張超 廖萬清
(上海長征醫(yī)院皮膚病與真菌病研究所 全軍真菌病重點實驗室 第二軍醫(yī)大學長征醫(yī)院皮膚科,上海 200003)
隨著廣譜抗生素、免疫抑制劑在臨床的廣泛使用,導管插管、腹膜透析、放射治療等大量開展,尤其是人類免疫缺陷病毒 (HIV)感染者的不斷增多,真菌病已成為影響人類生活質(zhì)量、威脅生命健康的重要疾病之一。鏡檢和培養(yǎng)是臨床實驗室最常規(guī)的真菌檢測方法,然而,鏡檢的陽性率較低,培養(yǎng)會受到時間及實驗室人員技術(shù)水平的限制。分子生物學技術(shù)鑒定臨床分離真菌方法多樣,包括DNA中G+C mol%含量測定、核酸雜交技術(shù)、限制性酶切片段長度多態(tài)性分析、電泳核型分析、隨機擴增多態(tài)性DNA分析、rDNA ITS序列分析等,不同方法之間各有優(yōu)勢和不足,仍在不斷完善中[1]。
基質(zhì)輔助激光解析電離飛行時間質(zhì)譜技術(shù)(Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time of Flight Mass Spectrometry,MALDI-TOF MS)是一種可用于檢測大分子物質(zhì)的“軟電離”質(zhì)譜分析技術(shù)。近年來,該技術(shù)在致病性微生物尤其是細菌的研究中被證實是一種準確、快速、經(jīng)濟的檢驗方法[2-4]。隨著 MALDI-TOF MS技術(shù)的不斷完善和發(fā)展,
其在致病性真菌研究中的作用也日顯突出,現(xiàn)就該技術(shù)在病原真菌研究中的應用進展作一綜述。
20世紀80年代后期,基質(zhì)輔助激光解析電離(Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization,MALDI)和電噴霧電離 (Electrospray ionization,ESI)兩種“軟電離”技術(shù)在質(zhì)譜領域的應用,開創(chuàng)了質(zhì)譜技術(shù)研究生物大分子的局面[5-7]。MALDI-TOF MS的基本原理[8]:當用一定波長的激光照射由基質(zhì)和樣品形成的共結(jié)晶薄膜時,基質(zhì)吸收激光能量而汽化,并迅速降解,樣品解吸附,基質(zhì)和樣品間發(fā)生電荷轉(zhuǎn)移從而使樣品分子發(fā)生電離,樣品離子在電場的作用下在飛行時間質(zhì)量分析器 (time-of-flight analyzer,TOF)中加速飛行,根據(jù)到達檢測器的飛行時間不同可計算不同離子的質(zhì)荷比,從而對物質(zhì)進行定性或定量的分析。由于基質(zhì)的使用,樣品不會因為過強的激光能量導致大分子物質(zhì)被破壞,因此被稱為“軟電離”方式。
由于不同菌種或菌株的微生物表達的蛋白質(zhì)不同,利用MALDI-TOF MS技術(shù)分析得到的質(zhì)譜也是不同的,因此能夠利用這些MALDI-TOF MS質(zhì)譜“指紋”和與之前收集的數(shù)據(jù)庫中的參考“指紋”圖譜對比,從而鑒定包括細菌和真菌在內(nèi)的各種微生物。
在致病性細菌研究方面,MALDI-TOF MS已在食源性致病菌、植物病原細菌、臨床致病菌及其耐藥性等方面進行了廣泛研究[9]。MALDI-TOF MS對真菌進行檢測的研究相對較晚,2000年,Welham 等[10]首次對 MALDI-TOF MS 技術(shù)在青霉、小柱孢菌和紅色毛癬菌等真菌檢測中的應用進行了初步研究。之后很多學者對MALDI-TOF MS在致病性酵母菌和絲狀真菌檢測中的準確性、檢測條件以及應用范圍等方面進行了更為深入的研究。
