賈媛媛,王紹慶,常廣軍,張?jiān)词?,莊蘇,倪迎冬,沈向真,陳杰,趙茹茜
(南京農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院 農(nóng)業(yè)部動(dòng)物生理生化重點(diǎn)開(kāi)放實(shí)驗(yàn)室,江蘇 南京210095)
隨著我國(guó)人民生活水平的改善,奶業(yè)在整個(gè)國(guó)民經(jīng)濟(jì)中的地位日益提高。但是,以秸稈為主要粗飼料時(shí),大量飼喂高精料雖然在一定程度上提高了反芻動(dòng)物的生產(chǎn)性能,卻極易引發(fā)瘤胃亞急性酸中毒(subacute ruminal acidosis,SARA)。SARA是一種常見(jiàn)的代謝性疾?。?],商業(yè)化奶牛養(yǎng)殖場(chǎng)中,有20%以上的奶牛在泌乳早期和泌乳中期患有SARA[2],并且發(fā)病率呈逐年上升趨勢(shì),造成了極大的經(jīng)濟(jì)損失[3]。SARA發(fā)生時(shí)瘤胃酸度和細(xì)菌脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)濃度顯著增加,嚴(yán)重感染受損的瘤胃上皮[4,5],LPS發(fā)生移位進(jìn)入血液,形成內(nèi)毒素血癥[6,7],引發(fā)全身性炎癥反應(yīng)[8]。此外,機(jī)體免疫系統(tǒng)遭到損害,使動(dòng)物處于一種慢性應(yīng)激狀態(tài)。目前,國(guó)內(nèi)外對(duì)SARA的研究多集中于瘤胃發(fā)酵模式和血液參數(shù)的改變,對(duì)應(yīng)激反應(yīng)的研究較少。Steiger等[9]和Waldron等[10]的相關(guān)研究指出,奶牛注射LPS后免疫細(xì)胞所釋放的細(xì)胞因子最終能激活下丘腦-垂體-腎上腺軸(hypothalamie-pituitary-adrenalaxis,HPA)。Niel等[11]研究表明,綿羊注射IL-6后外周血中促腎上腺皮質(zhì)激素和皮質(zhì)醇濃度均顯著升高,并將這2項(xiàng)指標(biāo)作為HPA軸激活的標(biāo)志。糖皮質(zhì)激素是體內(nèi)重要的應(yīng)激和代謝激素,對(duì)機(jī)體在正常和應(yīng)激,包括疾病和炎癥狀態(tài)下?tīng)I(yíng)養(yǎng)的重分配,能量平衡的維持以及在逆境下的生存起決定性的作用[12,13]。肝臟作為機(jī)體重要的代謝器官,肝臟上存在高豐度表達(dá)的糖皮質(zhì)激素受體(glucocorticoid receptor,GR),能夠接受糖皮質(zhì)激素的信息并做出適應(yīng)調(diào)節(jié)[14]。但SARA狀態(tài)下HPA軸是否被激活及受體是否改變卻鮮有報(bào)道。本研究旨在模擬實(shí)際生產(chǎn)中的飼喂模式,通過(guò)添加高精料日糧誘導(dǎo)亞急性瘤胃酸中毒,初步揭示SARA時(shí)機(jī)體的應(yīng)激反應(yīng)狀態(tài)及肝臟上糖皮質(zhì)激素受體基因表達(dá)的變化。
選用健康狀況良好、體重15~20kg的泌乳中期山羊(波爾山羊與浙江麗水本地山羊雜交后代)7只,手術(shù)安裝永久性瘤胃瘺管,恢復(fù)期為14d,2010年12月-2011年2月飼養(yǎng)于南京農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物房,單籠飼養(yǎng),隨機(jī)分為2組,分別飼喂精粗比為4∶6和6∶4的日糧,自由飲水。
本試驗(yàn)采用2×2拉丁方設(shè)計(jì),隨機(jī)分為2組(分別為3和4只),分別飼喂精粗比4∶6(對(duì)照組)和6∶4(SARA組)日糧(由羊草、苜蓿草和精料組成),粗料由20%苜蓿草和80%羊草組成,配方詳見(jiàn)表1。2組日糧總能量和總蛋白含量相等。試驗(yàn)分為2期,每期包括適應(yīng)期14d和采樣期5d(適應(yīng)期和采樣期都飼喂相同的試驗(yàn)日糧),第1期采樣結(jié)束后調(diào)換日糧。每日08:00和20:00各擠奶1次。
