白藜蘆醇預(yù)處理對(duì)局灶性腦缺血/再灌注大鼠海馬CA1區(qū)神經(jīng)元凋亡的保護(hù)作用和機(jī)制

方 芳，李 珍，王烈成，祝 延，2，周 藝，柯道平，朱潔平

(1.安徽醫(yī)科大學(xué)生理學(xué)教研室，安徽 合肥 230032;2.蚌埠醫(yī)學(xué)院生理學(xué)教研室，安徽蚌埠 233000;3.安徽醫(yī)科大學(xué)附屬六安醫(yī)院，安徽 六安 237000;4.皖西衛(wèi)生職業(yè)學(xué)院，安徽 六安 237000)

腦缺血性疾病是神經(jīng)系統(tǒng)常見(jiàn)病癥，其中以缺血/再灌注后導(dǎo)致神經(jīng)元凋亡所引起的繼發(fā)性腦損傷危害最大，常導(dǎo)致嚴(yán)重的神經(jīng)功能障礙［1］。如何降低腦缺血病人的發(fā)病率，減少缺血所致神經(jīng)細(xì)胞的凋亡，提高病人的存活率，是目前預(yù)防腦缺血性疾病急需解決的問(wèn)題。白藜蘆醇(resveratrol，Res)是廣泛存在于葡萄、虎杖、花生、決明等植物性食物或藥物中的多酚類(lèi)化合物，近年來(lái)的研究表明Res對(duì)人體許多重要器官，比如腎臟、腦、心臟的缺血損傷都具有保護(hù)作用［2－3］。而缺血預(yù)處理可以減少腦缺血性損傷，減少細(xì)胞的凋亡及壞死［4］。我們近期的研究證明Res預(yù)處理對(duì)腦缺血/再灌注具有一定的神經(jīng)保護(hù)作用［5］，但其保護(hù)作用機(jī)制是否涉及到凋亡及其相應(yīng)的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路，目前尚未見(jiàn)報(bào)道。為此，我們利用TUNEL法和免疫組化法對(duì)大鼠海馬CA1區(qū)神經(jīng)元凋亡及相應(yīng)凋亡蛋白進(jìn)行檢測(cè)，以期能夠?qū)es的神經(jīng)保護(hù)作用機(jī)制進(jìn)行進(jìn)一步探討，從而為臨床研發(fā)預(yù)防腦血管疾病的新藥提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 主要試劑、儀器 白藜蘆醇，Sigma公司;兔抗鼠 Caspase-3、PI3K、p-Akt多克隆抗體均購(gòu)自 Bioworld公司;細(xì)胞凋亡原位檢測(cè)試劑盒(In Situ Cell Death Detection Kit，POD)，Roche 公司;光學(xué)顯微鏡及其拍照分析系統(tǒng)，日本Olympus公司。

1.2 動(dòng)物分組 ♂SD大鼠60只(220～250 g)，由安徽醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供，隨機(jī)分為3組:假手術(shù)組(Sham)、缺血/再灌注組(I/R)、白藜蘆醇預(yù)處理組(Res+I/R)，每組20只。假手術(shù)組大鼠只分離血管，不留置拴線;I/R組大鼠采用栓線法阻塞右側(cè)大腦中動(dòng)脈，90 min后拔出拴線給予再灌注;Res+I/R組大鼠在缺血前1 h腹腔注射Res(30 mg·kg－1)。

1.3 方法

1.3.1 局灶性腦缺血模型制備［6］采用頸內(nèi)動(dòng)脈栓線法制備大腦中動(dòng)脈阻塞(middle cerebral artery occlusion，MCAO)腦缺血模型。大鼠用10%水合氯醛(300 mg·kg－1，i p)麻醉后，仰臥位固定于手術(shù)臺(tái)上，頸部正中切口，分離右側(cè)頸總動(dòng)脈、頸外動(dòng)脈、頸內(nèi)動(dòng)脈，輕輕剝離迷走神經(jīng)，結(jié)扎頸外動(dòng)脈和頸內(nèi)動(dòng)脈上的所有分支。頸總動(dòng)脈切口，插入直徑為0.26 mm的MCAO栓線(購(gòu)自北京沙東生物技術(shù)有限公司)，轉(zhuǎn)過(guò)頸總動(dòng)脈分叉進(jìn)入頸內(nèi)動(dòng)脈，然后緩緩插入，至有輕微阻力時(shí)為止(自分叉處約20 mm)，阻斷大腦中動(dòng)脈的所有血供。缺血90 min后，輕輕拔出MCAO栓線，恢復(fù)血供進(jìn)行再灌注。在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中保持動(dòng)物體溫(37±0.5)℃。