Putignani[11]等對 303 株臨床分離的酵母菌和酵母樣菌進行MALDI-TOF MS檢測,與傳統(tǒng)方法鑒定符合率為84.8%,經(jīng)基因分型校正后,鑒定準確率為91.7%,其中20株由于數(shù)據(jù)庫數(shù)據(jù)缺乏而未得到鑒定。Seyfarth等[12]用MALDITOF MS與API ID 32 C系統(tǒng)兩種方法檢測83株酵母菌,二者準確率分別為94%和84.3%,而MALDI-TOF MS參考數(shù)據(jù)庫的更新相比API要方便許多。2011年,McTaggart等[13]對 160株酵母菌,包括137株隱球菌和23株非隱球菌進行了MALDI-TOF MS檢測,鑒定到種水平的準確率為100%,而新生隱球菌鑒定到亞種水平的準確度也高達85/86(98.8%)。2012年,F(xiàn)iracative等[14]利用 MALDI-TOF MS 技術(shù)對 164株新生隱球菌和格特隱球菌進行檢測,能夠100%準確鑒定到種,而且能夠區(qū)分8個主要的分子類型 (新生隱球菌VNⅠ-VNⅣ,格特隱球菌VGⅠ-VGⅣ)。另外,他們還利用該技術(shù)成功鑒定出了四株新生隱球菌與格特隱球菌的種間雜交株。Pinto等[15]在沒有向參考數(shù)據(jù)庫中增加新菌株的情況下利用MALDI-TOF MS技術(shù)共檢測了264株酵母菌。在對167株酵母菌的回顧性研究中,鑒定到屬和種的準確率分別為96%和84%。在對67株酵母菌進行的前瞻性研究中,鑒定到種水平的菌株為53株 (79%),準確度等同于形態(tài)學方法,而除了4株新生隱球菌沒有得到準確鑒定外,其他菌株均準確鑒定到屬的水平。在該項研究中,新生隱球菌的檢測準確度很低,僅為1/6(17%),這與McTaggart等[13]的研究結(jié)果相差較大,可能與該研究直接應用商品化數(shù)據(jù)庫有關(guān)。張明新等[16]對60株臨床分離的酵母菌研究時,用MALDI-TOF MS鑒定的結(jié)果與Vitek compact全自動微生物鑒定系統(tǒng)比對,鑒定符合率為95%(57/60),他們認為質(zhì)譜分析前準備階段是鑒定的關(guān)鍵環(huán)節(jié),其中培養(yǎng)條件和菌落處理溶劑是重要影響因素。
由于絲狀真菌具有多種形態(tài)如菌絲、分生孢子等,使得蛋白質(zhì)譜可能會因真菌的生長狀況和樣品部位的不同而發(fā)生變化,因此MALDI-TOF MS對絲狀真菌的檢測相對落后于細菌和酵母菌,但近年來亦有不少學者對此進行了從基礎到臨床應用方面的研究。
Alshawa等[17]對360株臨床分離的皮膚癬菌和21株小柱孢屬菌進行MALDI-TOF MS檢測,鑒定到種的準確率分別為331/360(91.9%)和18/21(85.7%),27株皮膚癬菌和3株小柱孢屬菌沒有得到鑒定是因為沒有獲得質(zhì)譜信號,而只有2株 (0.5%)皮膚癬菌鑒定錯誤。同樣是對黃曲霉和寄生曲霉進行MALDI-TOF MS檢測,Hettick[18]和 Li[19]兩位學者做出的質(zhì)譜圖雖然相似,但也有差別,Li的報告結(jié)果中m/z峰要比Hettick的少,這種差異可能是與Hettick對樣品進行了微珠渦流法進行破壁處理有關(guān)。Hettick[20]還利用MALDI-TOF MS對青霉屬進行了研究,他們對12種青霉進行了檢測,結(jié)果全部鑒定到種的水平。他們的研究中得到的產(chǎn)黃青霉、橘青霉和擴展青霉三種青霉的質(zhì)譜“指紋”圖譜的峰值大都分布在 m/z 10 000 ~20 000,而Chen等[21]得到的峰值卻分布于m/z 3 000附近,產(chǎn)生如此大差別可能是由于設備 (反射式TOF與線性TOF)、培養(yǎng)基、樣品處理方式(全細胞與微珠渦流法)以及MALDI介質(zhì)的不同所致,這也說明對MALDI-TOF MS進行真菌檢測的方法學標準化十分必要。
