尹麗波,趙啟苗,林桂梅,侯 影,賈天柱
(1.遼寧中醫(yī)藥大學(xué) 藥學(xué)院國家中醫(yī)藥管理局中藥炮制重點研究室/遼寧省中藥炮制工程技術(shù)研究中心,遼寧 大連 116600;2.遼寧中醫(yī)藥大學(xué) 杏林學(xué)院,遼寧 沈陽 110167)
枳實為蕓香科植物酸橙Citrus aurantiumL.及其栽培變種或甜橙Citrus sinensis Osbeck的干燥幼果,味苦、辛、酸,性微寒,歸脾胃經(jīng),具有破氣消積、化痰散痞的功能,常用于積滯內(nèi)停、痞滿脹痛等癥[1]。枳實主要有效成分有生物堿,如辛弗林、N-甲基酪胺等;黃酮類成分,如橙皮苷、柚皮苷和新橙皮苷等[2]。枳實歷代有多種炮制方法,但均需先切制成枳實片,再根據(jù)需要按不同方法炮制。此外,清代吳儀洛在《本草從新》中也曾提出“藥肆中俱切為飲片”,中藥必須切成飲片才能用于臨床[3]。目前,切制枳實飲片工藝控制主要憑經(jīng)驗,缺乏具體的工藝參數(shù)。本試驗以辛弗林含量和柚皮苷、橙皮苷、新橙皮苷的含量及出膏率為指標對切制枳實工藝進行優(yōu)選,為規(guī)范切制枳實的炮制工藝提供技術(shù)參數(shù),為切制枳實飲片的質(zhì)量控制提供一定的科學(xué)依據(jù)。
FA1004B電子天平(上海精密科學(xué)儀器有限公司);METTLER AE240型十萬分之一分析天平(瑞士METTLER);KQ-250DB型數(shù)控超聲波清洗器(超聲電功率250W,頻率40kHz);DG101-2A烘箱;日本島津LC-20AT液相色譜儀(SPD-M20A檢測器,LC-20AB泵,CTO-20A柱溫箱,SIL-20A自動進樣器,CBM-20A數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)換模器);島津LC-Solution色譜數(shù)據(jù)工作站。
枳實生品購自江西新干縣,經(jīng)鑒定為蕓香科植物酸橙Citrus aurantiumL.的干燥幼果;辛弗林對照品(中國藥品生物制品檢定所,批號110727-200306);柚皮苷對照品(中國藥品生物制品檢定所,批號110722-200309),橙皮苷對照品(中國藥品生物制品檢定所,批號11072-200613);新橙皮苷(上海源葉生物科技有限公司,純度>98%),娃哈哈純凈水;甲醇、乙腈為色譜純;其他試劑均為分析純。
2.1.1 測定條件
色譜柱為Diamonsil C18(5μm,200mm×4.6mm);流動相:甲醇-磷酸水溶液(0.18%磷酸,0.22%十二烷基硫酸鈉)58∶42;流速:1mL·min-1;柱溫:40℃;檢測波長:275nm;進樣量:10μL。色譜見圖1。
2.1.2 對照品溶液的制備
精密稱取辛弗林對照品,置100mL容量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻即得0.1852mg·mL-1的辛弗林對照品溶液。
2.1.3 供試品溶液的制備
取切制枳實樣品適量,粉碎,取中粉1g,精密稱定,置錐形瓶中,精密加入甲醇100mL,稱定重量,超聲提取30min后放冷,再稱重,用甲醇補足減失的重量,搖勻,濾過,精密量取續(xù)濾液50mL至蒸發(fā)皿中,蒸干,稱干膏重。干膏加甲醇溶解,移至10mL量瓶中,用甲醇稀釋至刻度,搖勻,用微孔濾膜(0.45μm)濾過,備用。
圖1 辛弗林對照品及供試品色譜
2.1.4 方法學(xué)考察
(1)線性范圍考察。精密吸取辛弗林對照品溶液1、2、5、10、15、20μL,按“2.1.1”項下操作,并測定峰面積積分值,以進樣量(μg)為橫坐標,峰面積為縱坐標進行線性回歸,得辛弗林線性回歸方程為Y=6E+06X-711551,相關(guān)系數(shù)r=0.9996。線性范圍為0.1852~3.704μg/mL。
(2)精密度試驗。精密吸取供試品溶液10μL,按“2.1.1”項下色譜條件連續(xù)進樣6次,記錄色譜圖,測定峰面積積分值,結(jié)果RSD為1.8%,表明儀器精密度良好。
(3)穩(wěn)定性試驗。精密吸取供試品溶液10μL,分別于0、1、2、4、8、24h進樣分析,按“2.1.1”項下操作,測定供試品中辛弗林含量,結(jié)果RSD為1.8%,表明供試品溶液在24h內(nèi)穩(wěn)定。
(4)重復(fù)性試驗。取同一樣品6份,按“2.1.3”項下制備供試品溶液,“2.1.1”項下色譜條件操作,分別進樣10μL,測定各樣品中辛弗林的平均含量為0.3312%,RSD為1.7%。