1.3.1 瘤胃液采集和處理 采樣當(dāng)天,于飼喂前0 h,以及飼喂后1,2,4,6和10h通過(guò)瘤胃瘺管采集瘤胃液10mL(經(jīng)孔徑為0.15mm尼龍絹過(guò)濾),立即測(cè)定pH,然后裝入塑料離心管中,在4℃條件下,1 900 r/min離心30min,取上清,-20℃保存。
1.3.2 血液采集和處理 采樣前2d,在山羊頸靜脈處安裝血管瘺。分別于飼喂前0h、飼喂后6h經(jīng)頸靜脈血管瘺采集血液,裝入肝素鈉真空離心管中,4℃,3 500r/min離心15min,收集血漿,-20℃保存。
1.3.3 肝臟RNA的提取及 Real-time PCR 肝臟活體采樣,利用TRIZOL一步法提取肝臟樣品總RNA,紫外分光光度儀測(cè)定總RNA的濃度和純度(OD260/280),變性瓊脂糖凝膠電泳驗(yàn)證RNA質(zhì)量,-70℃保存?zhèn)溆谩7崔D(zhuǎn)錄酶體系及Tap酶為Promega產(chǎn)品,SYBR Green購(gòu)自TaKaRa公司。GR和β-actin引物采用Primer 5.0軟件自行設(shè)計(jì),由上海英駿生物技術(shù)有限公司合成,引物序列見(jiàn)表2。
表1 試驗(yàn)精料日糧組成Table 1 Composition of experimental diets
表2 目的基因引物序列Table 2 The primer sequences of the target genes
瘤胃液、血液內(nèi)LPS采用ELISA法測(cè)定,按試劑盒說(shuō)明書(shū)操作進(jìn)行,標(biāo)準(zhǔn)方程分別為:Y=297.6 X+14.52,R2=0.994;Y=301.1 X+13.59,R2=0.994,式中,X表示各樣品所測(cè) OD值,Y表示各樣品對(duì)應(yīng) LPS含量(EU/L),R表示相關(guān)系數(shù),LPS試劑盒購(gòu)于上海朗頓生物科技有限公司。瘤胃液內(nèi)乳酸用比色法測(cè)定[15,16],乳酸濃度=(樣品OD值-空白OD值)×標(biāo)準(zhǔn)品濃度/(標(biāo)準(zhǔn)品OD值-空白OD值),乳酸試劑盒購(gòu)自南京建成生物工程研究所。血漿、瘤胃液皮質(zhì)醇濃度采用放射免疫分析(radioimmunoassay,RIA)法測(cè)定,測(cè)定方法按放免檢測(cè)藥盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行,試劑盒購(gòu)于北京北方生物技術(shù)研究所。以上試驗(yàn)均重復(fù)2次。
數(shù)據(jù)采用SPSS 17.0軟件進(jìn)行單變量雙因素分析,主效應(yīng)分別為日糧處理和采樣時(shí)間;用ANOVA進(jìn)行方差分析,采用多項(xiàng)式比較分析日糧處理的效應(yīng)。
2種日糧飼喂條件下,瘤胃液pH動(dòng)態(tài)變化趨勢(shì)基本一致(圖1)。瘤胃液pH在飼喂前最高,飼喂后隨時(shí)間延長(zhǎng),pH逐漸下降,隨后由于瘤胃本身的緩沖能力pH又逐漸上升。其中,SARA組山羊在飼喂后1h,pH開(kāi)始低于5.8,一直持續(xù)到6h。飼喂后6hSARA組山羊瘤胃液pH顯著低于對(duì)照組(P<0.05),飼喂后1,2和4hSARA組山羊瘤胃液pH極顯著低于對(duì)照組(P<0.01)。日糧類(lèi)型以及日糧類(lèi)型與發(fā)酵時(shí)間互作效應(yīng)對(duì)瘤胃pH有顯著影響(P<0.05)。
