià)公式計(jì)算,即可直接定性某一藥物的可能胚胎毒性[5]。ECVAM用EST對(duì)多種化合物檢測(cè)所得無(wú)胚胎毒性、低胚胎毒性和高胚胎毒性結(jié)果與體內(nèi)試驗(yàn)的符合率分別為70%、82.5%和81.25%。并且在大約360種受試物中挑選出具有明確體內(nèi)胚胎發(fā)育毒性實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的30種,使用EST進(jìn)行胚胎發(fā)育毒性檢測(cè),結(jié)果顯示與體內(nèi)結(jié)論的符合率達(dá)到82%,其中強(qiáng)胚胎毒性的符合率更達(dá)到100%[7]。
生長(zhǎng)因子類,包括 aFGF、bFGF、EGF、NGF 等,是體內(nèi)廣泛存在的具有促進(jìn)組織分裂增殖作用的一大類生物因子。目前應(yīng)用基因工程技術(shù)使得這些生長(zhǎng)因子可大量生產(chǎn)成藥物用于臨床。但該類因子在較大劑量和較長(zhǎng)時(shí)間應(yīng)用是否具有某些潛在的毒性一直是人們爭(zhēng)論的問(wèn)題。如鄭海英等[8]研究發(fā)現(xiàn),添加一定量表皮生長(zhǎng)因子EGF有助于減少胚胎細(xì)胞凋亡和壞死數(shù)目,但當(dāng)EGF濃度達(dá)0.1 mg·L-1時(shí),它不僅抑制了胚胎的正常發(fā)育,還增加了胚胎細(xì)胞凋亡和壞死率,并對(duì)胚胎細(xì)胞產(chǎn)生損傷和毒害作用;Tichelaar等[9]發(fā)現(xiàn)FGF-7在鼠肺上皮的過(guò)高表達(dá)又可引起胚胎期鼠肺上皮的異常發(fā)育,其組織學(xué)改變類似肺囊腺瘤,正常的肺泡結(jié)構(gòu)消失,最終導(dǎo)致胚胎期小鼠死亡;喻靜等[10]用大鼠原代睪丸支持細(xì)胞進(jìn)行aFGF生殖毒性研究,當(dāng)培養(yǎng)液中aFGF達(dá)到較高濃度時(shí),可誘發(fā)細(xì)胞衰老、引發(fā)細(xì)胞結(jié)構(gòu)和功能的改變、與細(xì)胞損傷相關(guān)的c-fos、c-jun和c-myb基因表達(dá)也明顯增加。除此之外,還有為避免野生型生長(zhǎng)因子可能存在的毒性而對(duì)其進(jìn)行改構(gòu)的研究[11-12]。因此,該類藥物的生物學(xué)效應(yīng)即促細(xì)胞增殖和分化作用,是否在大劑量使用時(shí)會(huì)引起胚胎發(fā)育毒性及致畸性,值得關(guān)注。
已有報(bào)道外源性aFGF可抑制ESC向骨骼細(xì)胞的定向分化而促使ESC向心肌細(xì)胞的定向分化,而bFGF卻促進(jìn)ESC向骨骼肌細(xì)胞的分化[13]。當(dāng)某一FGF大劑量單獨(dú)使用時(shí)對(duì)組織分化是否會(huì)有異常影響或不平衡分化,未見(jiàn)報(bào)道。而誘導(dǎo)分化的不均衡可能會(huì)帶來(lái)胚胎先天異常的發(fā)生[14]。本實(shí)驗(yàn)室采用未分化基因Sox-2作為指標(biāo)進(jìn)行藥物毒性的評(píng)價(jià)已得到有效性的驗(yàn)證[4],因此本文用EST模型,按照ECVAM推薦的體外胚胎發(fā)育毒性評(píng)價(jià)方法,采用未分化基因Sox-2表達(dá)量作為衡量分化程度的指標(biāo),對(duì)bFGF的胚胎毒性進(jìn)行了檢測(cè)和判斷。結(jié)果表明bFGF具有弱胚胎毒性。細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察,當(dāng)bFGF的作用濃度高于30 mg·L-1時(shí)3T3和ESC的形態(tài)均有明顯的變化,可見(jiàn)細(xì)胞密度明顯減少,細(xì)胞中出現(xiàn)空泡并有所萎縮,并隨著作用濃度的提高,細(xì)胞幾乎全崩解成黑色碎片。ESC三步法培養(yǎng)結(jié)果顯示,bFGF低劑量組比未加藥組和高劑量組出現(xiàn)心肌搏動(dòng)的時(shí)間要早,可能bFGF在低濃度下促進(jìn)了ESC向心肌細(xì)胞方向分化,而高劑量bFGF的促分化作用消失甚至出現(xiàn)毒性。除此之外,本研究還發(fā)現(xiàn),當(dāng)bFGF作用濃度大于50 mg·L-1時(shí)無(wú)法形成完整的擬胚體。
總之,本實(shí)驗(yàn)按照ECVAM推薦的體外胚胎發(fā)育毒性評(píng)價(jià)方法對(duì)bFGF進(jìn)行了初步的發(fā)育毒性評(píng)價(jià),結(jié)論是bFGF具有弱胚胎毒性。而不同濃度bFGF作用ESC在發(fā)育過(guò)程中內(nèi)、中、外三胚層的各個(gè)基因以及蛋白的變化還需要進(jìn)一步研究,從而更全面的了解bFGF在整個(gè)胚胎發(fā)育過(guò)程中對(duì)不同胚層發(fā)育的影響,以期為臨床用藥提供參考。
[1]陳明玉.小鼠胚胎成纖維細(xì)胞的分離培養(yǎng)[J].實(shí)驗(yàn)動(dòng)物科學(xué),2010,27(3):7-9.