Coulibaly[22]等對 MALDI-TOF MS 鑒定波氏假阿利什菌(尖端賽多孢子菌)的條件進行了研究。他們用22株標準株對培養(yǎng)基、培養(yǎng)時間以及蛋白提取方法的研究發(fā)現(xiàn):培養(yǎng)基和蛋白提取方法對檢測結(jié)果沒有影響,沙氏培養(yǎng)基以及蟻酸即可用于培養(yǎng)菌株和蛋白提取;隨著培養(yǎng)時間的延長,鑒定準確度會增高,但72 h已經(jīng)足夠鑒定出菌株。Marinach-Patrice[23]等對臨床分離的 62 株鐮刀菌進行了MALDI-TOF MS鑒定,其中57株 (92%)鑒定到種,4株由于數(shù)據(jù)庫中缺少參考菌種沒有得到鑒定。此外,通過對培養(yǎng)條件的研究,他們認為最佳的培養(yǎng)基為麥芽瓊脂或者馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基,最佳培養(yǎng)溫度為27℃,最佳培養(yǎng)時間為72 h,傳代培養(yǎng)在小于11次的情況下質(zhì)譜不會發(fā)生改變。
Chierico[24]等對 20 種共 230 株絲狀真菌進行了MALDI-TOF MS鑒定,他們分別對培養(yǎng)了48 h、72 h、96 h和120 h的菌落進行檢測,準確率隨著時間的延長而增加,為36.4%、50.0% 、77.3% 和 85.9%,培養(yǎng) 120 h是進行 MALDITOF MS鑒定比較理想的時間。Cassagne等[1]對絲狀真菌的鑒定給出了標準化的檢測程序。通過實驗對比,他們最終選擇沙氏培養(yǎng)基做菌落培養(yǎng),培養(yǎng)時間為72 h,蟻酸作為真菌蛋白質(zhì)提取 試 劑,α-氰 基-4-羥 基 肉 桂 酸 (α-cyano-4-hydroxycinnamic acid,α-CHCA)作為基質(zhì)。利用該程序?qū)儆?3個菌種的177株絲狀真菌進行鑒定,其中154株 (87%)得到準確鑒定;另外23株中,只有2株鑒定錯誤,21株是因為參考數(shù)據(jù)庫中缺乏相應的菌種。如果進一步增加參考數(shù)據(jù)庫的菌種種類,MALDI-TOF MS完全可以用于臨床實驗室的常規(guī)診斷。
MALDI-TOF MS是一種準確、快速、高通量、成本相對較低的新型真菌檢測方法。所測菌株需要培養(yǎng)3~7 d,每份樣品制備大約需要20 min,而且能夠一次性檢測十幾個菌株,而常規(guī)的形態(tài)學檢測則通常至少需要1周。耗材和試劑的花費每份樣品大約3.5元,盡管主要設備需要約140萬元,但其運行成本較低,綜合成本要相對傳統(tǒng)鑒定方法低[13]。
目前MALDI-TOF MS存在的主要問題是數(shù)據(jù)庫的不完善,數(shù)據(jù)庫為公司所有,未能像核酸數(shù)據(jù)庫BLAST那樣免費面向公眾。臨床菌株的質(zhì)譜和商品化的數(shù)據(jù)庫中的質(zhì)譜可能存在一定的差異,同一真菌在不同地區(qū)的分離株可能存在表型甚至基因結(jié)構(gòu)的不同,因此不同國家和地區(qū)的實驗室利用MALDI-TOF MS鑒定真菌時尚需同時參考根據(jù)本地區(qū)的菌株建立的數(shù)據(jù)庫和商品化數(shù)據(jù)庫。此外,MALDI-TOF MS還不能直接從體液以及其他組織中直接檢測真菌的存在,進行質(zhì)譜分析前分離培養(yǎng)仍是不可缺少的步驟[25]。另外,培養(yǎng)基、培養(yǎng)時間以及各種可能影響到檢測結(jié)果的因素尚需標準化[26]。
MALDI-TOF MS是一種簡單、快速、高通量、成本相對較低的有效檢測技術(shù)。該方法是對傳統(tǒng)微生物檢測方法的補充,為真菌鑒定提供了新的選擇。目前已經(jīng)有學者著手建立針對微生物MALDI-TOF MS鑒定的免費網(wǎng)上質(zhì)譜數(shù)據(jù)庫[27],相信隨著網(wǎng)上質(zhì)譜數(shù)據(jù)庫的建立和不斷完善,MALDI-TOF MS技術(shù)在真菌以及其他微生物檢測等方面的應用將會更加廣泛。
[1]Cassagne C,Ranque S,Normand AC,et al.Mould Routine I-dentification in the Clinical Laboratory by Matrix-Assisted Laser Desorption Ionization Time-Of-Flight Mass Spectrometry[online].Available:www.plosone.org.
