摘 要 建立了基于核酸雜交及連接酶和核酸內(nèi)切酶的酶聯(lián)橋接分析(ELBA)系統(tǒng),用于生物基質(zhì)中反義寡核苷酸(ODN)藥物的定量分析。對(duì)ELBA系統(tǒng)中的親和素包被、俘獲探針/檢測(cè)探針濃度、T4 DNA 連接酶及S1核酸酶用量、堿性磷酸酶底物反應(yīng)時(shí)間等條件進(jìn)行了優(yōu)化,確定使用中性親和素包被的酶標(biāo)板, 俘獲探針與檢測(cè)探針濃度比為2∶3,S1酶為40 U/孔,顯色15 min為最優(yōu)條件,并考察了生物基質(zhì)效應(yīng)和稀釋效應(yīng)對(duì)方法的影響,建立了獼猴血漿中反義寡核苷酸的定量方法,并進(jìn)行方法學(xué)確證,方法學(xué)定量范圍為0.10~6.25 nmol/L。本方法成功應(yīng)用于反義硫代寡核苷酸藥物在低劑量(1 mg/kg)靜脈滴注后的藥代動(dòng)力學(xué)研究,成為生物基質(zhì)中寡核苷酸類藥物定量分析的有效手段。
關(guān)鍵詞 寡核苷酸; 藥代動(dòng)力學(xué); 定量; 核酸雜交; 酶聯(lián)橋接分析系統(tǒng)
1 引 言
反義(Antisense,AS)寡核苷酸(Oligodeoxynucleotide,ODN)、免疫刺激基序(CpG)ODN等分子,在抗腫瘤、抗病毒治療等基因治療領(lǐng)域中占據(jù)重要地位。迄今,ASODN與CpG ODN類藥物經(jīng)美國(guó)FDA批準(zhǔn)上市,已有多種該類藥物處于臨床前和臨床試驗(yàn)階段\\。
目前,生物樣品中ODN藥物的定量分析方法最為成熟,其中應(yīng)用最多的是非放射性同位素標(biāo)記定量分析方法, 包括毛細(xì)管電泳(Capillary electrophoresis, CE)和高效液相色譜法(High performance liquid chromatography, HPLC)。CE方法對(duì)于ODN的檢測(cè)具有高分辨率、可分辨相差一個(gè)核苷酸的ODN,其在血漿基質(zhì)中對(duì)ODN的最低定量限(Lower limit of quantification, LLOQ)約在70 g/L(約12 nmol/L)\\水平。本課題組曾利用改良的毛細(xì)管非膠篩分電泳方法對(duì)硫代修飾ASODN進(jìn)行藥代動(dòng)力學(xué)研究\\,可描述5 mg/kg以上劑量給藥后獼猴的血漿動(dòng)力學(xué)行為,但該方法對(duì)于末端消除相數(shù)據(jù)的獲得不甚理想,對(duì)于更低劑量下(如1 mg/kg)給藥后的藥時(shí)曲線描述更是無(wú)能為力。HPLC方法的分辨率和靈敏度與CE方法相比略低。目前ODN類藥物通常在較低劑量下(≤1 mg/kg \\)給藥即能發(fā)揮藥效,這對(duì)定量分析方法學(xué)的靈敏度提出越來(lái)越高的要求。上述方法的靈敏度難以達(dá)到對(duì)ODN在血漿和組織中藥代動(dòng)力學(xué)(Pharmacokinetics,PK)終末消除相的定量能力(濃度通常低于10 nmol/L) \\。此外,上述兩種主流分析方法還有一個(gè)共同的缺陷,即樣品前處理過(guò)程相當(dāng)復(fù)雜,絕對(duì)回收率低,分析周期長(zhǎng)、成本高,應(yīng)用受限\\。