1.3.2 模型篩選標(biāo)準(zhǔn) 再灌注后22 h，按Bederson方法［7］進(jìn)行肢體功能的神經(jīng)缺損評(píng)分，標(biāo)準(zhǔn):0分，無(wú)任何神經(jīng)功能損失;1分，提尾左前肢屈曲內(nèi)收;2分，向左側(cè)行走;3分，向左側(cè)轉(zhuǎn)圈，成追尾狀。只有評(píng)分在1分以上，且取腦時(shí)腦底無(wú)凝血塊，動(dòng)脈環(huán)無(wú)血栓形成，排除蛛網(wǎng)膜下腔出血和繼發(fā)性血栓形成的大鼠才可被選入繼后的實(shí)驗(yàn)組。I/R組和Res組共40只動(dòng)物，其中2只因麻醉意外死亡，3只線栓推進(jìn)失敗，實(shí)際觀察35只，出現(xiàn)上述神經(jīng)病學(xué)癥狀31只，成功率為88.57%。

1.3.3 TTC染色測(cè)定梗死范圍 按照朱東亞報(bào)道的方法測(cè)定梗死范圍［8］。再灌注后24 h，動(dòng)物斷頭取腦，去嗅球、小腦和腦干，用生理鹽水沖洗大腦表面血污，吸干，–20℃冷凍5～10 min使之變硬，沿冠狀面切成1.5 mm厚的腦片，置于2%的TTC染液中37℃染色30 min。正常組織呈鮮紅色，梗死組織呈灰白色。將顯色后的腦切片置于4%多聚甲醛溶液中固定24 h，細(xì)心將梗死區(qū)挖下，稱重，以梗死組織的重量占缺血側(cè)腦重量的百分比作為相對(duì)梗死范圍。

1.3.4 原位細(xì)胞凋亡檢測(cè)(TUNEL法)在缺血/再灌注后第5天，用10%水合氯醛(300 mg·kg－1，i p)麻醉后，經(jīng)心臟灌注4%多聚甲醛固定至大鼠四肢僵硬，取出缺血側(cè)大腦放入相應(yīng)固定液中于4℃冰箱中固定過(guò)夜。截取視交叉至大腦橫裂的部分，常規(guī)石蠟包埋，連續(xù)冠狀切片，片厚 4 μm。按TUNEL檢測(cè)試劑盒進(jìn)行操作，DAB顯色，蘇木精復(fù)染。采用Image Pro Plus 6.0圖像分析軟件，計(jì)數(shù)400倍視野下缺血側(cè)海馬CA1區(qū)凋亡陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)，每個(gè)標(biāo)本取4張切片，每張切片海馬CA1區(qū)選5個(gè)不重疊的高倍視野，取平均值。

1.3.5 免疫組織化學(xué)檢測(cè) PI3K、p-Akt，Caspase-3的表達(dá)每只動(dòng)物取上述石蠟標(biāo)本連續(xù)切片各3張，采用過(guò)氧化物酶標(biāo)記的鏈霉卵白素(SP)法進(jìn)行免疫組化染色和DAB顯色法顯色。每張切片在400倍視野下隨機(jī)選取缺血側(cè)海馬CA1區(qū)5個(gè)不重疊的高倍視野，采用Image Pro Plus 6.0圖像分析軟件對(duì)結(jié)果進(jìn)行定量分析，測(cè)定平均光密度值(OD)。

2 結(jié)果

2.1 白藜蘆醇預(yù)處理降低腦缺血/再灌注大鼠神經(jīng)功能評(píng)分及減少腦梗死體積 I/R組大鼠神經(jīng)學(xué)評(píng)分平均為2.6±0.13，明顯高于Sham組評(píng)分(P＜0.05)，而缺血前1 h進(jìn)行Res預(yù)處理可明顯改善腦缺血大鼠的神經(jīng)行為學(xué)障礙(P＜0.05)，見(jiàn)Fig 1A。TTC染色結(jié)果顯示，Sham組大鼠腦組織全部染成紅色，未發(fā)現(xiàn)梗死灶。I/R組大鼠缺血側(cè)梗死范圍為(37.2±3.8)%，而缺血前1 h進(jìn)行Res預(yù)處理的Res+I/R組大鼠缺血側(cè)梗死范圍為(16.3±2.6)%，與I/R組大鼠缺血側(cè)梗死范圍相比明顯減少(P ＜0.05)，見(jiàn) Fig 1B。

Fig 1 Effects of resveratrol pretreatment on neurological score and infarction volume