飼喂后山羊瘤胃液內(nèi)LPS濃度隨時(shí)間變化呈現(xiàn)上升趨勢(shì)(P<0.1)(圖2A),但同一時(shí)間點(diǎn)相比2組間無(wú)顯著性差異(P>0.05)。采用雙因子分析日糧類(lèi)型和發(fā)酵時(shí)間兩因素間的主效應(yīng)關(guān)系,結(jié)果發(fā)現(xiàn)日糧類(lèi)型對(duì)瘤胃液內(nèi)LPS濃度有顯著性影響(P<0.05),但日糧類(lèi)型與發(fā)酵時(shí)間之間無(wú)互作效應(yīng)(P>0.05)。采食前和采食后6h血漿中LPS濃度也發(fā)生改變,日糧類(lèi)型對(duì)血液LPS濃度產(chǎn)生顯著性影響(P<0.05)(圖2B),0和6hSARA組血漿內(nèi)LPS濃度均顯著高于對(duì)照組(P<0.05),但日糧類(lèi)型和發(fā)酵時(shí)間之間無(wú)交互效應(yīng)(P>0.05)。
圖1 不同精粗比日糧對(duì)瘤胃液pH的影響Fig.1 Effects of different crude ratio diets on pH values in rumen fluid
圖2 不同精粗比日糧對(duì)瘤胃液(A)和血漿(B)中LPS含量的影響Fig.2 Effect of different crude ratio diets on LPS content in rumen fluid(A)and plasma(B)
山羊瘤胃液中乳酸含量較低,均小于1 mmol/L(圖3)。采食前SARA組山羊瘤胃液中乳酸濃度顯著高于對(duì)照組(P<0.05),采食后0~4h乳酸含量下降,4h時(shí)顯著高于對(duì)照組(P<0.05),6~10h時(shí)逐漸增加并極顯著高于對(duì)照組(P<0.01)。然而,對(duì)照組乳酸濃度在采食后1h顯著性上升(P<0.05),采食后2~6h乳酸濃度又急劇下降。采用雙因素方差分析顯示,日糧類(lèi)型以及日糧類(lèi)型和發(fā)酵時(shí)間交互作用對(duì)乳酸濃度具有極顯著效應(yīng)(P<0.01)。
圖3 不同精粗比日糧對(duì)瘤胃內(nèi)乳酸的影響Fig.3 Effect of different crude ratio diets on lactate concentrations in rumen fluid
與對(duì)照組相比,SARA組山羊采食前血液中皮質(zhì)醇濃度有升高的趨勢(shì)(P=0.05,n=7)(圖4A),采食后6h兩組間差異不顯著(P>0.05)。采食后0~6h期間,SARA組山羊瘤胃液皮質(zhì)醇濃度呈逐漸上升的趨勢(shì)(圖4B),采食后6h達(dá)最高水平,10h時(shí)基本恢復(fù)至采食前水平,并且在采食后2,4和6h分別顯著高于對(duì)照組(P<0.05,n=7)。在瘤胃液中皮質(zhì)醇濃度上,日糧類(lèi)型對(duì)其具有極顯著影響(P=0.006),發(fā)酵時(shí)間具有顯著性影響(P=0.03),日糧類(lèi)型和發(fā)酵時(shí)間之間有互作的趨勢(shì)(P=0.063)。
圖4 不同精粗比日糧對(duì)血漿(A)和瘤胃液(B)內(nèi)皮質(zhì)醇濃度的影響Fig.4 Effect of different crude ratio diets on cortisol concentrations in plasma(A)and rumen fluid(B)
與對(duì)照組相比,飼喂日糧精粗比6∶4的SARA組山羊肝臟在GR mRNA表達(dá)上表現(xiàn)出顯著性下調(diào)(P<0.05)(圖5)。
圖5 不同精粗比日糧對(duì)肝臟GR mRNA表達(dá)的影響Fig.5 Effect of different crude ratio diets on GR mRNA expression in liver
SARA是指反芻動(dòng)物采食過(guò)多谷物類(lèi)易發(fā)酵碳水化合物飼料,導(dǎo)致瘤胃長(zhǎng)時(shí)間處于低pH值狀態(tài),并伴隨少量乳酸積累的一種代謝性疾病[17,18]。目前,研究者已將瘤胃pH值作為衡量SARA發(fā)生與否的最有效指標(biāo)。Yang和Beauchemin[19]認(rèn)為可以把瘤胃pH值低于5.8作為衡量SARA發(fā)生的臨界pH值。本研究顯示,與飼喂精粗比4∶6日糧相比,飼喂精粗比6∶4日糧2周后的山羊瘤胃液pH值在飼喂后1h開(kāi)始低于5.8,并一直持續(xù)6h后才緩慢上升,試驗(yàn)后期動(dòng)物出現(xiàn)厭食、精神萎靡等典型的亞急性酸中毒癥狀,從而表明本試驗(yàn)已成功誘導(dǎo)泌乳期山羊亞急性瘤胃酸中毒。
