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    重組降血壓肽IYPR的分離與穩(wěn)定性研究*

    2012-11-21 02:40:30黃六容王薇薇馬海樂白慧敏鞠英姿雷雪香
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2012年9期

    黃六容,王薇薇,馬海樂,白慧敏,鞠英姿,雷雪香

    (江蘇大學(xué)食品與生物工程學(xué)院江蘇省農(nóng)產(chǎn)品物理加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇鎮(zhèn)江,212013)

    高血壓是常見的心血管疾病,發(fā)病率高,常伴有心臟、血管、肺以及腎臟等器官功能性或器質(zhì)性改變,是引發(fā)心、腦、腎和眼血管等各種并發(fā)癥的一個(gè)重要危險(xiǎn)因素[1]。目前市場上廣泛使用的化學(xué)合成的抗高血壓藥物長期服用會(huì)對人的消化系統(tǒng)、心腦腎等器官造成危害,醫(yī)務(wù)人員與患者更青睞于非化學(xué)合成藥物療法[2-3]。因此,在治療高血壓藥物的研究中,降血壓肽的研究已成為熱點(diǎn)。

    降血壓肽是一種血管緊張素轉(zhuǎn)移酶(Angiotensin I-Converting Enzyme,ACE)抑制劑,通過抑制血漿和血管內(nèi)皮細(xì)胞ACE的活性,調(diào)節(jié)腎素-血管緊張素系統(tǒng)和激肽釋放酶-激肽系統(tǒng)起到降血壓的作用[4]。目前,降血壓肽主要通過酶解法從天然蛋白中分離獲得,由于分離純化工藝復(fù)雜、產(chǎn)量低而難以產(chǎn)業(yè)化[5-7]。利用基因工程法制備降血壓肽生產(chǎn)周期短,不受原料限制,分離純化工藝簡單,便于大規(guī)模生產(chǎn),因此具有廣闊的前景。

    本試驗(yàn)在成功構(gòu)建基因工程菌的基礎(chǔ)上,研究了ACE抑制劑IYPR(Ile-Tyr-Pro-Arg)的分離純化方法,并對其熱穩(wěn)定性、耐酸堿性和抗腸道酶解能力進(jìn)行研究,以確定所制備的降血壓肽活性是否穩(wěn)定。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    Multiskan FC全波長酶標(biāo)分析儀,美國熱電公司;GA92-ⅡDB超聲細(xì)胞破碎機(jī),無錫上佳生物技術(shù)有限公司;LC-20高效液相色譜儀,日本島津;Thermo LXQ液相色譜離子阱質(zhì)譜聯(lián)用儀,美國熱電公司。

    大腸桿菌BL21-MIR7,本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建,具體構(gòu)建方法過程參考文獻(xiàn)[8];透析袋,美國光譜醫(yī)學(xué)公司;Sephadex G-15,臺(tái)州市四甲生化塑料廠;His標(biāo)簽純化樹脂,Biomiga公司;呋喃基-丙烯酰-苯基-甘氨酰-甘氨酸(FAPGG),Sigma公司;胃蛋白酶、胰蛋白酶,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 菌體的培養(yǎng)與獲得

    取重組大腸桿菌單菌落,用5 mL LB液體培養(yǎng)基(含50 μg/mL卡那霉素)于37℃搖床培養(yǎng)12 h,活化后的菌種按1%接種量接種于含有150 mL LB培養(yǎng)基(含50 μg/mL卡那霉素)的500 mL三角瓶中,37℃恒溫?fù)u床培養(yǎng)至 OD600為1.0時(shí),添加異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)至終濃度0.6 mmol/L,37℃誘導(dǎo) 7 h,5 000 r/min離心10 min,收集菌體,菌體用0.9%NaCl洗滌2次后于-20℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.2 重組蛋白的提取與純化

    取濕重為1 g的菌體,反復(fù)凍融3次,加入破菌緩沖液 8 mL(50 mmol/L Tris-HCl,1 mmol/L EDTA,100 mmol/L NaCl,pH 8.0),400 W 超聲 40 次(每次超聲時(shí)間和間隔時(shí)間均為2 s),破碎液于4℃、10 000 r/min離心10 min,收集沉淀。沉淀加入3 mL包涵體洗滌液I(50 mmol/L Tris-HCl,10 mmol/L EDTA,100 mmol/L NaCl,0.2%Triton X -100,pH 8.0)1次,再用3 mL包涵體洗滌液II(50 mmol/L Tris-HCl,100 mmol/L NaCl,pH 8.0)洗滌2 次,沉淀溶于2 mL包涵體溶解液(50 mmol/L Tris-HCl,8 mol/L尿素,300 mmol/L NaCl,pH 8.0),4 ℃溶解 3 h,10 000 r/min離心10 min收集上清液。收集的上清液采用Ni2+-NTA His標(biāo)簽純化樹脂進(jìn)行純化,用含有1 mmol/L、20 mmol/L和200 mmol/L咪唑的包涵體溶解液洗去殘留樣品、雜蛋白和目的蛋白。