2.2 白藜蘆醇預(yù)處理明顯減少了海馬CA1區(qū)神經(jīng)細(xì)胞的凋亡 經(jīng)TUNEL染色和蘇木精復(fù)染后大鼠海馬CA1區(qū)凋亡細(xì)胞以細(xì)胞核染成棕黃色為主。在Sham組，海馬CA1區(qū)偶見(jiàn)TUNEL陽(yáng)性細(xì)胞，表達(dá)于細(xì)胞核內(nèi)。與Sham組比較，I/R組海馬CA1區(qū)凋亡細(xì)胞數(shù)量明顯增多(P＜0.01);而缺血前1 h進(jìn)行Res預(yù)處理，可以明顯減少凋亡細(xì)胞數(shù)量(P＜0.05)，見(jiàn) Fig 2A，2B。

Fig 2 Resveratrol protects neurons from focal cerebral ischemia-induced apoptosis(TUNEL staining×400)

2.3 白藜蘆醇預(yù)處理對(duì)大鼠海馬CA1區(qū)PI3K、p-Akt表達(dá)的影響 各組大鼠海馬CA1區(qū)免疫組織化學(xué)檢測(cè)結(jié)果顯示，PI3K、p-Akt蛋白的陽(yáng)性細(xì)胞染色均以胞質(zhì)有棕黃色物質(zhì)沉積為主，并可顯示細(xì)胞輪廓。結(jié)果顯示Sham組大鼠海馬CA1區(qū)可見(jiàn)較多呈點(diǎn)狀分布的p-Akt陽(yáng)性細(xì)胞，幾乎無(wú)PI3K陽(yáng)性細(xì)胞。與Sham組比較，I/R組海馬CA1區(qū)PI3K陽(yáng)性細(xì)胞差異沒(méi)有顯著性(P＞0.05)，但p-Akt陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)量明顯減少(P＜0.05)，見(jiàn)Fig 3。而缺血前1 h進(jìn)行Res預(yù)處理的Res+I/R組大鼠，海馬CA1區(qū)PI3K及p-Akt表達(dá)均明顯增多(P＜0.05)，見(jiàn)Fig 3和Tab 1。說(shuō)明Res通過(guò)誘導(dǎo)PI3K的表達(dá)增高進(jìn)一步誘導(dǎo)下游p-Akt水平的增高。

Tab 1 Expressions of PI3K and p-Akt proteins in hippocampal CA1 region(±s，n=8)

Tab 1 Expressions of PI3K and p-Akt proteins in hippocampal CA1 region(±s，n=8)

*P＜0.05 vs sham group;#P＜0.05 vs I/R group

Group PI3K(OD)p-Akt(OD)Sham 0.167 ±0.036 0.354 ±0.056 I/R 0.161 ±0.038 0.207 ±0.055*Res+I/R 0.289 ±0.043# 0.245 ±0.045#

2.4 白藜蘆醇預(yù)處理對(duì)大鼠海馬CA1區(qū)Caspase-3表達(dá)的影響 免疫組織化學(xué)結(jié)果顯示，Sham組大鼠海馬CA1區(qū)僅見(jiàn)極少數(shù)Caspase-3蛋白的陽(yáng)性染色胞質(zhì);腦缺血/再灌注后第5天，與Sham組比較，I/R組大鼠海馬CA1區(qū)Caspase-3表達(dá)明顯增多(P＜0.05)，見(jiàn)Fig 4和Tab 2，染色呈棕黃或深褐色;而在缺血前1 h進(jìn)行Res預(yù)處理的Res+I/R組大鼠，海馬CA1區(qū)Caspase-3表達(dá)明顯減少(P＜0.05)，見(jiàn)Fig 4和 Tab 2。

Tab 2 Expression of Caspase-3 protein in hippocampal CA1 region(±s，n=8)

Tab 2 Expression of Caspase-3 protein in hippocampal CA1 region(±s，n=8)

*P＜0.05 vs sham group;#P＜0.05 vs I/R group

Group Caspase-3(OD)Sham 0.256 ±0.0923 I/R 0.552 ±0.0958*Res+I/R 0.341 ±0.0765#

3 討論

Fig 3 PI3K and p-Akt positive cells in hippocampal CA1 region shown by immunohistochemical assay(×400)

