余少鴻,湯榮春,Per H Basse
(1.云南省昆明市第一人民醫(yī)院普外科 650011;2.美國匹茲堡大學腫瘤中心,匹茲堡PA 15213-1863)
細胞免疫在腫瘤免疫中發(fā)揮著重要的作用,其中自然殺傷細胞(NK細胞)及細胞毒性T細胞(CTL細胞)是體內主要的免疫細胞[1]。有研究表明,組織相容性抗原Ⅰ類(MHCⅠ)限制性導致CTL細胞不能有效殺滅腫瘤細胞。下調腫瘤細胞表面人類白細胞抗原(HLA)是腫瘤細胞逃逸CTL細胞重要原因之一[2]。MHCⅠ類抗原部分或全部缺失是黑色素瘤對CTL細胞不敏感因素之一[3-4]。NK細胞可直接殺傷血液循環(huán)的腫瘤細胞及腫瘤組織[5],并且對黑色素瘤肺轉移細胞也有殺滅作用[6-8]。細胞因子白細胞介素2(IL-2)、IL-12和IL-18可增強其殺傷及分泌功能[9]。因此,現(xiàn)將本研究NK細胞上清液提高CTL細胞對腫瘤細胞殺傷力及機制報道如下。
1.1 實驗動物與腫瘤細胞 選擇匹茲堡大學腫瘤中心Jackson實驗室無菌環(huán)境飼養(yǎng)的C57BL/6雌性裸鼠,8~12周齡,體質量20~30 g;M05黑色素瘤細胞由Per H Basse實驗室保存培養(yǎng),于RPMI1640液中常規(guī)培養(yǎng)。
1.2 NK及CTL細胞表型檢測 從C57BL/6裸鼠提取出脾臟,磨碎,使之成單細胞懸液;1 200 r/min,離心5 min;溶解紅細胞3 min,再離心,過濾,制成脾細胞懸液。計數,T75培養(yǎng)瓶中加入25 mL培養(yǎng)液及6 000 IU/mL IL-2培養(yǎng)。2 d后,用抗CD3抗體磁珠(Dynal Biotech,Lake Success,NY,USA)法純化,敲除T細胞,制成NK細胞,再加入6 000 IU/mL IL-2培養(yǎng)2~3 d后,制得活化的NK細胞。收獲細胞,把每管0.5×107/mL細胞離心,取沉淀,混勻,添加抗體NK 1.1+、NKp 46、CD3+、CD4+和CD8+各2μL,流式細胞儀(fluorescence activated cell sorter,F(xiàn)ACS)檢測表型。NK細胞表型:NKp46>90%,NK1.1+>90%,CD8+<2%,CD4+<2%。同上提取脾細胞,加入8μg/mL PHA和600 IU/mL IL-2培養(yǎng)。2 d后,可見大量細胞聚集成團,靜置5~7 min,輕輕拋棄上清液,即可獲得細胞團塊,再加入600 IU/mL IL-2培養(yǎng)2 d后,即可制得CTL細胞。CTL細胞表型:CD8+>90%,CD3+>90%,NK1.1+<5%,CD4+<2%。NK細胞在IL-2,IL-2+IL-12,IL-2+IL-18或IL-2+IL-12+IL-18條件下培養(yǎng),提取上清液。同上法準備NK細胞,用抗CD3磁珠法純化,再加入6 000 IU/mL IL-2培養(yǎng)1 d后,加入IL-12(10 ng/mL)和IL-18(100 ng/mL)或同時加入IL-12(10 ng/mL)及IL-18(100 ng/mL),再培養(yǎng)48 h后,2 000 r/min離心10 min,收集上清液,-80℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
1.3 ELISA法檢測上清液的IFNγ含量 將各種細胞因子活化的NK細胞上清液分為4組,分別為NK上清液,NK+IL-12上清液,NK+IL-18上清液,NK+IL-12+IL-18上清液,按照說明書應用雙抗體夾心ELISA法檢測IFNγ,重復3次。
1.4 檢測M05細胞表面MHCⅠ(H-2Kb)表達 收集M05細胞,調整細胞密度為1×107/mL,與NK細胞在IL-2,IL-2+IL-12,IL-2+IL-18,IL-2+IL-12+IL-18條件下提取的上清液125μL孵育過夜。1 d后,收獲所有腫瘤細胞,加入H-2Kb抗體染色30 min,PBS緩沖液洗滌2次后,0.25%多聚甲醛固定,F(xiàn)ACS計數5 000細胞,檢查MHCⅠ表達。
1.5 檢測NK細胞對CTL細胞的殺傷率 將51Cr溶液與靶細胞[與不同NK上清液及干擾素γ(IFNγ)]10 ng/mL培養(yǎng)過夜M05細胞,高表達MHCⅠ類分子;或預先用6μg/mL IFNγ抗體與1∶8 NK細胞上清液及IFNγ10 ng/mL各1 mL孵育30 min后,再與NK上清液培養(yǎng)過夜的M05細胞)混合,實驗共分為6組,分別為M05組(陰性對照組),M05+IFNγ組(陽性對照組),M05+NK上清液組,M05+NK+IL-12上清液組,M05+NK+IL-18上清液組,M05+NK+IL-12+IL-18上清液組,于37℃培養(yǎng)1 h左右,洗去游離的51Cr后,即可得到51Cr標記的靶細胞。收集CTL細胞,將待檢細胞毒性的細胞與51Cr標記的靶細胞混合4 h(比例約為200∶1),用γ射線測量儀檢測上清液中的51Cr放射脈沖數(cpm)值,即可計算出待檢細胞殺傷活性的高低。