[2]Mellmann A,Cloud J,Maier T,et al.Evaluation of Matrix-Assisted Laser Desorption Ionization-Time-of-Flight Mass Spectrometry in Comparison to 16S rRNA Gene Sequencing for Species I-dentification of Nonfermenting Bacteria[J].J Clin Microbiol,2008,46(6):1946-1954.
[3]Saffert RT,Cunning SA,Ihde SM,et al.Comparison of Bruker Biotyper matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometer to BD Phoenix automated microbiology system for identification of gram-negative bacilli[J].J Clin Microbiol,2011,49(3):887-892.
[4]Seng P,Drancourt M,Gouriet F,et al.Ongoing revolution in bacteriology:routine identification of bacteria by matrix-assisted laser desorption ionization time-of-flight mass spectrometry[J].Clin Infect Dis,2009,49(4):543-551.
[5]Tanaka K,Waki H,Ido Y,et al.Protein and polymer analyses up to m/z 100 000 by laser ionization time-of-flight mass spectrometry[J].Rapid Commun Mass Spectrom,1988,2(8):151-153.
[6]Fenn JB,Mann M,Meng CK,et al.Electrospray ionization for mass spectrometry of large biomolecules[J].Science,1989,246(4926):64-71.
[7]何英,陸學東.基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時間質(zhì)譜技術(shù)及其在臨床微生物鑒定中的應用[J].中華檢驗醫(yī)學雜志,2011,34(10):881-888.
[8]Croxatto A,Prod'hom G,Greub G.Applications of MALDI-TOF mass spectrometry in clinical diagnostic microbiology[J].FEMS Microbiol Rev,2012,36(2):380-407.
[9]吳婕,張萍.基質(zhì)輔助激光解析-飛行時間質(zhì)譜分析技術(shù)在致病性細菌研究中的應用[J].儀器儀表與分析監(jiān)測,2010,2:1-4.
[10]Welham KJ,Domin MA,Johnson K,et al.Characterization of fungal spores by laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry[J].Rapid Communications in Mass Spectrometry,2000,14(5):307-310.
[11]Putignani L,Chierico FD,Onori M,et al.MALDI-TOF mass spectrometry proteomic phenotyping of clinically relevant fungi[J].Mol Biosyst,2011,7(3):620-629.