目前有關(guān)反芻動(dòng)物在SARA期間瘤胃內(nèi)是否存在乳酸以及乳酸含量的范圍尚不清楚。Krause和Oetzel[20]研究發(fā)現(xiàn),奶牛發(fā)生SARA時(shí)瘤胃內(nèi)乳酸濃度為0.45~0.74mmol/L;Keunen等[21]報(bào)道奶牛瘤胃液中乳酸含量小于10mmol/L;胡紅蓮等[22]認(rèn)為,當(dāng)日糧中非纖維性碳水化合物/中性洗滌纖維(NFC/NDF)達(dá)到2.58時(shí),奶山羊瘤胃中才檢測(cè)到乳酸,但其含量低于0.1mmol/L。本研究發(fā)現(xiàn),瘤胃內(nèi)存在少量乳酸,其最高濃度低于1 mmol/L,此結(jié)果與以往的報(bào)道相一致[19,23]。正常情況下,當(dāng)瘤胃pH下降到6左右時(shí),乳酸生成菌迅速增加,而乳酸利用菌增長(zhǎng)速度較慢。本研究發(fā)現(xiàn),對(duì)照組山羊在采食后1h瘤胃液pH下降到6左右時(shí),乳酸含量激增,此后隨時(shí)間延長(zhǎng)乳酸逐漸被利用或吸收,出現(xiàn)乳酸濃度下降,之后恢復(fù)到采食前水平。SARA組山羊在飼喂后1 h瘤胃內(nèi)乳酸沒(méi)有出現(xiàn)迅速升高,而是呈先降低后上升的過(guò)程,并且在采食后期極顯著高于對(duì)照組(P<0.01)。這可能是由于瘤胃長(zhǎng)期處于病理狀態(tài),菌群組成發(fā)生改變,也可能與高精料以及精料組成有關(guān)。據(jù)報(bào)道,苜蓿是高果膠(5%~10%)飼料,且富含鈣、鉀等堿性元素,具有較強(qiáng)的緩沖能力,果膠雖在瘤胃中降解快,但發(fā)酵產(chǎn)物是半乳糖醛酸,抑制了酸性乳酸菌的發(fā)酵,從而有助于瘤胃液pH值的穩(wěn)定[24]。在本研究中,SARA組飼料中玉米和麩皮含量高,為乳酸生成菌提供充足的碳源和能源,其中麩皮能增強(qiáng)乳酸菌的耐酸性[24,25]。因此,瘤胃內(nèi)乳酸的積累促進(jìn)了SARA酸中毒的發(fā)展,與以往的研究結(jié)果相一致[8]。眾所周知,飼料的組成和消化利用率影響反芻動(dòng)物內(nèi)分泌水平和生產(chǎn)性能[26,27],SARA對(duì)反芻動(dòng)物內(nèi)分泌、乳成分和乳產(chǎn)量的影響及確切機(jī)制仍待進(jìn)一步研究。
脂多糖也是引發(fā)SARA的誘因之一。在正常生理狀態(tài)下,反芻動(dòng)物瘤胃和血液中含有少量LPS[28],肝臟和網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)完全可以清除這些毒素,所以不會(huì)引發(fā)內(nèi)毒素血癥。而有資料報(bào)道,谷物誘導(dǎo)反芻動(dòng)物發(fā)生SARA時(shí)往往伴隨著瘤胃和血液中LPS的升高[8,29,30]。SARA時(shí)瘤胃內(nèi)酸度逐漸增加,革蘭氏陰性菌大量裂解,釋放內(nèi)毒素——細(xì)胞壁主要成分LPS[4,5],損傷侵染瘤胃壁并少量轉(zhuǎn)移至血液,導(dǎo)致內(nèi)毒素血癥[7]。本試驗(yàn)研究結(jié)果與以往報(bào)道相一致,SARA組山羊血液中LPS含量顯著高于正常組,日糧處理對(duì)瘤胃液和血漿內(nèi)LPS均有顯著性影響,并且無(wú)論是采食前還是采食后,SARA組瘤胃液和血漿內(nèi)都含有高濃度LPS,提示系統(tǒng)性炎癥反應(yīng)的存在,而LPS的增加可能反過(guò)來(lái)又加劇了SARA的病情,提示LPS與SARA之間具有相輔相成的效應(yīng)。