(5)加樣回收率試驗。精密稱定6份已知含量枳實樣品0.5g,分別加入0.8924mg·mL-1的辛弗林對照品溶液2mL,按照“2.1.3”項下操作,配制成供試品溶液,按“2.1.3”項下色譜條件進樣操作,計算加樣回收率,結(jié)果辛弗林的加樣回收率為98.75%,RSD為1.6%。結(jié)果見表1。
表1 辛弗林加樣回收率
2.2.1 測定條件
色譜柱:Diamonsil C18(5μm,200mm×4.6mm);流動相:乙腈-0.1%磷酸水溶液(20.5∶79.5);流速:0.6mL·min-1;柱溫:35℃;進樣量:10μL;檢測波長:283nm。色譜見圖2。
2.2.2 對照品溶液的制備
精密稱取柚皮苷對照品1.570mg,置50mL量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,得0.03140mg·mL-1的柚皮苷對照品溶液;精密稱取橙皮苷對照品2.835mg,置50mL量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,得0.0567mg·mL-1的橙皮苷對照品溶液;精密稱取新橙皮苷對照品2.355mg,置50mL量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,得0.0471 mg·mL-1的新橙皮苷對照品溶液。
2.2.3 供試品溶液的制備
按“2.1.3”項下方法操作制得的溶液,精密吸取2mL于100mL量瓶中,加甲醇溶解并稀釋至刻度,用0.45μm的微孔濾膜濾膜濾過,備用。
圖2 黃酮類對照品及供試品色譜
2.2.4 方法學(xué)考察
(1)線性范圍。精密吸取柚皮苷對照品溶液1、5、10、20、50、100μL,按“2.1.1”項下操作,測定峰面積積分值,以進樣量(μg)為橫坐標,峰面積為縱坐標進行線性回歸,得出柚皮苷線性回歸方程為Y=1E+07X-288165,相關(guān)系數(shù)r=0.9999。表明柚皮苷的進樣量在0.0314~3.14μg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。精密吸取橙皮苷對照品溶液1、2、5、10、15、20μL,按“2.1.1”項下色譜條件操作,測定峰面積積分值,以進樣量(μg)為橫坐標,峰面積為縱坐標進行線性回歸,得出橙皮苷線性回歸方程為Y=4E+06X+17543,相關(guān)系數(shù)r=0.9998。表明橙皮苷的進樣量在0.0567~1.134 μg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。精密吸取新橙皮苷對照品溶液1、5、10、20、50、100μL,按“2.1.1”項下色譜條件操作,測定峰面積積分值,以進樣量(μg)為橫坐標,峰面積為縱坐標繪制標準曲線,進行線性回歸,得新橙皮柑線性回歸方程為Y=8E+06X+129867,相關(guān)系數(shù)r=0.9999。表明新橙皮苷的進樣量在0.0471~4.710μg/mL范圍內(nèi)范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
(2)精密度試驗。精密吸取“2.2.2”項下供試品溶液,按“2.2.1”項下色譜條件操作,連續(xù)進樣6次,結(jié)果測定供試品溶液中柚皮苷峰面積RSD為2.1%,橙皮苷峰面積RSD為1.5%,新橙皮柑峰面積RSD為2.4%,表明精密度良好。
(3)穩(wěn)定性試驗。精密吸取“2.2.3”項下供試品溶液10μL,分別于0、1、2、4、8、24h進樣分析,按“2.1.1”項下色譜條件操作,結(jié)果測定柚皮苷峰面積RSD為1.4%,橙皮苷峰面積的RSD為1.9%,新橙皮苷的峰面積RSD為1.1%,表明供試品溶液在24h內(nèi)穩(wěn)定。
(4)重復(fù)性試驗。取同批樣品6份,按“2.2.3”項下制作供試品溶液,“2.2.1”項下色譜條件操作,進樣10μL,測定各樣品中柚皮苷的RSD為2.4%;橙皮苷的RSD為1.8%,RSD為1.7%。
(5)加樣回收率試驗。精密稱定6份已知含量的枳實樣品0.04g,分別加入1.8998mg·mL-1的柚皮苷對照品溶液2mL,按照“2.2.3”項下操作配制成6份加樣供試品溶液,按照“2.2.1”項下色譜條件進樣分析,柚皮苷的加樣回收率為99.11%,RSD為1.2%。結(jié)果見表2。
精密稱定6份已知含量的枳實樣品0.35g,分別加入1.5047mg·mL-1的橙皮苷對照品溶液2mL,按照“2.2.3”項下操作配制成6份加樣供試品溶液,按照“2.2.1”項下色譜條件進樣分析,計算加樣回收率,橙皮苷的加樣回收率為98.05%,RSD為2.1%,結(jié)果見表3。
