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    扣帶回腦區(qū)與癲癇大鼠學(xué)習(xí)記憶損害相關(guān)性分析

    2012-06-01 06:18:16宋石磊王莉趙勇張萬琴
    中國實(shí)用醫(yī)藥 2012年19期
    關(guān)鍵詞:腦區(qū)陽性細(xì)胞空白對(duì)照

    宋石磊 王莉 趙勇 張萬琴

    癲癇是常見的中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病之一。目前對(duì)于癲癇的研究主要還是采用動(dòng)物模型,其中海仁酸(KA)所致的癲癇模型已廣泛用于癲癇發(fā)作的研究,被認(rèn)為是經(jīng)典的癲癇動(dòng)物模型[1]。長期以來對(duì)于癲癇所致學(xué)習(xí)記憶障礙的研究主要集中在海馬腦區(qū),并且肯定了海馬腦區(qū)與癲癇學(xué)習(xí)記憶障礙的相關(guān)性,但是對(duì)于扣帶會(huì)在這方面的研究甚少。本研究通過對(duì)難治性癲癇大鼠腦內(nèi)扣帶回腦區(qū)C-Jun免疫反應(yīng)性變化的觀察,初步探討扣帶回與難治性癲癇空間學(xué)習(xí)記憶障礙的相關(guān)性。

    1 材料與方法

    1.1 制備及分組 KA誘發(fā)癲癇急性發(fā)作及癲癇持續(xù)狀態(tài)取20只大鼠,一次頸部皮下注射驚厥劑量(10 mg/kg,2 ml/kg)的KA誘發(fā)SD大鼠出現(xiàn)癲癇急性發(fā)作及癲癇持續(xù)狀態(tài)。癲癇的嚴(yán)重程度按Racine[2]描述的標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行1~5級(jí)分級(jí),在本實(shí)驗(yàn)中有12只大鼠有4級(jí)以上發(fā)作并呈持續(xù)狀態(tài),其中有5只死亡,7只存活大鼠被采用為癲癇模型即模型組。剩余未達(dá)到四級(jí)以上發(fā)作的10只大鼠有4只死亡,6只存活大鼠作為模型對(duì)照組,另取同批SD大鼠(n=6)頸部皮下注射等容積(2.0 ml/kg)的生理鹽水即為空白對(duì)照組。

    1.2 Morris水迷宮行為學(xué)測定 SD大鼠在分組完成后30 d采用Morris水迷宮通過隱藏平臺(tái)獲得實(shí)驗(yàn)及空間搜索實(shí)驗(yàn)對(duì)大鼠的學(xué)習(xí)記憶能力進(jìn)行測定。

    1.3 灌流固定

    1.3.1 4%水合氯醛400 mg/kg腹腔注射麻醉大鼠,開胸暴露心臟。

    1.3.2 16 g注射針頭刺入左室尖部,止血鉗固定,剪開左心耳,先后以0.9%氯化鈉注射液200 ml和4%多聚甲醛400 ml先快速后緩慢進(jìn)行灌注,至肝臟、四肢及頭尾變硬。

    1.3.3 斷頭取腦,于4℃4%多聚甲醛中后固定。

    1.4 腦片制備及免疫組織化學(xué)實(shí)驗(yàn) 將固定好的鼠腦放入含30%蔗糖的磷酸緩沖液中4℃過夜,振動(dòng)切片機(jī)切取50 μm厚的冠狀腦片,PBS漂洗10 min×2,與1%BSA孵育30 min;加入第一抗體(C-jun-Ab,1∶500)4℃孵育過夜,PBS漂洗10 min×2;加入生物素化羊抗兔(1∶400)室溫振蕩孵育1 h,PBS漂洗10 min 2;與卵白素生物素復(fù)合物A:B:PBS(1∶1∶400)室溫振蕩孵育2 h,二氨基聯(lián)苯胺(DAB)法顯色;適時(shí)用0.01 m PBS終止反應(yīng);明膠裱片,風(fēng)干;梯度酒精脫水:70%、80%、90%、95%、100%、100%酒精各脫水 5 min;二甲苯透明,中性樹膠封片、晾干。

    1.5 圖像分析 采用HPIAS系列彩色病理圖文分析系統(tǒng)對(duì)C-Jun免疫陽性細(xì)胞進(jìn)行定量計(jì)數(shù),采用Olympus-BX51型顯微攝像系統(tǒng)對(duì)目標(biāo)腦區(qū)進(jìn)行攝像。分析方法:選取扣帶回為目標(biāo)腦區(qū),分別在扣帶回5個(gè)不同層面分別選取4個(gè)寬度 和高度分別為213、289 μm的計(jì)數(shù)區(qū),在顯微鏡下進(jìn)行觀察,計(jì)數(shù)C-Jun陽性細(xì)胞數(shù)目,取其平均值。并分別攝片。

    1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 實(shí)驗(yàn)采用SPSS 11.5軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)處理。免疫組化數(shù)據(jù)采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差,各組腦片之間的免疫活性差異采用單因素方差分析;不同處理組間的兩兩比較采用單因素方差分析S-N-K法;檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)為P<0.05。

    2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    2.1 Morris水迷宮行為學(xué)測定結(jié)果

    2.1.1 隱匿平臺(tái)獲得實(shí)驗(yàn) 模型組大鼠的尋找潛伏期在各個(gè)時(shí)間段都明顯長于其它2組大鼠。并且其在學(xué)習(xí)測試的4 d中每天的尋找潛伏期沒有明顯差異(P>0.05)。模型對(duì)照組與空白對(duì)照組的尋找潛伏期在各個(gè)時(shí)間段差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