目前,有關(guān)SARA期間體內(nèi)皮質(zhì)醇濃度變化的研究較少,但注射LPS或IL-6均可引起皮質(zhì)醇的升高。奶牛注射LPS后其外周血中皮質(zhì)醇和腫瘤壞死因子濃度升高[10,11],LPS可刺激單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞引起血液皮質(zhì)醇、促乳素和腫瘤壞死因子濃度的增加[31],而免疫細(xì)胞所釋放的細(xì)胞因子導(dǎo)致應(yīng)激軸HPA軸的激活[32]。Niel等[11]的研究證明,給綿羊注射IL-6可引起外周血促腎上腺皮質(zhì)激素和皮質(zhì)醇濃度的升高,并將這2項(xiàng)指標(biāo)作為HPA軸激活的標(biāo)志。本研究發(fā)現(xiàn),SARA組在采食前血漿皮質(zhì)醇濃度均高于對(duì)照組,提示SARA組山羊HPA軸被激活,機(jī)體可能處于一種慢性應(yīng)激狀態(tài)。本研究還發(fā)現(xiàn)瘤胃液中也存在皮質(zhì)醇,但濃度顯著低于血漿中濃度,關(guān)于瘤胃內(nèi)皮質(zhì)醇的來(lái)源,可能是經(jīng)血流通過(guò)唾液和瘤胃壁進(jìn)入瘤胃(內(nèi)源性)[33]。有學(xué)者指出,反芻動(dòng)物下丘腦-垂體-靶細(xì)胞分泌的激素可以作用于機(jī)體特殊的靶細(xì)胞——瘤胃微生物而影響瘤胃代謝,瘤胃內(nèi)容物存在內(nèi)分泌激素和遞質(zhì),如甾體類(lèi)激素17β-雌二醇,可參與調(diào)節(jié)瘤胃內(nèi)微生物的發(fā)酵[34,35]。此外,本試驗(yàn)還發(fā)現(xiàn)SARA組山羊瘤胃液中皮質(zhì)醇水平在采食后2~6h顯著高于對(duì)照組(P<0.05),并且日糧類(lèi)型對(duì)瘤胃液中皮質(zhì)醇濃度具有極顯著影響(P=0.006)。而有關(guān)高濃度皮質(zhì)醇是否會(huì)對(duì)瘤胃發(fā)酵和瘤胃壁營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的吸收產(chǎn)生影響,或者是否與內(nèi)毒素LPS一起促進(jìn)瘤胃壁的損傷造成內(nèi)毒素血癥,仍有待于進(jìn)一步研究。
糖皮質(zhì)激素作為主要的應(yīng)激激素,參與調(diào)節(jié)機(jī)體免疫功能、炎癥反應(yīng)和物質(zhì)代謝等功能,慢性應(yīng)激常導(dǎo)致機(jī)體物質(zhì)代謝的紊亂[36,37]。肝臟作為體內(nèi)重要的物質(zhì)代謝器官,在糖、脂肪、蛋白質(zhì)和維生素等物質(zhì)代謝中起重要作用,肝臟上存在高豐度的糖皮質(zhì)激素受體GR,接受糖皮質(zhì)激素的信息并作出適應(yīng)性調(diào)節(jié)[13]。本試驗(yàn)中,SARA組山羊血液皮質(zhì)醇濃度顯著升高,伴隨肝臟GR基因表達(dá)顯著下調(diào),此現(xiàn)象是機(jī)體應(yīng)對(duì)糖皮質(zhì)激素升高的負(fù)反饋調(diào)節(jié)結(jié)果。肝臟糖皮質(zhì)激素受體轉(zhuǎn)錄水平的下調(diào)是否引起下游信號(hào)通路的改變,以及對(duì)肝臟物質(zhì)代謝及營(yíng)養(yǎng)重分配是否產(chǎn)生影響仍需進(jìn)一步研究。
本研究在成功誘導(dǎo)泌乳期山羊瘤胃SARA的基礎(chǔ)上,分析了瘤胃液中pH、LPS和乳酸的變化,并首次報(bào)道SARA時(shí)血漿和瘤胃液中糖皮質(zhì)激素水平升高以及肝臟GR受體的反饋性下調(diào),提示患SARA時(shí)HPA軸的激活可能引起肝臟的物質(zhì)代謝和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)重分配的改變。
[1]Jouany J P.Optimizing rumen functions in the close-up transition period and early lactation to drive dry matter intake and energy balance in cows[J].Animal Reproduction Science,2006,96:250-264.