腦缺血/再灌注損傷是一個(gè)復(fù)雜的病理生理過(guò)程，如出現(xiàn)大量的氧自由基、細(xì)胞內(nèi)Ca2+超載、能量障礙、興奮性氨基酸釋放增加等［9］，這些環(huán)節(jié)都可通過(guò)啟動(dòng)凋亡相關(guān)基因、誘導(dǎo)凋亡信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路，最終導(dǎo)致神經(jīng)元的凋亡或壞死［10］。海馬是學(xué)習(xí)記憶的重要腦區(qū)之一，海馬CA1區(qū)對(duì)缺氧缺血特別敏感［11］。和以往的研究一致，我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果也表明，局灶性腦缺血/再灌注導(dǎo)致海馬CA1區(qū)神經(jīng)元出現(xiàn)大面積凋亡。近年來(lái)的研究表明Res能夠通過(guò)多種機(jī)制對(duì)缺血性損傷發(fā)揮保護(hù)作用，包括抗氧化、清除自由基、抗凋亡等［12］。但Res具體是通過(guò)何種信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制對(duì)腦缺血/再灌注導(dǎo)致的海馬CA1區(qū)神經(jīng)元凋亡發(fā)揮保護(hù)作用的，目前還鮮有這方面的報(bào)道。

Fig 4 Caspase-3 positive cells in hippocampal CA1 region shown by immunohistochemical assay(×400)

Akt是一種絲氨酸/蘇氨酸激酶，它是磷酸化肌醇磷脂3位羥基的激酶(phosphoinositide 3-kinase，PI3K)下游靶分子最重要的效應(yīng)介質(zhì)。Akt的活化直接或間接影響多種轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)和促凋亡蛋白活性，增強(qiáng)抗凋亡基因的表達(dá)和抑制細(xì)胞凋亡蛋白活性，參與生長(zhǎng)、發(fā)育、分化和細(xì)胞的存活［13］。Noshita等［14］應(yīng)用熒光雙染技術(shù)顯示腦缺血后Akt陽(yáng)性細(xì)胞不是凋亡細(xì)胞，指出PI3K/Akt信號(hào)活化可以促進(jìn)細(xì)胞存活減少凋亡。Lesne等［15］發(fā)現(xiàn)，腦缺血早期給予外源性營(yíng)養(yǎng)因子可減少缺血腦組織的損傷，與提高缺血周?chē)鷧^(qū)Akt的表達(dá)有關(guān)。本研究結(jié)果顯示，與I/R組相比，Res預(yù)處理使腦缺血大鼠海馬CA1區(qū)細(xì)胞凋亡數(shù)量明顯減少、PI3K和p-Akt數(shù)量明顯增多，這和以往的研究結(jié)果是一致的，并提示Res有類(lèi)似于外源性營(yíng)養(yǎng)因子的作用，通過(guò)激活PI3K/Akt信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路，發(fā)揮細(xì)胞存活和對(duì)抗凋亡的作用。近年來(lái)的研究發(fā)現(xiàn)Caspase-3參與了腦缺血后神經(jīng)元損傷的病理過(guò)程，它的激活是凋亡的關(guān)鍵步驟，是凋亡的最終執(zhí)行者［16］?；罨蟮腃aspase-3可以切割許多蛋白質(zhì)底物，使細(xì)胞內(nèi)一些參與DNA修復(fù)、mRNA剪切和DNA復(fù)制的蛋白失活，從而使細(xì)胞喪失修復(fù)功能，穩(wěn)態(tài)不能正常進(jìn)行。而活化的Akt通過(guò)磷酸化作用，可以抑制下游效應(yīng)分子Caspase-3的活性，進(jìn)而發(fā)揮調(diào)節(jié)細(xì)胞存活、增殖和分化等作用［17］。West等［18］發(fā)現(xiàn) Res預(yù)處理通過(guò)減少Caspase-3的激活，對(duì)新生兒缺氧缺血性腦損傷發(fā)揮保護(hù)作用。我們實(shí)驗(yàn)中也發(fā)現(xiàn)，局灶性腦缺血導(dǎo)致海馬CA1區(qū)Caspase-3表達(dá)明顯增加，Res預(yù)處理使缺血大鼠海馬CA1區(qū)Caspase-3表達(dá)明顯降低，這和以往的實(shí)驗(yàn)結(jié)果是一致的。

綜上所述，本研究發(fā)現(xiàn)Res預(yù)處理對(duì)局灶性腦缺血/再灌注導(dǎo)致的大鼠海馬CA1區(qū)神經(jīng)元凋亡具有保護(hù)作用。其主要作用機(jī)制可能是通過(guò)激活PI3K-Akt信號(hào)通路，使p-Akt的水平增加，進(jìn)而抑制下游效應(yīng)分子Caspase-3蛋白的激活來(lái)發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用的，但具體的機(jī)制亟待進(jìn)行更深入的研究。

［1］ Doyle K P，Simon R P，Stenzel-poore M P.Mechanisms of ischemic brain damge［J］.Neuropharmacology，2008，55(3):310 － 8.