核酸分子雜交的酶聯(lián)橋接(Enzymelinked bridging assay,ELBA)法基于核酸雜交原理,利用一個(gè)錨定的、3′端與待測(cè)反義寡核苷酸(Test ODN)序列互補(bǔ)的俘獲探針?lè)@生物基質(zhì)中的Test ODN,再通過(guò)連接酶將檢測(cè)探針(序列與俘獲探針5′端互補(bǔ),3′端偶聯(lián)酶標(biāo)顯色系統(tǒng))與上述核酸雜交復(fù)合物相連,建立橋接體系。S1核酸內(nèi)切酶是單鏈特異性的核酸內(nèi)切酶,可以降解雙鏈核酸中的單鏈或缺口處切割雙鏈 DNA,在上述橋接體系中,可以通過(guò)酶切將不能與檢測(cè)探針連接從而構(gòu)成完整雙鏈的差減ODN序列(即ODN的降解產(chǎn)物,其3′端與檢測(cè)探針5′端之間有1個(gè)以上的堿基缺口)去除,以保證橋接系統(tǒng)的序列長(zhǎng)度特異性。最終利用檢測(cè)探針3′端偶聯(lián)的酶標(biāo)顯色系統(tǒng),對(duì)Test ODN原形進(jìn)行定量。酶聯(lián)橋接分析系統(tǒng)的的原理如圖1所示。該方法在靈敏度、特異性以及適用性上均較傳統(tǒng)的定量分析方法具有優(yōu)勢(shì)\\,因此,基于核酸雜交的ELBA系統(tǒng)在寡核酸類藥物PK研究中具有巨大的應(yīng)用前景。本研究對(duì)所建立ELBA系統(tǒng)中的諸多條件,包括親和素包被、俘獲探針與檢測(cè)探針濃度比、T4連接酶及S1核酸酶用量、生物基質(zhì)效應(yīng)、稀釋效應(yīng)以及顯色系統(tǒng)等進(jìn)行了細(xì)致的優(yōu)化,使系統(tǒng)更具穩(wěn)定性與通用性。
圖1 酶聯(lián)橋接分析系統(tǒng)的原理
Fig.1 Principle of enzymelinked bridging assay (ELBA)
2 實(shí)驗(yàn)部分
2.1 儀器與試劑
HeraeusBB5060培養(yǎng)箱(上海賀利氏公司);超純水系統(tǒng)(美國(guó)MILLIPORE公司);微量振蕩器(國(guó)華電器有限公司);微量加樣器(美國(guó)Gilson公司);電熱恒溫水浴鍋(北京長(zhǎng)風(fēng)公司);MK 3酶標(biāo)儀(德國(guó)Thermo公司)。
鏈霉親和素(Streptavidin,SA, Promega公司);鏈霉親和素包被酶標(biāo)板(StreptavidinCoated 96well plate, Cayman Chemical公司);T4 DNA 連接酶(NEB公司);S1核酸酶(Invitrogen公司);酶標(biāo)抗地高辛抗體(Antidigoxigeninalkaline Phosphatase,ADAP, Roche公司);中性親和素包被的酶標(biāo)板(ReactiBind NeutrAvidin Coated),封閉液(SuperBlock Blocking buffer)和顯色液(pNitrophenyl phosphate,PNPP)均購(gòu)自Pierce公司。
本研究中采用ODN及其核酸探針由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成,其序列結(jié)構(gòu)見(jiàn)表1。其它生化試劑:TrisHCl, HCl, Na2HPO4,NaCl, NaHCO3, Tween20, EDTA和曲拉通等均為分析純?cè)噭?/p>
L,加入反應(yīng)孔中,18 ℃過(guò)夜連接。洗滌后加入一定酶活單位的S1核酸內(nèi)切酶,37 ℃酶切1.5 h后洗板。
2.2.3 顯色反應(yīng) 封閉液在37 ℃反應(yīng)30 min后,加入酶標(biāo)抗體(1∶1500稀釋于2%牛血清白蛋白中),室溫振蕩反應(yīng)30 min。洗滌后加入新鮮配制PNPP顯色液,37 ℃反應(yīng)15~30 min。加入2 mol/L NaOH終止,用酶標(biāo)儀檢測(cè)405/630 nm處光吸收值(Optical density,OD)值。
2.3 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化