[2]Oetzel G R.Proceedings of the 33rd annual convention of the American association of bovin epractitioner[J].Clinical Aspects of Rumnal Acidos is in Dairy Cattle,2000,30:46-53.
[3]張樹(shù)金.奶牛亞急性瘤胃酸中毒(SARA)[J].中國(guó)動(dòng)物保健,2004,8:23-24.
[4]Enemark J M D,Peters G,Jorgensen R S,et al.Rumen acidosis with special emphasis on diagnostic aspects of subclinical rumen acidosis:A review[J].Veterinarijair Zootechnika,2002,20:16-29.
[5]Kleen J L,Hooijer G A,Rehage J,et al.Subacute ruminal acidosis(SARA):A review[J].Journal of Veterinary Medicine,2003,50(8):406-414.
[6]Dougherty R W,Coburn K S,Cood H M,et al.Preliminary study of appearance of endotoxin in circulatory system of sheep and cattle after grain engorgement[J].American Journal of Veterinary Research,1975,36:831-832.
[7]譚學(xué)詩(shī),龐全海,梁玉金,等.山羊乳酸酸中毒的模擬試驗(yàn)[J].中國(guó)獸醫(yī)雜志,1992,18(5):16-17.
[8]Gozho G N,Plaizier J C,Krause D O,et al.Subactute ruminal acidosis induces ruminal lipopolysaccharide endotoxin release and triggers an inflammatory response[J].Journal of Dairy Science,2005,88:1399-1403.
[9]Steiger M,Senn M,Altreuther G,et al.Effect of prolonged low dose lipopolysaccharide infusion on feed intake and metabolism in heifers[J].Journal of Animal Science,1999,77:2523-2532.
[10]Waldron M R,Nishida T,Nonnecke B J,et al.Effect of lipopolysaccharide on indices of peripheral and hepatic metabolism in lactating cows[J].Journal of Dairy Science,2003,86:3447-3459.
[11]Niel A,Karrow,You Q M,et al.Activation of the ovine hypothalamic-pituitary-adrenal axis and febrile response by interleukin-6:A comparative study with bacterial lipopolysaccharide endotoxin[J].The Canadian Journal of Veterinary Research,2010,74:30-33.
[12]Drouin J,Bilodeau S,Vallette S.Of old and new diseases:genetics of pituitary ACTH excess(Cushing)and deficiency[J].Clinical Genetics,2007,72:175-182.
[13]Dallman M F,Pecoraro N C,La Fleur S E,et al.Glucocorticoids,chronic stress,and obesity[J].Progess in Brain Research,2006,153:75-105.
[14]Butts C L,Jones Y L,Lim J K,et al.Tissue expression of steroid hormone receptors is associated with differential immune responsiveness[J].Brain Behavior Immunity,2011,25(5):1000-1007.
[15]張龍翔,張庭芳,李令媛.生化實(shí)驗(yàn)方法和技術(shù)[M].2版.北京:高等教育出版社,1997:422-428.
[16]蘇文偉.乳酸等指標(biāo)在奶牛分娩前后的動(dòng)態(tài)變化及相關(guān)性研究[D].南寧:廣西大學(xué),2008.
