段建發(fā) 林隆強 陸奕娜
(汕頭出入境檢驗檢疫局 廣東汕頭 515031)
氟菌唑(Triflumizole),又名特富靈、利佛米,農(nóng)用廣譜殺菌劑[1,2],為甾醇脫甲基化抑制劑,是日本曹達株式會社開發(fā)創(chuàng)制的具有保護和治療作用的內(nèi)吸性殺菌劑[3],在植物莖葉內(nèi)傳導(dǎo)性強,可直接作用于侵入植物體內(nèi)的病原菌,抑制病斑蔓延。主要用于麥類、蔬菜、果樹及其他作物的白粉病、黑穗病、銹病、條紋病和瘡茄病的防治,對茶樹炭疽、茶餅病、桃褐腐病也有效。氟菌唑在植物體內(nèi)代謝生成的主要產(chǎn)物為氟菌唑代謝物(Triflumizole metabolite)。
氟菌唑化學(xué)名稱為(E)-4-氯-α,α,α-三氟代-N-(1-咪唑-1-基-2-正丙氧基亞乙基)-鄰-甲苯胺,氟菌唑代謝物化學(xué)名稱為(E)-4-氯-α,α,α-三氟代 -N-(1-氨 -1-基 -2-正丙氧基亞乙基)-鄰-甲苯胺,二者的分子結(jié)構(gòu)示意圖見圖1和圖2。
圖1 氟菌唑分子結(jié)構(gòu)示意圖
圖2 氟菌唑代謝物分子結(jié)構(gòu)示意圖
氟菌唑?qū)θ恕⑿蟮投?,正常使用條件下對作物以及環(huán)境污染小,目前我國尚未制定食品中氟菌唑最大允許殘留量標準。但是近年來,一些貿(mào)易國家實施新技術(shù)壁壘,對部分產(chǎn)品中的氟菌唑設(shè)定了很嚴的最大允許殘留量,最高達0.05mg/kg(日本肯定列表對大米、土豆等產(chǎn)品的限量要求)。
而我國現(xiàn)有的檢測標準SN 0703-1997《出口蔬菜中利佛米殘留量檢驗方法》[4],采用高效液相色譜法,檢測低限為0.1mg/kg,達不到國外的相關(guān)要求。因此,尋找一種簡便快速、準確靈敏的蔬菜水果中氟菌唑及其代謝物的檢測方法十分必要。目前有使用氣相色譜法檢測氟菌唑的研究[5],但未見有氣質(zhì)聯(lián)用法的報道。
本研究采用氣相色譜法-質(zhì)譜聯(lián)用法對進出口番茄中的氟菌唑及其代謝物進行測定和確證,結(jié)果表明,該方法簡便快速、準確靈敏、重復(fù)性好,適合番茄中氟菌唑及其代謝物的定量和確證。
2.1.1 樣品
番茄樣品購于市場。
2.1.2 試劑
氟菌唑標準品:純度為98.5%,Dr.Ehrenstorfer公司提供;氟菌唑代謝物標準品:純度為98.0%,日本 Wako公司提供;弗羅里硅土固相萃取柱:1000mg/6mL,美國Supelco公司;乙腈、丙酮、正己烷:色譜純;水為超純水;氯化鈉:分析純;無水硫酸鈉:650℃灼燒4h,在干燥器內(nèi)冷卻至室溫,儲于密封瓶中備用。
2.1.3 儀器
Agilent7890A/5975C氣相色譜-質(zhì)譜儀:配備電子轟擊源(EI)、7683自動進樣器、增強型化學(xué)工作站,美國Agilent公司;氮氣吹干儀:日本東京理化公司;固相萃取裝置:美國Supelco公司;渦旋混合器:德國IKA公司;離心機:美國enpendorf公司;分析天平:感量為0.0001g 和0.01 g。
2.2.1 色譜條件
HP-5MS石英毛細管柱,30 m ×0.25 mm×0.25μm;進樣口溫度:250℃,自動進樣;進樣方式:不分流;進樣量:1μL;載氣:高純氦(純度99.999%);流速1mL/min;程序升溫:50℃保持2 min,以20℃/min升至200℃,再以10℃/min升至280℃,保持5 min。
2.2.2 質(zhì)譜條件
離子源:EI;電離能量:70eV;離子源溫度:230℃;四極桿溫度:150℃;色譜-質(zhì)譜接口溫度:280℃;溶劑延遲時間:6.0min;采集模式:分組選擇離子監(jiān)測(SIM);第1組(6 min開始):m/z 167、m/z 201、m/z 221、m/z 235;第 2 組(13 min 開始):m/z 278、m/z 179、m/z 206、m/z 287;離子駐留時間均為100 ms。
2.2.3 標準工作液的配置
將氟菌唑、氟菌唑代謝物標準品用正己烷配制成濃度為1000mg/L的標準儲備液,并根據(jù)需要用正己烷稀釋成適當濃度的標準工作液,棕色瓶4℃下保存,有效期3個月。
2.2.4 樣品制備
取番茄樣品可食用部分,切碎后用食品搗碎機將樣品加工成漿狀,混勻備用。
稱取5g試樣(精確至0.1g),置于50 mL離心管中,加入20mL乙腈,3.0 g氯化鈉,渦旋振蕩混勻30 s,超聲提取10 min,4000 r/min 離心 5 min,取上清液4 mL于15 mL離心管中,在氮吹儀上50℃氮氣吹至近干,加入2 mL正己烷溶解殘渣,待凈化。