2.3.1 親和素包被的條件選擇 100 nmol/L Test ODN經(jīng)二次蒸餾水(ddH2O)倍比稀釋至0.39 nmol/L,隨行零對(duì)照,各濃度復(fù)孔,重復(fù)3次??疾炝?種親和素包被條件對(duì)靈敏度和響應(yīng)值的影響:(1)Pierce公司中性親和素包被酶標(biāo)板;(2) CAYMAN CHEMICAL公司鏈霉親和素包被酶標(biāo)板;(3) 鏈霉親和素25 mg/L和50 mg/L包被的96孔板(包被緩沖液:15 mmol/L Na2CO3,35 mmol/L NaHCO3,pH 9.6)。
2.3.2 優(yōu)化探針濃度 從兩個(gè)角度優(yōu)化俘獲探針和檢測(cè)探針濃度: (1)Test ODN濃度為5 nmol/L時(shí),考察俘獲探針在100 nmol/L條件下,不同濃度(50,75,100,150和200 nmol/L)檢測(cè)探針對(duì)應(yīng)OD值變化曲線,反之考察俘獲探針的最優(yōu)濃度。(2)倍比稀釋12.5 nmol/L Test ODN至0.78 nmol/L,檢測(cè)探針與俘獲探針比例分別為150∶100,150∶150 和 150∶200對(duì)方法線性的影響。
2.3.3 優(yōu)化PNPP顯色時(shí)間 獼猴血漿倍比稀釋12.50 nmol/L Test ODN至0.39 nmol/L,按照優(yōu)化后的反應(yīng)條件,考察PNPP顯色步驟中不同顯色時(shí)間(15, 20和30 min)對(duì)定量曲線線性的影響。
2.3.4 S1酶用量的優(yōu)化 獼猴血漿倍比稀釋 Test ODN 12.50 nmol/L至0.39 nmol/L,加零對(duì)照,考察S1酶不同加入量(5,10,20,40,80和100 U/孔)對(duì)線性的影響。
2.4 生物基質(zhì)的影響
分別以獼猴全血漿和ddH2O為基質(zhì)倍比稀釋12.5 nmol/L Test ODN至0.39 nmol/
L,并將另行配制的兩份同濃度的血漿樣品稀釋1倍和10倍,對(duì)比考察生物基質(zhì)對(duì)檢測(cè)結(jié)果的影響。
2.5 利用ELBA和CE方法對(duì)獼猴體內(nèi)低劑量給藥PK研究
4只獼猴單次靜脈滴注(v.d.)1 mg/kg Test ODN,30 min內(nèi)恒速靜脈滴注完畢,分別于給藥前(0 min)以及滴注開(kāi)始后0.2,0.3,0.5,0.35,0.75,1.0,1.25,1.5,2.0,2.5,3.0,4.0,6.0 和8.0 h,在給藥部位對(duì)側(cè)后肢靜脈取血,血樣均用EDTAK2抗凝管采集,3000 g 離心收集血漿樣品于80 ℃保存待測(cè)。ELBA對(duì)樣品測(cè)定時(shí)同板隨行標(biāo)線和質(zhì)控樣品,根據(jù)標(biāo)線對(duì)生物樣品中 Test ODN進(jìn)行定量分析。
CE定量的樣品前處理和測(cè)定方法參見(jiàn)文獻(xiàn)\\。單次靜脈滴注5 mg/kg Test ODN,給藥方式和血樣采集同ELBA方法。
血漿樣品中對(duì)Test ODN 原形、3′N1和5′N1降解產(chǎn)物進(jìn)行12.5 nmol/L至0.39 nmol/L的倍比稀釋,通過(guò)計(jì)算交叉反應(yīng)性確定該方法針對(duì)原形藥物測(cè)定的特異性,計(jì)算公式為:降解產(chǎn)物的半數(shù)效應(yīng)濃度(EC50)/Test ODN 原形的半數(shù)效應(yīng)濃度(EC50)。
2.6 數(shù)據(jù)處理
用EXCEL2007對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行整理并用ORIGIN 5.0對(duì)整理后數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合作圖,藥代動(dòng)力學(xué)參數(shù)使用WinNonlin進(jìn)行計(jì)算。3 結(jié)果與討論
