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    L-半胱氨酸縮鄰香草醛Co(Ⅱ)配合物的合成、表征及與DNA的作用研究*

    2012-01-10 09:34:52董麗麗范玉華劉善斌畢彩豐
    關(guān)鍵詞:配位配體半胱氨酸

    董麗麗,范玉華,劉善斌,張 霞,畢彩豐

    (中國海洋大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,海洋化學(xué)理論工程技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,山東青島266100)

    氨基酸類希夫堿是一類重要的生物配體,對(duì)該配合物的深入研究,有助于了解生物體中氨基酸與金屬離子間的鍵合作用,有助于揭示金屬離子在生物體內(nèi)的生理生化功能、化學(xué)行為及作用機(jī)理,并對(duì)合理設(shè)計(jì)、目標(biāo)合成和篩選高效、低毒、高選擇性的抗菌、抗癌藥物具有重要的理論價(jià)值。L-半胱氨酸是一種具有生理活性的α-氨基酸,在醫(yī)藥、食品及化妝品等生產(chǎn)中有著廣泛的應(yīng)用[1-2]。DNA是染色體的主要化學(xué)成分,遺傳信息的載體,研究分子與DNA的作用,對(duì)于發(fā)現(xiàn)新的DNA靶點(diǎn)藥物先導(dǎo)化合物具有重要意義。在金屬配合物與DNA相互作用的研究領(lǐng)域,普遍認(rèn)為金屬配合物與DNA共有3種作用方式:靜電作用、溝槽結(jié)合和插入結(jié)合[3-5]。本文首次以L-半胱氨酸和鄰香草醛為原料,制備了L-半胱氨酸縮鄰香草醛配體及其Co(Ⅱ)配合物。通過元素分析,核磁共振、紅外光譜,紫外-可見光譜,摩爾電導(dǎo)分析及TG-DTG等方法對(duì)Co(Ⅱ)配合物的結(jié)構(gòu)進(jìn)行了表征,確定了該配合物的組成,推測了其可能的結(jié)構(gòu),并對(duì)Co(Ⅱ)配合物與DNA的作用方式進(jìn)行了探討。

    1 實(shí)驗(yàn)材料儀器與方法

    1.1 儀器與試劑

    L-半胱氨酸(L-cys),(天津博迪化學(xué)試劑有限公司),鄰香草醛(ovani),(百靈威),氯化鈉,(天津市廣成化學(xué)試劑有限公司),六氰合鐵(Ⅱ)酸鉀,(廣東光華化學(xué)廠有限公司),Co(CH3COO)2·4H2O,(中國上海江浦化學(xué)制品廠),無水乙醇,(煙臺(tái)三和化學(xué)試劑有限公司),無水甲醇,(煙臺(tái)三和化學(xué)試劑有限公司),二甲基亞砜(DMSO),(天津市廣成化學(xué)試劑有限公司)均為分析純試劑,使用前未經(jīng)過進(jìn)一步純化。三羥甲基氨基乙烷,(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司),CT-DNA(日本TCI)均為生化試劑。Vario-EL-cube型元素分析儀(美國),AVANCEⅢ(600 MHz)核磁共振儀(日本電子株式會(huì)社),AVATAR 360 FT-IR型紅外光譜儀(美國),UV-2550紫外-可見分光光度計(jì)(中國北京),DDS-312A型電導(dǎo)率儀(上海大中分析儀器廠),NETZSCH熱重分析儀(德國),日立F-4600熒光光譜儀(中國北京)。

    1.2 配體與配合物的合成

    1.2.1 配體的合成 稱取1.361 g(10 mmol)乙酸鈉置于100 m L圓底燒瓶中,加入25 m L蒸餾水溶解。將1.212 g(10 mmol)L-半胱氨酸的乙醇溶液加入上述溶液中,攪拌至均勻。再將含有1.522 g(10 mmol)鄰香草醛20 m L乙醇溶液逐滴加入到上述混合溶液中,室溫下攪拌24 h,得白色沉淀,冰浴攪拌1 h,使產(chǎn)物充分沉淀,減壓抽濾,用無水乙醇洗滌多次,得白色粉末,將產(chǎn)物真空干燥保存。分子式為:C11H13NO4S,相對(duì)分子質(zhì)量為:255.3。Wcal/%:C 51.29,H 4.60,N 5.43,S 12.19;Wmea/%:C 51.70,H 5.09,N 5.48,S12.19。