    1.2.3 重組蛋白的腸激酶酶切與標(biāo)簽的去除

    將親和柱回收的目的蛋白,用透析袋(3 500 u)脫鹽24 h,凍干后用含有2 mol/L尿素的Tris-Cl溶解,溶解液與1/10體積的10×腸激酶酶切緩沖液(500 mmol/L Tris-HCl,10 mmoL CaCl2,1%Tween-20,2 U/mL,pH 8.0)混合37℃反應(yīng)24 h。酶切反應(yīng)結(jié)束后,再用透析袋(500 u)脫鹽24 h,袋中液于4℃、10 000 r/min離心10 min,獲得的沉淀用含8 mol/L尿素的Tris-Cl緩沖液溶解。

    1.2.4 串聯(lián)多肽的胰蛋白酶酶切與純化

    將純化的串聯(lián)多肽用pH8.0的Tris-Cl稀釋至0.5 mg/mL,加入終濃度為0.05 mg/mL的胰蛋白酶,37℃溫浴反應(yīng)4 h后,100℃加熱10 min滅酶。反應(yīng)液用Sephadex G-15純化,檢測波長為220 nm,上樣量為2 mL,蒸餾水洗脫速度1 mL/min,由HW-2000色譜工作站系統(tǒng)記錄洗脫曲線并收集洗脫峰。

    1.2.5 多肽的結(jié)構(gòu)鑒定

    用Thermo LXQ質(zhì)譜儀分析降血壓肽的分子質(zhì)量。離子源為ESI,質(zhì)量掃描范圍為50~1 200 u。一級MS掃描完成后,選擇所需的肽段離子進(jìn)行 MS/MS分析。

    1.2.6 ACE抑制活性的測定

    體外活性檢測采用FAPGG分光光度法。FAPGG最大吸收峰在340 nm,經(jīng)ACE酶解后變成FAP和GG,從而發(fā)生在340 nm的吸光度下降。通過測定吸光度變化速度可以計(jì)算出ACE酶的活性。樣品具體加樣體積和計(jì)算方法參照文獻(xiàn)[9]進(jìn)行。

    1.2.7 IYPR的熱穩(wěn)定性

    將溶液多肽IYPR的pH調(diào)至8.3,分別在25℃,37℃、50℃、70℃和90℃處理不同時(shí)間,冷卻到室溫后測其ACE抑制活性。

    1.2.8 IYPR的酸堿穩(wěn)定性

    將溶液多肽IYPR的pH分別調(diào)至2.0、4.0、6.0、8.0、10.0和12.0,然后在37℃保溫不同時(shí)間,調(diào)回pH值到8.3,測定其ACE抑制活性。

    1.2.9 IYPR的抗消化道酶酶解能力

    參考Wu等[10]報(bào)道的方法,用0.1 mol/L HCl將多肽溶液的pH調(diào)到2.0,加入終濃度為0.1 mg/mL的胃蛋白酶,37℃保溫2 h,然后用0.1 mol/L NaOH將多肽溶液的pH調(diào)至8.0,加入終濃度為0.1 mg/mL的胰蛋白酶,37℃保溫4 h,沸水浴10 min,鈍化酶,4 000 r/min離心10 min,取上清測定ACE抑制活性。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 重組蛋白的親和層析純化

    重組蛋白含有6×His標(biāo)簽,Ni2+-NTA樹脂具有同His融合蛋白高親和力結(jié)合的特點(diǎn)。包涵體溶解液過親和層析柱后,依次收集樣品穿透液、洗雜液和洗脫液,經(jīng)Tricine-SDS-PAGE分析,結(jié)果如圖1所示。可見2號(hào)樣品穿透液基本不含目的蛋白,3號(hào)洗雜液顯示雜蛋白基本去除,4號(hào)為200 mmol/L咪唑洗脫液,為目的蛋白,其純度達(dá)到90%。

    圖1 重組蛋白親和層析純化電泳圖譜

    2.2 重組蛋白的腸激酶酶切與標(biāo)簽的去除

    上游His標(biāo)簽序列與目的肽通過腸激酶的酶切位點(diǎn)Asp-Asp-Asp-Asp-Lys連接,腸激酶可將融合蛋白中的His標(biāo)簽切下。電泳結(jié)果見圖2。分子質(zhì)量約為8.0 ku(2號(hào)條帶)的重組蛋白經(jīng)過酶切后形成了兩個(gè)分子質(zhì)量更小(3號(hào)條帶)的蛋白,且切開的片段大小符合理論值,其中最小的片段是7個(gè)IYPR的串聯(lián)體,分子質(zhì)量約為3.7 ku。