3.1 實(shí)驗(yàn)條件優(yōu)化
3.1.1 不同包被條件對(duì)定量范圍的影響
鏈霉親和素包被酶標(biāo)板(CAYMAN CHEMICAL公司)與自制兩種鏈霉親和素包被量的酶標(biāo)板反應(yīng)性能相同,在10 ~100 nmol/L較高濃度范圍可呈良好線性,提示增加鏈霉親和素包被量并不能提高靈敏度。與鏈霉親和素包被相比,中性親和素包被酶標(biāo)板(Pierce公司)本底較低,靈敏度高;在0.5 ~7.5 nmol/L可呈線性遞增趨勢(shì)(圖2A)。中性親和素和鏈霉親和素分子量相同,均可與生物素結(jié)合,但是前者與生物素結(jié)合時(shí)非特異性結(jié)合最低,可以大大提高特異性和靈敏度。本研究以建立高靈敏度的定量分析方法為目標(biāo),選擇Pierce公司中性親和素包被的酶標(biāo)板進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
3.1.2 優(yōu)化探針濃度 固定 Test ODN濃度為5 nmol/L,檢測(cè)探針濃度為100 nmol/L的條件下,俘獲探針在100 nmol/L 以下信號(hào)值與濃度呈明顯正相關(guān),大于100 nmol/L呈飽和趨勢(shì),同樣在固定 Test ODN為5 nmol/L,俘獲探針在100 nmol/L的條件下,檢測(cè)探針濃度在100 nmol/L以下信號(hào)值與濃度呈明顯正相關(guān),到達(dá)100 nmol/L后呈飽和趨勢(shì)(圖2B)。俘獲探針與檢測(cè)探針的不同濃度比例對(duì)該方法定量范圍的影響結(jié)果表明,當(dāng)兩者比例為2∶3時(shí), Test ODN濃度在0.78 ~12.5 nmol/L范圍內(nèi)與響應(yīng)值呈正相關(guān)關(guān)系,且響應(yīng)值較高(圖2C)。
圖2 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化
Fig.2 Optimization of experiment conditions
A. 不同包被條件對(duì)響應(yīng)值的影響 (Effect of different coating conditions on response); B. 俘獲探針和檢測(cè)探針濃度的優(yōu)化 (Optimization of concentrations of capture probe and detection probe); C. 俘獲探針和檢測(cè)探針最佳比例 (Optimization of concentration ratio of capture probe and detection probe; D. PNPP顯色時(shí)間的優(yōu)化(Optimization of pnitrophenyl phosphate (PNPP) coloration time)。
3.1.3 優(yōu)化PNPP顯色時(shí)間 PNPP顯色時(shí)間延長(zhǎng)可以增強(qiáng)各濃度標(biāo)準(zhǔn)品下的信號(hào)強(qiáng)度,但是對(duì)標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性影響較大,因此檢測(cè)中將顯色時(shí)間定為15 min(圖2D)。