[12]Seyfarth F,Wiegand C,Erhard M,et al.Identification of yeast isolated from dermatological patients by MALDI-TOF mass spectrometry[J].Mycoses,2012,55(3):276-280.
[13]McTaggart LR,Lei E,Richardson SE,et al.Rapid Identification ofCryptococcus neoformansandCryptococcus gattiiby Matrix-Assisted Laser Desorption Ionization-Time of Flight Mass Spectrometry[J].J Clin Microbiol,2011,49(8):3050-3053.
[14]Firacative C,Trilles L,Meyer W.MALDI-TOF MS Enables the Rapid Identification of the Major Molecular Types within theCryptococcus neoformans/C.gattiiSpecies Complex[J].PLoS ONE,2012,7(5):e37566.
[15]Pinto A,Halliday C,Zahra M,et al.Matrix-Assisted Laser Desorption Ionization-Time of Flight Mass Spectrometry Identification of Yeasts Is Contingent on Robust Reference Spectra[online].Available:www.plosone.org.
[16]張明新,朱敏,王玫,等.應用基質(zhì)輔助激光解析電離飛行時間質(zhì)譜鑒定常見細菌和酵母菌[J].中華檢驗醫(yī)學雜志,2011,34(11):988-992.
[17]Alshawa K,Beretti JL,Lacroix C,et al.Successful Identi?cation of Clinical Dermatophyte and Neoscytalidium Species by Matrix-Assisted Laser Desorption Ionization-Time of Flight Mass Spectrometry[J].Journal of Clinical Microbiology,2012,50(7):2277-2281.
[18]Hettick JM,Green BJ,Buskirk AD,et al.Discrimination of Aspergillus isolates at the species and strain level by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry fingerprinting[J].Analytical Biochemistry,2008,380(2):276-281.
[19]Li TY,Liu BH,Chen YC.Characterization of Aspergillus spores by matrix-assisted laser desorption/ionization time-offlight mass spectrometry[J].Rapid Communications in Mass Spectrometry,2000,14(24):2393-2400.
[20]Hettick JM,Green BJ,Buskirk AD,et al.Discrimination of Penicillium isolates by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry fingerprinting[J].Rapid Communications in Mass Spectrometry,2008,22(16):2555-2560.
[21]Chen HY,Chen YC.Characterization of intact Penicillium spores by matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry[J].Rapid Communications in Mass Spectrometry,2005,19(23):3564-3568.
[22]Coulibaly O,Marinach-Patrice C,Cassagne C,et al.Pseudallescheria/Scedosporium complex species identification by matrixassisted laser desorption ionization time-of-flight mass spectrometry[J].Med Mycol,2011,49(6):621-626.
[23]Marinach-Patrice C,Lethuillier A,Marly A,et al.Use of mass spectrometry to identify clinical Fusarium isolates[J].Clin Microbiol Infect,2009,15(7):634-642.
[24]Del Chierico F,Masotti A,Onori M,et al.MALDI-TOF MS proteomic phenotyping of filamentous and other fungi from clinical origin[J].J Proteomics,2012,75(11):3314-3330.
[25]Wieser A,Schneider L,Jung J.MALDI-TOF MS in microbiological diagnostics-identification of microorganisms and beyond(mini review)[J].Appl Microbiol Biotechnol,2012,93(3):965-974.
[26]Croxatto A,Prod'hom G,Greub G.Applications of MALDITOF mass spectrometry in clinical diagnostic microbiology[J].FEMS Microbiol Rev,2012,36(2):380-407.
[27]Bhme K,F(xiàn)ernández-No IC,Barros-Velázquez J,et al.Spectra-Bank:An open access tool for rapid microorganism identification by MALDI-TOF MS fingerprinting[online].Available:http://handle.digital.csic.es/bitstream/10261/51598/1/SpectraBank_open_access_tool.pdf[Accepted Article].