特異性腫瘤細胞殺傷率(%)=(特異性釋放-自發(fā)性釋放)/(最大量釋放-自發(fā)性釋放)×100%
1.6 統(tǒng)計學處理 應用SPSS 10.0軟件進行統(tǒng)計學處理,計量資料以±s表示,IFNγ抗體封閉后采用配對設計t檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 NK細胞上清液對M05細胞表面MHCⅠ表達的結果 IL-2能夠激活NK細胞增殖,結合其他細胞因子如IL-12及IL-18,能大量刺激NK細胞增殖,釋放大量細胞因子,從IL-2、IL-2+IL-12、IL-2+IL-18、IL-2+IL-12+IL-18條件下活化的NK細胞提取的上清液,即使稀釋濃度為1∶8,也能有效提高M05細胞表面MHCⅠ表達。加入6μg/mL IFNγ抗體與NK上清液125μL孵育30 min,再與腫瘤細胞孵育過夜后,升高的MHCⅠ降至正常。見表1。
表1 M05細胞與1∶8 NK上清液+/-IFNγ抗體MHC平均熒光強度的表達
2.2 IL-2、IL-2+IL-12、IL-2+IL-18、IL-2+IL-12+IL-18活化NK細胞分泌的IFNγ含量 NK+IL-12上清液、NK+IL-18上清液、NK+IL-12+IL-18上清液的IFNγ高于NK上清液的IFNγ含量(P<0.05)。見表2。
表2 NK上清液、NK+IL-12上清液、NK+IL-18上清液、NK+IL-12+IL-18上清液的IFNγ含量
2.3 CTL細胞對黑色素瘤靶細胞的殺傷活性 M05黑色素瘤細胞高表達OVA抗原及低表達MHCⅠ類分子,與NK上清液孵育過夜后能提高M05細胞表面MHCⅠ類分子的表達,CTL細胞對靶細胞的殺傷活性明顯增強(P<0.05),見圖1。
2.4 CTL細胞對腫瘤細胞4 h的殺傷率 1∶8 NK細胞上清液與CTL細胞孵育過夜后,可見與NK細胞上清液孵育的CTL細胞并不能提高CTL細胞對M05細胞殺傷率,見圖2。
圖1 CTL對靶細胞4 h細胞毒性(n=3)
圖2 CTL細胞對腫瘤細胞4 h的殺傷率(n=3)
本研究證實,體內外活化NK細胞需要IL-2維持,其他細胞因子,如IL-12及IL-18能增強其作用,IL-2是激發(fā)細胞因子如TNFα及IFNγ級聯(lián)反應的關鍵因素。作者資料顯示IL-2、IL-2+IL-12、IL-2+IL-18、IL-2+IL-12+IL-18條 件下培養(yǎng)NK細胞在形態(tài)及功能上具有明顯差異,并且IL-2+IL-12、IL-2+IL-18、IL-2+IL-12+IL-18培養(yǎng)NK細胞分泌的IFNγ比僅用IL-2培養(yǎng)NK細胞更高,并 且,IL-12,IL-18需 要 與IL-2共同刺激才能使NK細胞活化并分泌大量IFNγ[12]。研究證實,不同細胞因子刺激的NK細胞上清液均能提高M05細胞MHCⅠ類分子的表達,并且只需要1∶8上清液即可顯著提高M05細胞MHCⅠ表達,其作用機理與NK細胞上清液中的IFNγ含量有關,抑制IFN的表達即可降低腫瘤細胞表面MHCⅠ分子。
CTL細胞在體內能直接破壞黑色素瘤細胞,因此,CTL細胞已經成為腫瘤免疫的熱點之一[13]。本研究結果顯示,正常M05細胞低表達MHCⅠ類分子而高表達OVA抗原,因此,CTL細胞對其殺傷率低,但M05細胞與NK上清液培養(yǎng)后,提高黑色素瘤細胞表面MHCⅠ類分子的表達,從而提高CTL細胞對黑色素瘤細胞的殺傷性,這種殺傷作用通過提高黑色素瘤細胞表面MHCⅠ類分子的表達而發(fā)揮間接作用,為進一步研究聯(lián)合應用NK及CTL細胞協(xié)調殺傷腫瘤細胞提供良好的理論基礎。
[1]Goding S,Yang Q,Mi Z,et al.Targeting of products ofgenes to tumor sites using adoptively transferred A-NK and T-LAK cells[J].Cancer Gene Ther,2007,14(5):441-450.
[2]Aptsiauri N,Cabrera T,Mendez R,et al.Role of altered expression of HLA class I molecules in cancer progression[J].Adv Exp Med Biol,2007,601:123-131.