弗羅里硅土固相萃取柱使用前柱內(nèi)填約10 mm高無水硫酸鈉層,先后用5 mL正己烷溶液和5mL丙酮-正己烷(2+3,V/V)活化固相萃取柱,勿使柱基干燥。將待凈化溶液移入預(yù)先平衡好的弗羅里硅土柱,用20 mL刻度離心管收集淋洗液,用5 mL丙酮-正己烷(2+3,V/V)沖洗該離心管后淋洗弗羅里硅土柱,并重復(fù)1次;將收集淋洗液的離心管置于氮吹儀上50℃氮氣吹至近干,用正己烷溶解并定容至1.0 mL,在旋渦混合器上混勻,供氣相色譜-質(zhì)譜儀測定。
2.2.5 結(jié)果計算
用色譜數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)或按式(1)計算試樣中農(nóng)藥殘留量:
式中:X——試樣中農(nóng)藥的殘留量,單位為mg/kg;
A——樣液中農(nóng)藥的峰面積;
Ci——標準工作液中農(nóng)藥的濃度,單位為μg/mL;
V——樣液最終定容體積,單位為mL;As——標準工作液中農(nóng)藥的峰面積;
m——最終樣液所代表的試樣質(zhì)量,單位為g。
注:計算結(jié)果應(yīng)扣除空白值。
圖3和圖4為氟菌唑及氟菌唑代謝物全掃描(SCAN)質(zhì)譜圖。圖 3 顯示 m/z為 278、202、179、287的4個離子可以作為氟菌唑的特征離子,其中響應(yīng)值最高的278為定量離子;圖4顯示 m/z為167、201、221、235的4個離子可以作為氟菌唑代謝物的特征離子,其中響應(yīng)值最高的167為定量離子。根據(jù)化合物的出峰時間,可以采用分組選擇離子掃描模式,第一組掃描開始時間為第6min,掃描離子為:167、201、221、235;第二組掃描開始時間為第13min,掃描離子為:278、206、179、287。圖 5 為采用分組選擇離子掃描結(jié)果顯示,總離子流出色譜圖的干擾離子更少,背景更干凈。
圖3 氟菌唑質(zhì)譜圖
圖4 氟菌唑代謝物質(zhì)譜圖
圖5 標準物質(zhì)分組選擇離子檢測掃描(SIM)總離子流色譜圖
經(jīng)確證分析被測物質(zhì)量色譜峰保留時間與標準品樣品相一致,并且在扣除背景后的樣品譜圖中,所選擇的離子均出現(xiàn);同時所選擇離子的豐度比與標準樣品相關(guān)離子的相對豐度一致,相似度在允許差之內(nèi)(見表1),則可判定樣品為氟菌唑陽性檢出。本研究采用外標法定量,氟菌唑和氟菌唑代謝物的定量離子、定性離子及標準相對離子豐度見表1。
表1 定性確證時定量離子、定性離子和標準相對離子豐度及最大允許相對偏差
將氟菌唑和氟菌唑代謝物的標準儲備液(1000mg/L)用正己烷稀釋成濃度均為0.01mg/L、0.05mg/L、0.10mg/L、0.20mg/L、0.50mg/L、1.0 mg/L的標準混合工作液。取相同體積進行上機分析,以標準混合工作溶液濃度為橫坐標,以峰面積為縱坐標,繪制外標校準曲線,各回歸方程呈良好的線性關(guān)系:氟菌唑代謝物 y=1.340×104x+147.5(r=0.9995),氟菌唑 y=5.028 ×103x+39.45(r=0.9995) 。
測定低限(LOQ)指信噪比(S/N)大于10時的最低檢測濃度。本方法測定氟菌唑和氟菌唑代謝物的LOQ均為0.01mg/kg,能滿足日常檢測的需要。圖6為0.01mg/kg添加水平的總離子流出色譜圖。
使用番茄作為樣品進行3個水平添加回收率實驗,分別為 0.01mg/kg、0.02mg/kg、0.10mg/kg,每個添加水平重復(fù)6次,結(jié)果見表2。
圖6 0.01mg/kg添加水平的總離子流出色譜
表2 加標回收率和重復(fù)性試驗結(jié)果(n=6)
表2結(jié)果顯示,氟菌唑回收率范圍在82.0% -102.1%之間,氟菌唑代謝物回收率范圍在85.0%-103.2%之間,說明本研究測定的重現(xiàn)性好,符合方法精密度要求。
本研究建立的氣相色譜-質(zhì)譜法測定番茄中氟菌唑殘留量的方法,具有簡便快速、準確靈敏、重復(fù)性好等特點,適合番茄中氟菌唑殘留量確證和定量測定。
[1] 農(nóng)業(yè)大詞典編輯委員會.農(nóng)業(yè)大詞典[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,1998:458-459.
[2] 紀磊.氟菌唑的致突變性及亞慢性毒性研究[J].浙江化工,2007,38(10):28 -30.
[3] 王振榮.農(nóng)藥商品大全[M].北京:中國商業(yè)出版社,1996:473-474.
[4] SN0703-1997出口蔬菜中利佛米殘留量檢驗方法[S].
[5] 吳俐,陳銘學(xué),牟仁祥,等.植物源食品中6種三唑類殺菌劑殘留量的氣相色譜法測定[J].分析測試學(xué)報,2009,28(7):846-848.