    1.2.2 配合物的合成 稱取0.255 g(1.0 mmol)配體(L-cys-ovani)加入含少量DMSO的甲醇溶液,加熱攪拌使其完全溶解,將含有1.0 mmol的Co(CH3COO)2·4 H2O的乙醇溶液逐滴加入到上述配體溶液中,50℃反應(yīng)4 h,得褐色沉淀,過濾,用甲醇洗滌多次,干燥保存。Wcal/%:C 47.13,H 4.53,N 4.23,S 9.67;Wmea/%:C 47.52,H 4.38,N 4.38,S 9.87。1.3配合物與DNA作用機(jī)理研究所用的表征儀器和分析方法

    1.3.1 溶液的配制:(1)緩沖溶液:用二次蒸餾水配制,含5.0×10-3mol·L-1的Tris,5.0×10-2mol·L-1的NaCl,鹽酸調(diào)節(jié)酸度為p H=7.2。

    (2)CT-DNA溶液的配制:稱取5.0×10-3g CT-DNA溶于50 m L p H=7.2的Tris-HCl緩沖溶液中,使其形成均勻溶液。

    (3)Co(Ⅱ)配合物溶液的配制:將Co(Ⅱ)配合物加入到p H=7.2的Tris-HCl緩沖溶液中,配制濃度約1.0×10-5mol·L-1的溶液。

    (4)實(shí)驗(yàn)試樣系列:在10 m L容量瓶中加入一定量的Co(Ⅱ)配合物,再分別加入不同體積的DNA溶液,然后以p H=7.2的Tris-HCl緩沖溶液定容,避光作用12 h以上。

    1.3.2 紫外-可見光譜 向1 cm的比色皿中加入p H=7.2的Tris-HCl緩沖溶液,用其調(diào)零并作為參比,在200~320 nm波長范圍內(nèi)對(duì)實(shí)驗(yàn)試樣進(jìn)行掃描。1.3.3熒光光譜 采用1 cm的比色皿,對(duì)試樣進(jìn)行3D掃描,確定配合物的最佳激發(fā)波長,在最佳激發(fā)波長下對(duì)試樣系列測定熒光光譜。

    1.3.4 離子強(qiáng)度的影響 在熒光光度計(jì)樣品池中加入一定體積的Co(Ⅱ)配合物和DNA,用微量進(jìn)樣器依次往樣品池中加入一定量的NaCl溶液,使NaCl溶液與Co(Ⅱ)配合物的濃度比值不斷增加,在最佳激發(fā)波長下,測定熒光強(qiáng)度。

    1.3.5 熒光猝滅 在熒光光度計(jì)樣品池中加入一定體積的Co(Ⅱ)配合物和DNA,用微量進(jìn)樣器依次往樣品池中加入一定量的K4[Fe(CN)6]溶液,使K4[Fe(CN)6]溶液與Co(Ⅱ)配合物的濃度比值不斷增加,在最佳激發(fā)波長下,測定熒光強(qiáng)度。

    1.3.6 黏度測定 在測定黏度時(shí),溫度恒定在(25±0.1)℃。測定液按固定DNA的濃度,逐漸增加Co(Ⅱ)配合物濃度配置,測定液的相對(duì)黏度按下式計(jì)算[3]:η=(t-t0)/t0,式中t0表示緩沖溶液流經(jīng)烏氏黏度計(jì)的時(shí)間,t為DNA溶液(含濃度不等的Co(Ⅱ)配合物)流經(jīng)烏氏黏度計(jì)的時(shí)間。以(η/η0)1/3對(duì)r(r=[Co]/[DNA])作圖,η0為未加Co(Ⅱ)配合物時(shí)DNA溶液的相對(duì)黏度。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 結(jié)構(gòu)表征

    2.1.11H NMR譜分析 配體和配合物的1H NMR譜圖如下所示。

    圖1中,1H NMR(600 MHz CD3SO):δ10.25(s,1H),歸屬為COOH上的H;δ6.89(m,3H)歸屬為苯環(huán)的H;δ5.84(s,1H)為OH上的H;δ5.64(s,1H)與苯環(huán)相連的次甲基H;δ4.19(t,1H)與羧基相連的次甲基H;δ3.76(d,3 H)甲氧基上的H;δ3.18(m,2H)亞甲基H;δ2.94(s,1H)氨基上的H。通過上述分析,配體在8.6附近沒有化學(xué)位移,說明沒有希夫堿的生成,而是氨基、巰基與醛基發(fā)生了閉環(huán)反應(yīng),生成了噻唑酸。其結(jié)構(gòu)式如下:

    圖2中,與配體相比,Co(Ⅱ)配合物在9.77 ppm處羧基H的化學(xué)位移依然存在,說明羧基并沒有以羧酸根的形式參與配位,配合物在5.50 ppm附近沒有出現(xiàn)化學(xué)位移,說明OH的H已經(jīng)失去,羥基以脫去H原子的方式參與了配位。3.84 ppm處的化學(xué)位移說明甲氧基的氧沒有參與配位,1.21 ppm處出現(xiàn)了新的化學(xué)位移,為醋酸根中甲基上H的化學(xué)位移,說明亞仲配合物中存在醋酸根,2.97 ppm處為仲氨基的H的化學(xué)位移,與配體3.04 ppm相比,發(fā)生偏移,說明仲氨基參與了配位。

    2.1.2 紅外光譜 采用KBr壓片法,波長掃描范圍為4 000~400 cm-1。

    (1)配體在3 419 cm-1處的吸收峰歸屬為酚羥基的OH伸縮振動(dòng),3 089 cm-1處的吸收峰為仲氨基的N-H伸縮振動(dòng)峰,也進(jìn)一步說明沒有生成希夫堿。2 900及2 800 cm-1左右的峰歸屬為飽和C-H的伸縮振動(dòng),2 600及2 400 cm-1處的寬峰說明羧基是以分子間締合的方式存在。1 624 cm-1處的吸收峰為羧酸中羰基的振動(dòng)峰,由于形成了分子間締合,所以使得峰值向低波數(shù)移動(dòng),1 482 cm-1處的吸收峰可認(rèn)為是C-C單鍵的伸縮振動(dòng)峰,1 357 cm-1為C-N的伸縮振動(dòng)峰,1 268 cm-1處歸屬為甲氧基的C-O伸縮振動(dòng)峰,而1 065 cm-1可認(rèn)為是酚羥基的C-O振動(dòng)峰。

    (2)游離醋酸根離子的υas(coo-)與υs(coo-)大約分別在1 560和1 416 cm-1處[6],在與過渡金屬離子Co(Ⅱ)形成配合物后,υas(coo-)與υs(coo-)均發(fā)生了變化,υas(coo-)在1 584cm-1處,υs(coo-)出現(xiàn)在1 444 cm-1處,且Co(Ⅱ)配合物中相對(duì)應(yīng)的υas(coo-)與υs(coo-)差值均小于200 cm-1,接近雙齒配位范圍,說明醋酸根的氧原子以雙齒形式參與了配位。Co(Ⅱ)配合物中酚羥基的C-O振動(dòng)峰大約在1 210 cm-1處,與配體相比發(fā)生了明顯的偏移,說明酚羥基參與了配位。Co(Ⅱ)配合物中在3 089 cm-1處附近沒有出現(xiàn)尖峰,說明N參與了配位。而甲氧基的吸收峰沒有明顯偏移,說明甲氧基的O原子沒有參與配位。

    2.1.3 紫外-可見光譜 在DMSO溶液中測定配體與Co(Ⅱ)配合物的紫外光譜,Co(Ⅱ)配合物在200~320 nm范圍內(nèi)有2處吸收峰。208 nm處的吸收峰歸屬為苯環(huán)的π–π*電子躍遷。256 nm處的吸收峰歸屬為配體與金屬離子發(fā)生的LMCT(ligand to metal charge transfer)躍遷,表明金屬離子與配體發(fā)生了反應(yīng),生成了配合物。

    2.1.4 配合物的電導(dǎo)率及摩爾電導(dǎo)率 以DMSO為溶劑,在濃度為0.97×10-3mol·L-1時(shí),測得Co(Ⅱ)配合物的摩爾電導(dǎo)率為23.12S·cm2·mol-1,其數(shù)值小于35S·cm2·mol-1,可以認(rèn)為該配合物為非電解質(zhì)[7],即COO-參與了配位。

    2.1.5 配合物的熱分解動(dòng)力學(xué)研究 在升溫速率10℃·min-1和N2氛圍條件下,測定了Co(Ⅱ)配合物的熱分析(TG-DTG)曲線,如圖3所示。