    2.1.2 空間探索試驗(yàn) 模型組大鼠穿越平臺(tái)的次數(shù)平均為0.71,而其它2組分別為2.33次、3.29次,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),模型對(duì)照組與空白對(duì)照組之間的差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

    2.2 免疫組織化學(xué)結(jié)果 在C-jun的免疫組化結(jié)果中,模型組大鼠扣帶回腦區(qū)C-Jun免疫陽性細(xì)胞數(shù)目較空白對(duì)照組組和模型對(duì)照組大鼠明顯降低,有顯著差異(P<0.05)。而模型對(duì)照組扣帶回腦區(qū)C-Jun免疫陽性細(xì)胞數(shù)目與空白對(duì)照組相比則無明顯差異(P>0.05)。(圖1、表1)。

    圖1 A模型組B模型對(duì)照組C空白對(duì)照組(200)

    表1 各組大鼠扣帶回腦區(qū)C-Jun陽性細(xì)胞數(shù)目

    3 討論

    C-Jun是一種即刻早期基因(IEGs),它的表達(dá)受控于突觸的活動(dòng),有研究指出其在突觸地可塑性機(jī)制(LTP)中發(fā)揮重要的作用,而LTP是目前公認(rèn)的記憶形成基礎(chǔ)[3]。在經(jīng)過記憶訓(xùn)練的大鼠腦內(nèi)可以觀察到C-Jun蛋白表達(dá)的升高[4],這些研究表明了C-Jun參與了學(xué)習(xí)記憶的形成過程。通過抑制C-Jun氨基末端激酶(JNKs)造成C-Jun mRNA和蛋白質(zhì)合成的損傷,可以改善短時(shí)程記憶而阻斷長時(shí)程記憶[5],也說明了C-Jun與學(xué)習(xí)記憶的相關(guān)性。

    現(xiàn)在共識(shí)的記憶形成的分子機(jī)制假說是:刺激發(fā)動(dòng)長時(shí)程記憶的相關(guān)基因的表達(dá)進(jìn)而啟動(dòng)分子級(jí)聯(lián)反應(yīng),級(jí)聯(lián)反應(yīng)又可以調(diào)控IEGs的表達(dá),最終達(dá)到記憶相關(guān)區(qū)域持久的結(jié)構(gòu)和功能的改變[6]。在這個(gè)過程中隨著各種類型的細(xì)胞興奮,C-Jun會(huì)被誘導(dǎo)并表達(dá),C-Jun的免疫反應(yīng)活性可作為神經(jīng)元興奮的標(biāo)志[7]。在大鼠學(xué)習(xí)過程中,學(xué)習(xí)記憶相關(guān)腦區(qū)如果C-Jun表達(dá)降低,就很有可能是該腦區(qū)的學(xué)習(xí)記憶機(jī)制受到了損害。

    本實(shí)驗(yàn)中通過免疫組化實(shí)驗(yàn)對(duì)各組大鼠的扣帶回腦區(qū)進(jìn)行的觀察發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)組大鼠扣帶回腦區(qū)內(nèi)C-Jun有著相對(duì)較低的表達(dá),與此相應(yīng)的是在行為學(xué)實(shí)驗(yàn)中,模型組的學(xué)習(xí)記憶能力與空白組和實(shí)驗(yàn)對(duì)照組相比明顯降低,而模型對(duì)照組與空白組相比學(xué)習(xí)記憶能力無明顯差異。結(jié)合以上對(duì)C-Jun在學(xué)習(xí)記憶形成過程中作用的探討,有理由認(rèn)為實(shí)驗(yàn)組大鼠扣帶回腦區(qū)內(nèi)的學(xué)習(xí)記憶機(jī)制發(fā)生了損害。所以癲癇大鼠學(xué)習(xí)記憶能力的改變很可能與扣帶回腦區(qū)學(xué)習(xí)記憶機(jī)制損害相關(guān)。

    [1]Sperk G.Kainic acid seizures in therat.Prog Neurobiol,1994,42:1.

    [2]Racine RJ.Modification of seizure activity by electrical stimulation.Ⅱ.Motor seizure.Electroencephalogr Clin Neurophysiol,1972,32:281.

    [3]Herdegen T,Skene P,Bahr M.The c-Jun transcription factorbipotentialmediator of neuronal death,survival and regeneration.Trends Neurosci,1997,20:227-231.

    [4]Lisa A,Teather,Mark G,Packard,et al.Differential induction of c-Jun and Fos-like proteins in rat hippocampus and dorsal striatum after training in two water maze tasks.Neurobiology of Learning and Memory,2005,84(2):75-84.

    [5]Bevilaqua LR,Kerr DS,Medina JH,et al.Inhibition of hippocampal Jun N-terminal kinase enhances short-term memory but blocks long-term memory formation and retrieval of an inhibitory avoidance task.Eur J Neurosci,2003,17,897-902.

    [6]P Goelet VF,Castelucci S,Schaecher,et al.The long and the short of long-term memory-a molecular framework.Nature,1986,322:419-422.

    [7]J I Morgan,T Curran.Stimulus-transcription coupling in the nervous system:Involvement of the inducible proto-oncogenes fos and jun.Annual Review of Neuroscience,1991,14:42-451.

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