[17]Gozho G N,Plaizier J C,Krause D O,et al.Subactute ruminal acidosis induces ruminal lipopolysaccharide endotoxin release and triggers an inflammatory response[J].Journal of Dairy Science,2005,88:1399-1403.
[18]Elam C J.Acidosis in feedlot cattle:Practical observations[J].Journal of Animal Science,1976,43:898-901.
[19]Yang W Z,Beauchemin K A.Effects of physically effective fiber on chewing activity and ruminal pH of dairy cows fed diets based on barley silage[J].Journal of Dairy Science,2006,89:217-228.
[20]Krause K M,Oetzel G R.Inducing subacute ruminal acidosis in lactating dairy cows[J].Journal of Dairy Science,2005,88:3633-3639.
[21]Keunen J E,Plaizier J C,Kyriazakis L,et al.Effects of a subacute ruminal acidosis model on the diet selection of dairy cows[J].Journal of Dairy Science,2002,85(12):3304-3313.
[22]胡紅蓮,盧德勛,劉大程,等.日糧不同NFC/NDF比對(duì)奶山羊瘤胃pH值、揮發(fā)性脂肪酸及乳酸含量的影響[J].畜牧與飼料科學(xué),2011,32(9-10):41-45.
[23]肖訓(xùn)軍.毛茛科植物提取物對(duì)飼喂高碳水化合物飼糧反芻動(dòng)物瘤胃發(fā)酵的影響[D].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué),2001.
[24]李勇,郝正理,李發(fā)弟,等.不同組合飼糧對(duì)綿羊瘤胃代謝參數(shù)的影響[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2011,20(3):136-142.
[25]倪學(xué)勤,曾東,彭媛,等.麥類(lèi)提取物對(duì)4株乳酸桿菌耐酸能力的影響[J].浙江大學(xué)學(xué)報(bào),2009,35(3):255-260.
[26]趙芳芳,鄭琛,李發(fā)弟,等.菊芋粕對(duì)泌乳奶牛的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值評(píng)定[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2011,20(6):264-269.
[27]吳力專(zhuān),陳海燕,張彬,等.外源性金屬硫蛋白對(duì)中國(guó)荷斯坦奶牛產(chǎn)能性能和內(nèi)分泌的影響[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2011,20(1):183-188.
[28]羅安智.奶牛蹄底潰瘍發(fā)病機(jī)理和治療試驗(yàn)研究[D].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué),2005.
[29]Gozho G N,Krause D O,Plaizier J C.Rumen lipopolysaccharide and inflammation during grain adaptation and subacute ruminal acidosis in steers[J].Journal of Dairy Science,2006,89:4404-4413.
[30]Gozho G N,Krause D O,Plaizier J C.Ruminal lipopolysaccharide concentration and inflammatory response during grain-induced subacute ruminal acidosis in dairy cows[J].Journal of Dairy Science,2007,90:856-866.
[31]Tizard I.Veterinary Immunology an Introduction(Seventh Revised Edition)[M].Philadelphia:Elsevier,2004.
[32]Sapolsky R M,Romero L M,Munck A U.How do glucocorticoids influence stress responses?Integrating,permissive,suppressive,stimulatory,and preparative actions[J].Endocrine Reviews,2000,21:55-89.
[33]韓正康.瘤胃代謝的神經(jīng)內(nèi)分泌調(diào)節(jié)[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2006,27(9):9-13.
[34]蔡天權(quán),韓正康,陳偉華,等.17β-雌二醇對(duì)瘤胃消化代謝調(diào)節(jié)的研究[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1990,13(增刊):131-136.
[35]劉春龍,李忠秋,張帆,等.大豆黃酮和染料木素對(duì)奶牛瘤胃液內(nèi)主要養(yǎng)分相關(guān)酶活性的影響[J].中國(guó)畜牧雜志,2009,45(5):39-41.
[36]Harvey S,Scanes C G,Brown K I.Adrenals[A].In:Sturkie P D.Avian Physiology(Fourth Revised Edition)[M].New York:Spinger-Verlag,1986:479-493.
[37]馬海港.長(zhǎng)期慢性心理應(yīng)激對(duì)大鼠糖代謝的影響及地黃寡糖的改善作用[D].蘭州:蘭州大學(xué),2008.