    圖3 配合物[Co2(C11 H 12 NO4 S)2(CH 3 COO)2]的TG-DTG曲線Fig.3 TG-DTG curves of the[Co2(C11 H 12 NO4 S)2(CH 3 COO)2]

    Co(Ⅱ)配合物的熱分解是在室溫至800℃溫度區(qū)間內(nèi)測定的。第一步熱分解的溫度區(qū)間為25~150℃,失重率為13.87%,與失去兩分子醋酸根的計(jì)算值(13.11%)基本相符。150~800℃為配合物的逐步分解過程,溫度至800℃時(shí),殘重率為19.92%,與理論殘重計(jì)算值19.87%相符,熱分解殘余物為CoO。

    2.1.6 配合物可能的結(jié)構(gòu) 由上述表征方法推出Co(Ⅱ)配合物的結(jié)構(gòu)可能如下:

    圖4 Co(Ⅱ)配合物可能的結(jié)構(gòu)圖Fig.4 The suggested structure of the Co(Ⅱ)complex

    2.2 Co(Ⅱ)配合物與DNA相互作用

    2.2.1 Co(Ⅱ)配合物與DNA作用的紫外吸收光譜

    紫外可見光譜是研究DNA與金屬配合物結(jié)合方式的有效方法之一。固定配合物的濃度,逐漸加大DNA的濃度,避光靜置12 h后測定其吸光度。從圖5曲線的變化可知,隨著DNA濃度的增加,紫外可見光譜發(fā)生了減色效應(yīng)和微小紅移,這是因?yàn)榕浜衔锏腃o(Ⅱ)離子與DNA的堿基對(duì)發(fā)生了強(qiáng)烈的堆積作用所致。這表明Co(Ⅱ)配合物與DNA的作用方式很可能是插入作用[8]。

    圖5 不同濃度DNA與Co(Ⅱ)配合物相互作用的紫外吸收光譜圖Fig.5 Electronic absorption spectra of the Co(Ⅱ)complex with increasing amounts of DNA

    2.2.2 Co(Ⅱ)配合物與DNA作用的熒光光譜 Co(Ⅱ)配合物與DNA作用熒光光譜圖如圖6。

    圖6 不同濃度DNA與Co(Ⅱ)配合物相互作用熒光光譜圖Fig.6 Emission spectra of Co(Ⅱ)complex with increasing amounts of concentrations of DNA

    從熒光光譜圖的變化可知,配合物的熒光強(qiáng)度隨著DNA濃度的增加而增大,這是由于配合物插入到DNA的堿基對(duì)中,使配合物的發(fā)光基團(tuán)進(jìn)入疏水環(huán)境,避免了水分子的猝滅作用,從而使配合物的熒光強(qiáng)度增強(qiáng)[9]。這進(jìn)一步表示Co(Ⅱ)配合物與DNA的相互作用方式可能為經(jīng)典插入作用。

    2.2.3 離子強(qiáng)度對(duì)Co(Ⅱ)配合物與DNA作用的影響

    通過加入NaCl來改變試樣所處的離子強(qiáng)度環(huán)境,也是表征配合物與DNA作用的一種有效的方法。鹽的陽離子可以中和DNA堿基對(duì)上磷酸根所帶的負(fù)電荷,如果配合物通過靜電作用與DNA結(jié)合,那么隨著鹽離子強(qiáng)度的增加,DNA表面會(huì)被Na+陽離子包圍,從而使配合物難以接近DNA,而使得配合物與DNA的作用減弱,進(jìn)而使熒光強(qiáng)度減弱[10]。當(dāng)配合物與DNA以溝面結(jié)合時(shí),隨著離子強(qiáng)度的增加,配合物與DNA的結(jié)合減弱導(dǎo)致配合物與DNA分開,熒光強(qiáng)度減弱。而當(dāng)配合物與DNA以插入的方式結(jié)合時(shí),離子強(qiáng)度則不會(huì)對(duì)配合物與DNA的作用產(chǎn)生明顯的影響。固定DNA及Co(Ⅱ)配合物的濃度,逐漸增加NaCl的濃度,使Na+的離子強(qiáng)度不斷增加,如圖7所示,隨著離子濃度的增加,熒光強(qiáng)度并沒有發(fā)生明顯的變化,說明Co(Ⅱ)配合物與DNA的作用方式不是靜電作用或溝面結(jié)合,應(yīng)該是以插入方式結(jié)合的。