[3]Mendez R,Rodriguez T,Del CA,et al.Characterization of HLA class I altered phenotypes in a panel of human melanoma cell lines[J].Cancer Immunol Immunother,2008,57(5):719-729.
[4]Rodriguez T,Méndez R,Roberts CH,et al.High frequency of homozygosity of the HLA region in melanoma cell lines reveals a pattern compatible with extensive loss of heterozygosity[J].Cancer Immunol Immunother,2005,54(2):141-148.
[5]Basse P,Goldfarb RH.Localization of immune effector cells to tumor metastases[J].Immunol Ser,1994,61:149-158.
[6]Basse P,Goldfarb RH,Herberman RB,et al.Accumulation of adoptively transferred A-NK cells in murine metastases:kinetics and role of interleukin-2[J].In Vivo,1994,8(1):17-24.
[7]Yang Q,Hokland ME,Bryant JL,et al.Tumor-localization by adoptively transferred,interleukin-2-activated NK cells leads to destruction of well-established lung metastases[J].Int J Cancer,2003,105(4):512-519.
[8]Kjaergaard J,Hokland M,Nannmark U,et al.Infiltration patterns of short-and long-term cultured A-NK and TLAK cells following adoptive immunotherapy[J].Scand J Immunol,1998,47(6):532-540.
[9]Lauwerys BR,Garot N,Renauld JC,et al.Cytokine production and killer activity of NK/T-cells derived with IL-2,IL-15,or the combination of IL-12 and IL-18[J].J Immunol,2000,165(4):1847-1853.
[10]Tsai L,Ljunggren HG,Hansson M,et al.Effect of IFNgamma treatment and in vivo passage of murine tumor cell lines on their sensitivity to lymphokine-activated killer(LAK)cell lysis in vitro;association with H-2 expression on the target cells[J].Int J Cancer,1989,44(4):669-674.
[11]Timothy NJ,Bullock,David W,et al.Manipulation of avidity to improve effectiveness of adoptively transferred CD8(+)T cells for melanoma immunotherapy in human MHC class I-transgenic mice[J].Immunology,2001,167(10):5824-5831.
[12]余少鴻,湯榮春,溫小明.不同細胞因子活化的NK細胞形態(tài)及功能的研究[J].重慶醫(yī)學,2011,40(21):2099-2101.
[13]余少鴻,湯榮春,Per H Basse.聯(lián)合應用NK細胞及CTL對黑色素瘤B16細胞的影響[J].重慶醫(yī)學,2012;41(9):878-880.