    經(jīng)過酶切后,IYPR的串聯(lián)體由于疏水性極強(qiáng),在2 mol/L尿素的緩沖液中只有少量溶解,所以會(huì)沉淀析出。而腸激酶反應(yīng)前,IYPR的串聯(lián)體蛋白與標(biāo)簽結(jié)合在一起,標(biāo)簽的親水性使得一定量的重組蛋白在2 mol/L尿素中可以順利溶解。為了去除標(biāo)簽部分,使用透析脫鹽法讓串聯(lián)多肽析出,標(biāo)簽留在溶液,然后經(jīng)過離心得到目的肽。圖2中4號(hào)帶為析出的沉淀,為7個(gè)IYPR的串聯(lián)體,純度約為92%,5號(hào)帶為上清液中的標(biāo)簽。

    圖2 重組蛋白的腸激酶酶切電泳圖譜

    2.3 Sephadex G-15純化降血壓肽

    胰蛋白酶酶切后的樣品用Sephadex G-15對其進(jìn)一步分離純化,洗脫曲線如圖3所示。從圖3可以看出,胰蛋白酶反應(yīng)后的混合液經(jīng)過Sephadex G-15純化后只有一個(gè)主峰,由于胰蛋白酶濃度較小,所以胰蛋白酶的峰不是很明顯。

    圖3 降血壓肽Sephadex G-15凝膠層析圖

    2.4 多肽結(jié)構(gòu)的鑒定

    經(jīng)二級質(zhì)譜分析得到MS/MS圖譜(圖4),根據(jù)可能產(chǎn)生的碎片可知,只要從圖譜上找出3個(gè)y,即可確定該4肽的序列。由圖可見,y1=175,y2=272,y3=435均可在圖譜中找到,因此可以判定這個(gè)肽的序列為Ile-Tyr-Pro-Arg。

    2.5 IYPR的熱穩(wěn)定性

    不同溫度處理對IYPR活性的影響如圖5所示。從圖5可以看出,當(dāng)溫度低于50℃時(shí),IYPR的ACE抑制活性隨時(shí)間的延長幾乎保持不變;當(dāng)90℃處理5 h時(shí),其ACE抑制率仍然為初始值的90%。此試驗(yàn)結(jié)果表明:降血壓肽IYPR具有較好的熱穩(wěn)定性。

    2.6 IYPR的酸堿穩(wěn)定性

    圖4 純化多肽的MS-MS圖譜

    圖5 溫度對多肽IYPR活性的影響

    不同pH對多肽IYPR活性的影響如圖6所示。從圖6可見,在37℃條件下,當(dāng)處理pH為2~10時(shí),IYPR的活性隨時(shí)間的延長幾乎保持不變;在處理pH為12時(shí),IYPR的活性隨時(shí)間的延長逐漸下降,當(dāng)處理時(shí)間為5 h時(shí),其ACE抑制率為初始值的87%??梢钥闯?,降血壓肽IYPR在酸性、中性和弱堿性條件下都很穩(wěn)定,在強(qiáng)堿性條件下活性會(huì)下降。

    圖6 pH對多肽IYPR活性的影響

    2.7 IYPR的抗消化道酶酶解能力

    確定一個(gè)多肽是否為真正降血壓肽,最直接的方法就是通過動(dòng)物試驗(yàn)驗(yàn)證[11],但這樣會(huì)造成檢測的繁瑣和大量經(jīng)費(fèi)的浪費(fèi)。在胃腸道消化酶作用下,多肽可能抵抗消化或降解失活,或產(chǎn)生新的ACE抑制肽[12]。所以在進(jìn)行體內(nèi)活性前,先進(jìn)行體外模擬消化道環(huán)境研究十分必要。

    多肽IYPR經(jīng)過胃蛋白酶和胰蛋白酶消化后的活性如圖7所示,結(jié)果顯示,經(jīng)過胃蛋白酶消化后,IYPR的ACE活性升高了13.0%,說明IYPR可能被降解為活性更強(qiáng)的物質(zhì),而經(jīng)過胰蛋白酶消化后,其活性基本沒有變化。因?yàn)樵谥苽銲YPR時(shí)就已經(jīng)利用了胰蛋白酶將多肽串聯(lián)體酶切成單體,所以胰蛋白酶消化處理對活性影響不大。

    圖7 消化道酶對IYPR的ACE抑制活性的影響

    3 討論

    降血壓肽IYPR的作用機(jī)理是作為競爭性抑制劑與ACE結(jié)合,使得血管緊張素II的生成和激肽的破壞均減少,從而達(dá)到降低血壓的目的。IYPR最初是從米酒中分離提取得到的活性肽[13],食品源的降血壓肽降壓溫和、持久、安全可靠且對正常血壓無影響,無副作用,同時(shí)具有減肥、免疫調(diào)節(jié)、易消化吸收等功能,具有良好的應(yīng)用前景。但通過酶解從食品中提取得到純度高的肽一般要經(jīng)過很多分離純化過程,產(chǎn)率也較低。本文通過基因工程法表達(dá)得到IYPR,經(jīng)過幾步純化后,產(chǎn)品純度較高,活性好。針對酶解制備降血壓肽的不足,基因工程技術(shù)和微生物發(fā)酵手段為降血壓肽的大規(guī)模生產(chǎn)帶來了契機(jī)。

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