精密稱定6份已知含量的枳實樣品0.02g,分別加入1.2672mg·mL-1的新橙皮苷對照品溶液2mL,按照“2.2.3”項下操作配制成6份加樣供試品溶液,按照“2.2.1”項下色譜條件進樣分析,計算加樣回收率,結(jié)果新橙皮苷的加樣回收率為99.52%,RSD為1.3%,結(jié)果見表4。
根據(jù)預(yù)實驗,選取浸泡法為枳實的軟化方法。在軟化過程中,考慮到軟化時間(A)、軟化溫度(B)、軟化加水量(C)三個因素為主要影響因素,故將這三個因素作為正交試驗的考察因素,選用L9(3)4正交表安排實驗,每個因素設(shè)計3個水平,因素水平安排見表5,按“2.1”和“2.2”項下色譜條件和制備方法分別測定枳實中辛弗林含量和黃酮(柚皮苷、橙皮苷、新橙皮苷)含量以及出膏率,用加權(quán)平均法計算綜合評分,其中辛弗林的含量,黃酮總含量以及出膏率的權(quán)重分別為0.4,0.4和0.2。
表2 柚皮苷加樣回收率
表3 橙皮苷加樣回收率
表4 新橙皮苷加樣回收率
表5 因素水平
按正交試驗表進行試驗,取枳實藥材100g,加入一定量水,在不同軟化溫度下軟化。取樣測定,根據(jù)測定結(jié)果計算綜合評分。測定數(shù)據(jù)和計算結(jié)果分別見表6、表8,方差分析結(jié)果見表9。
表6 L9(3)4 正交試驗結(jié)果
表7 正交試驗結(jié)果分解
表8 枳實軟化正交試驗因素水平分析
表9 方差分析
表7和表8結(jié)果顯示:因素A對綜合評分的結(jié)果有顯著影響,因素B、C對結(jié)果無顯著影響。極差分析認為各因素的主次順序是A>B>C。最佳工藝條件為A3B3C2,即每100g藥材使用100mL水,在溫度為10℃下,軟化12h。
枳實的切制研究,先將枳實按以下方法進行切制:①橫切,使藥材的厚度為0.5mm;②橫切,使藥材的厚度為1~2mm;③橫切,使藥材的厚度為2~4mm;④縱切,使藥材的厚度為0.5mm;⑤縱切,使藥材的厚度為1~2mm;⑥縱切,使藥材的厚度為2~4mm。分別取上述枳實切片按“2.1.2”和“2.2.2”項下方法制備成樣品,分別測得上述6種樣品中的指標,進行綜合評分,分別為85.44,95.21,90.12,88.32,96.89,90.78。其中切制厚度為1~2mm枳實樣品綜合評分要明顯高于切制成其他厚度的。切制方法的考察,橫切與縱切對枳實樣品的綜合評分影響不大,且枳實藥材切制過程中橫切較縱切容易,故選用橫切作為枳實的切制方法。
為驗證上述最佳工藝的科學(xué)性、穩(wěn)定性和可重復(fù)性,進行了3次驗證實驗,結(jié)果表明正交實驗結(jié)果準確、可靠。結(jié)果見表9。
表9 驗證試驗
本實驗在正交試驗之前做過軟化方法篩選的預(yù)實驗,分別選取浸泡法、淋法和蒸法對枳實進行軟化。結(jié)果表明,蒸法軟化枳實藥材時其指標性成分含量下降幅度較大,可能由于其高溫的緣故,使枳實中的有效成分破壞。淋法與浸泡法軟化的枳實藥材則無明顯差別,且浸泡法比淋法操作簡單,容易掌握,結(jié)合實驗結(jié)果并考慮到生產(chǎn)實際確定選擇浸泡法為枳實藥材的軟化方法。枳實藥材質(zhì)地堅硬,需長時間浸潤才能潤透,但時間不宜過長,加水量不宜過多,以免傷水,軟化藥材時要以“藥透水盡”為標準。枳實中有效成分辛弗林及黃酮類化合物若長時間高溫加熱,可導(dǎo)致其結(jié)構(gòu)破壞,有效成分降低,故本實驗枳實的軟化溫度因素考查范圍規(guī)定為10~30℃[4,5]。
本實驗還對枳實切片以后的烘干溫度進行了初步試驗,發(fā)現(xiàn)樣品在恒溫60℃的烘箱中烘干其有效成分損失不大,但烘干溫度超過60℃,其有效成分損失很大,其主要原因可能是有效成分發(fā)生變化,故枳實切制后烘干溫度不宜超過60℃。本試驗認為枳實的軟化方法為浸泡法,具體為每100g藥材使用100mL水,在10℃下,軟化12h。切制方法為橫切,切制厚度為1~2mm,使得枳實的有效成分損失最小,綜合評分最高。此種軟化和切制工藝合理可行。本實驗選擇多指標進行綜合評價枳實的軟化和切制工藝條件,為中藥切制工藝優(yōu)選提供了較為科學(xué)、全面的思路,也符合中醫(yī)藥治療疾病多成分綜合作用的特點。
[1]國家藥典委員會.中華人民共和國藥典[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:230.
[2]王文凱,劉紅娜,雷丹.不同炮制方法對枳實中柚皮苷和新橙皮苷含量的影響[J].江西中醫(yī)學(xué)院學(xué)報,2007,19(6):50.
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