[1]Chen M Y.Study on isolation and culture of mouse embryonic fibroblast[J].Lab Anim Sci,2010,27(3):7-9.
[2]徐 蘭,劉敏英.小鼠胚胎干細(xì)胞的培養(yǎng)——飼養(yǎng)層的制備
[J].細(xì)胞生物學(xué)雜志,2009,31(2):291-2.
[2]Xu L,Liu M Y.Culture of mouse embryonic stem cells-preparation of feeder layer[J].Chin J Cell Biol,2009,31(2):291-2.
[3]Murabe M,Yamauchi J,F(xiàn)ujiwara Y,et al.A novel embryotoxic estimation method of VPA using ES cells differentiation system[J].Biochem Biophys Res Commun,2007,352(1):164-9.
[4]許 華,何 清,鄧淑琴,查慶兵.Sox-2基因表達(dá)的變化在小鼠EST模型藥物胚胎毒性評(píng)價(jià)中的應(yīng)用[J].中國(guó)病理生理雜志,2011,27(5):985-90.
[4]Xu H,He Q,Deng S Q,Zha Q B.Expression of Sox-2 in mouse embryonic stem cell test for screening drugs with embryotoxicity[J].Chin J Pathophysiol,2011,27(5):985-90.
[5]Scholz G,Pohl I,Genschow E,et al.Embryotoxicity screening using embryonic stem cellsin vitro:correlation toin vivoteratogenicity[J].Cells Tissues Organs,1999,165(3-4):203-11.
[6]Zur Nieden N I,Ruf L J,Kempka G,et al.Molecular markers in embryonic stem cells[J].Toxicol Vitro,2001,15(4-5):455-61.
[7]Genschow E,Spielmann H,Scholz G,et al.Validation of the embryonic stem cell test in the international ECVAM validation study on threein vitroembryotoxicity tests[J].Altern Lab Anim,2004,32(3):209-44.
[8]鄭海英,楊炳壯,楊春艷,等.表皮生長(zhǎng)因子對(duì)水牛胚胎體外發(fā)育及凋亡的影響[J].畜牧與獸醫(yī),2011,43(6):8-11.
[8]Zheng H Y,Yang B Z,Yang C Y,et al.Effect of epidermal growth factor on development and apoptosis of buffalo embryoin vitro[J].Anim Husb Veter Med,2011,43(6):8-11.
[9]Tichelaar J W,Lu W,Whitsett J K.Conditional expression of fibroblast growth factor-7 in the developing and mature lung[J].J Biol Chem,2000,275(16):11858-64.
[10]喻 靜,許 華,姚成燦,等.rhaFGF對(duì)大鼠睪丸支持細(xì)胞 cfos、c-jun、c-myb mRNA 表達(dá)的影響[J].毒理學(xué)雜志,2010,24(1):80-3.
[10]Yu J,Xu H,Yao C C,et al.Effects of rhaFGF on Sertoli cell of rat c-fos,c-jun,c-myb mRNA expression[J].J Toxicol,2010,24(1):80-3.
[11]鄭 青,彭 菲,李校堃,等.haFGF和nm-haFGF過(guò)表達(dá)對(duì)乳腺腫瘤細(xì)胞增殖及c-fos、c-jun mRNA表達(dá)的影響[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2006,22(4):402-7.
[11]Zheng Q,Peng F,Li X K,et al.Effects of overexpression of haFGF and nm-haFGF on breast cancer cell multiplication and c-fos,c-jun mRNA expression[J].Chin Pharmacol Bull,2006,22(4):402-7.
[12]徐雅玲,黃巨恩,劉華鋼.白花丹素致體外培養(yǎng)肝細(xì)胞的損傷及改構(gòu)型酸性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子對(duì)肝細(xì)胞的保護(hù)作用[J].
中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2011,27(6):786-90.
[12]Xu Y L,Huang J E,Liu H G.Protective effects of MaFGF on plumbagin-induced injuries of rats’hepatocytesin vitro[J].Chin Pharmacol Bull,2011,27(6):786-90.
[13]Hidai C,Masako O,Ikeda H,et al.FGF-1 enhanced cardiogenesis in differentiating embryonal carcinoma cell cultures,which was opposite to the effect of FGF-2[J].J Mol Cell Cardiol,2003,35(4):421-5.
[14]Murabe M,Yamauchi J,F(xiàn)ujiwara Y,et al.Estimation of the embryotoxic effect of CBZ using an ES cell differentiation system[J].Biochem Biophy Res Commun,2007,356(3):739-44.