［2］ Bastinaetto S，Zheng WH，Quirion R.Neuroprotective abilities of resveratrol and other red wine constituents against nitric oxide-related toxicity in cultured hippocampal neurons［J］.Br J Pharmacol，2000，131(4):711 －20.

［3］ Chander V，Chopra K.Protective effect of nitric oxide pathway in resveratrol renal ischemia-reperfusion injury in rat［J］.Arch Med Res，2006，37(1):19 －26.

［4］ Gross G J，F(xiàn)ryer R M.Mitochondrial K(ATP)channels:triggers or distal effectors of ischemic or pharmacologocal preconditioning［J］.Circ Res，2000，87(6):431 －3.

［5］ 李 珍，王斌生，孔德虎，王烈成.白藜蘆醇預(yù)處理對(duì)大鼠局灶性腦缺血∕再灌注損傷的神經(jīng)保護(hù)作用［J］.中國(guó)藥理學(xué)通報(bào)，2010，26(6):802－6.

［5］ Li Z，Wang B S，Kong D H，Wang L C.Neuroprotective effects of preconditioning with resveratrol on focal cerebral ischemia-reperfusion injury in rats［J］.Chin Pharmacol Bull，2010，26(6):802－6.

［6］ Zhu D Y，Li R，Liu G Q，et al.Nimodipine inhibitscalcium-independent nitric oxide synthase activity in transient focal cerebral ischemia rats and cultured mouse astroglial cells［J］.Life Sci，1999，65:221－31.

［7］ Bederson J B，Pitts L H，Tsuji M，et al.Rat middle cerebral artery occlusion:evaluation of the model and development of a neurologic examination［J］.Stroke，1986，17(3):472 －6.

［8］ Zhu D Y，Liu S H，Sun H S，Lu Y M.Expression of inducible nitric oxide synthase after focal cerebral ischemia stimulates neurogensis in the adult bodfent dentate gyrus［J］.J Neurosci，2003，23(1):223－9.

［9］ Turley K R，Toledo-Pereyra L H，Kothari R U.Molecular mechanisms in the pathogenesis and treatment of acute ischemic stroke［J］.J Invest Surg，2005，18:207 －18.

［10］ Kotake Y，Yamamoto M，Matsumoto M，et al.Sivelestat，a neutrophil elastase inhibitor，attenuates neutrophil priming after hepatoenteric ischemia in rabbits［J］.Shock，2005，23(2):156 －60.

［11］ Li Z，Cui S Z，Zhang Z，et al.DHEA-neuroprotection and –neurotoxicity after transient cerebral ischemia in rats［J］.J Cereb Blood Flow Metab，2009，29(2):287－96.

［12］ Elmali N，Esenkayal I，Karadag N，et al.Effects of resveratrol on skeletal muscle in ischemia-reperfusion injury［J］.Ulus Travma Acil Cerrahi Derg.2007，13(4):274－80.

［13］ Viscomi M T，Oddi S，Latin L，et al.Selective CB2 receptor agonism protects central neurons from remote axtomy-induced apoptosis through the PI3K/Akt pathway［J］.J Neurosci.2009，29(14):4564－70.

［14］ Noshita N，Lewen A，Sugawara T，et al.Evidence of phosphorylation of Akt and neuronal survival after transient focal cerebral ischemia in mice［J］.J Cereb Blood Flow Metab，2001，21(12):1442－50.

［15］ Lesne S，Gabriel C，Nelson DA，et al.Akt-dependent expression of NAIP-1 protects neurons against amyloid-beta toxicity［J］.J Boil Chem，2005，280(26):24941－7.

［16］李 琴，郭云良，李 霞，等.胡黃連苷Ⅱ?qū)Υ笫竽X缺血/再灌注損傷Caspase-3和PARR表達(dá)的影響［J］.中國(guó)藥理學(xué)通報(bào)，2010，26(3):342－5.

［16］ Li Q，Guo Y L，Li X，et al.The interterence of picrosideⅡ on the expressions Caspase-3 and PARR following cerebral ischemia reperfusion injury in rats［J］.Chin Pharmacol Bull，2010，26(3):342－5.

［17］ Smolock E M，Korshunov V A.Pharmacological inhibition of Axl affects smooth muscle cell functions under oxidative stress［J］.Vascul Pharmacol，2010，53(3－4):185－92.

［18］ West T，Atzeva M，Holtzman D M.Pomegranate polyphenols and resveratrol protect the neonatal brain against hypoxic-ischemic injury［J］.Dev Neurosci，2007，29(4 －5):363 －72.