3.1.4 優(yōu)化S1酶用量 S1 核酸酶的用量是影響所建方法的線性范圍和特異性(原形和降解產(chǎn)物的區(qū)分)的關(guān)鍵因素。S1酶用量過(guò)少不能完全去除單鏈檢測(cè)探針以及降解產(chǎn)物引起的背景信號(hào),過(guò)多則會(huì)對(duì)結(jié)合的雙鏈雜交分子非特異降解,原形ODN的信號(hào)值下降明顯,且線性較差。根據(jù)優(yōu)化結(jié)果,本研究在Test ODN在40 U/孔的酶量下,可以獲得最優(yōu)線性范圍(圖3),并具有良好的特異性,能區(qū)分原形和降解產(chǎn)物。S1酶對(duì)3′N1降解產(chǎn)物的作用更為特異,交叉反應(yīng)性<10%,對(duì)5′N1降解產(chǎn)物的交叉反應(yīng)性<25%(圖4),而生物體內(nèi)ODN的大部分降解產(chǎn)物均由3′外切核酸酶產(chǎn)生ODN,即以3′端降解產(chǎn)物為主。
圖3 S1酶用量的優(yōu)化
Fig.3 Optimization of S1 nuclease amount
圖4 Test ODN原形與其3′N1 和5′N1降解產(chǎn)物的區(qū)分
Fig.4 Distinction between parent ODN and its 3′N1 and 5′N1degradation products
3.2 生物基質(zhì)對(duì)定量分析的影響?yīng)?/p>
生物樣品中定量分析的難點(diǎn)在于生物基質(zhì)的干擾效應(yīng),常規(guī)解決辦法是對(duì)樣品進(jìn)行適當(dāng)稀釋以降低信噪比,提高響應(yīng)值。本研究發(fā)現(xiàn),低濃度生物樣品進(jìn)行稀釋處理會(huì)導(dǎo)致靈敏度下降無(wú)法檢測(cè),與以ddH2O為基質(zhì)相比,100%獼猴血漿中同濃度 Test ODN的響應(yīng)值并未受到影響(圖5),證明ELBA方法不受血漿基質(zhì)干擾,反義寡核苷酸血漿樣品不需任何樣品前處理可直接應(yīng)用ELBA方法進(jìn)行定量分析。
3.3 方法學(xué)確證
3.3.1 定量范圍、精密度、準(zhǔn)確度 獼猴血漿中配制標(biāo)準(zhǔn)品(12.5, 6.25,3.13,1.56,0.78,0.39,0.20和0.10 nmol/L)制備標(biāo)準(zhǔn)曲線,批間重復(fù)5次。隨行配制高(5 nmol/L)、中(0.50 nmol/L)、低(0.15 nmol/L)質(zhì)控樣品考察精密度和準(zhǔn)確度。ELBA方法對(duì)Test ODN在獼猴血漿中的定量范圍為0.10~6.25 nmol/L(R2>0.99)(圖6),較CE方法的靈敏度提高了近1000倍。 5批樣品的批內(nèi)和批間質(zhì)控樣品測(cè)定結(jié)
圖5 生物基質(zhì)對(duì)ODN定量分析的影響?yīng)?/p>
Fig.5 Effect of biological matrix on quantitative analysis of ODN
圖6 血漿中Test ODN定量標(biāo)準(zhǔn)曲線
Fig.6 Standard curve of quantification of Test ODN in plasma by ELBA
果表明ELBA對(duì)Test ODN的定量方法批內(nèi)相對(duì)誤差為10.6%~15.4%,精密度<18.23%,批間相對(duì)誤差為4.67%~8.23%(n=5),精密度為<7.91%。
3.3.2 稀釋效應(yīng) 考察樣品稀釋對(duì)樣品濃度檢測(cè)準(zhǔn)確度的影響。根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要分別用獼猴血漿配制濃度為1000,500,100,50和10 nmol/L的樣品溶液并稀釋至1 nmol/L,考察稀釋倍數(shù)為1000, 500, 100, 50和10的稀釋效應(yīng)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2,驗(yàn)證樣品的相對(duì)誤差(RE)<15%;結(jié)果表明,對(duì)血漿樣品進(jìn)行10~1000倍稀釋后測(cè)定,結(jié)果仍準(zhǔn)確可信。