    圖7 NaCl對(duì)Co(Ⅱ)-DNA體系熒光強(qiáng)度的影響Fig.7 Effect of fluorescence spectra of Co(Ⅱ)-DNA with increasing amounts of NaCl

    2.2.4 [Fe(CN)6]4-對(duì)Co(Ⅱ)配合物與DNA作用的熒光猝滅作用 以[Fe(CN)6]4-作為猝滅劑,比較熒光猝滅劑對(duì)發(fā)光物質(zhì)在結(jié)合DNA作用前后發(fā)光猝滅的差異,是研究配合物與DNA相互作用的另一種簡便而有效的方法[10]。在緩沖溶液中配合物以陽離子的狀態(tài)存在,其熒光被高負(fù)電荷的[Fe(CN)6]4-所猝滅[11]。配合物與DNA發(fā)生插入結(jié)合后,配合物就會(huì)受到DNA的保護(hù),由于DNA螺旋表面的磷酸根負(fù)電荷的排斥,使猝滅劑很難接近配合物陽離子,則[Fe(CN)6]4-對(duì)配合物的熒光猝滅程度將降低。圖8給出了[Fe(CN)6]4-對(duì)配合物與DNA作用的熒光猝滅曲線。從圖中可見,在無DNA存在時(shí),Co(Ⅱ)配合物的熒光能被[Fe(CN)6]4-迅速的猝滅,但是當(dāng)Co(Ⅱ)配合物與DNA相互作用后,因受到DNA的保護(hù),降低了[Fe(CN)6]4-對(duì)Co(Ⅱ)配合物熒光的猝滅效率,同時(shí)由于Co(Ⅱ)配合物與DNA作用以后的猝滅曲線近似于1條斜率為零的直線,進(jìn)一步表明Co(Ⅱ)配合物與DNA是以插入模式作用的。

    圖8 [Fe(CN)6]4-對(duì)Co(Ⅱ)-DNA體系的熒光猝滅曲線Fig.8 Emission quenching curves of the Co(Ⅱ)-DNA by quencher[Fe(CN)6]4-

    2.2.5 黏度的測定 光譜學(xué)性質(zhì)的研究雖然得到了一致的結(jié)果,但是仍不足以證明配合物與DNA的結(jié)合方式。為進(jìn)一步明確配合物與DNA的作用方式,本文對(duì)Co(Ⅱ)-DNA體系的黏度進(jìn)行了測定。液體的流動(dòng)性對(duì)體系內(nèi)分子長度的變化非常敏感,因此在缺乏晶體學(xué)數(shù)據(jù)的情況下,黏度法對(duì)配合物與DNA結(jié)合方式進(jìn)行測定是比較可靠的方法。

    圖9 Co(Ⅱ)配合物濃度對(duì)DNA黏度的影響[Co]/[DNA]=0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0)Fig.9 Effects of increasing amounts of the Co(Ⅱ)complex on the relative viscosity of DNA[Co]/[DNA]=0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0

    在經(jīng)典的插入作用模式中,DNA的雙螺旋變長,從而使堿基對(duì)分開,以便有足夠的空間來結(jié)合配合物,這使得DNA溶液的黏度增加。與此相反,部分插入或者非經(jīng)典插入中,配合物可以使DNA螺旋彎曲或者扭曲,從而降低了DNA的黏度。還有一些配合物是通過靜電方式與DNA結(jié)合的,對(duì)DNA的黏度沒有影響[12]。如圖9所示,黏度測試的結(jié)果清楚的表明,Co(Ⅱ)配合物可以插入DNA鄰近的堿基對(duì)中,導(dǎo)致DNA螺旋結(jié)果的伸長,從而使DNA的黏度增加。

    3 結(jié)語

    本文合成了1種新的Co(Ⅱ)配合物,通過元素分析、核磁共振、紅外光譜、紫外-可見光譜、摩爾電導(dǎo)率分析及TG-DTG等手段對(duì)合成的Co(Ⅱ)配合物進(jìn)行了表征,推測雙核配合物的組成為[Co2(C11H12NO4S)-2(CH3COO)2]。進(jìn)一步通過紫外-可見光譜,熒光發(fā)射光譜,離子強(qiáng)度改變,[Fe(CN)6]4-熒光猝滅及黏度測定等方法對(duì)Co(Ⅱ)配合物與CT-DNA結(jié)合方式進(jìn)行了研究,證明Co(Ⅱ)配合物與CT-DNA結(jié)合方式為插入結(jié)合。

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