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    杜氏鹽藻高鹽誘導(dǎo)蛋白的分離和鑒定*

    2011-12-07 14:25:26柴玉榮劉國紅崔柳青劉紅濤薛樂勛
    關(guān)鍵詞:杜氏耐鹽斑點(diǎn)

    柴玉榮,劉國紅,崔柳青,劉紅濤,李 杰,薛樂勛#

    1)鄭州大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院組織學(xué)與胚胎學(xué)教研室鄭州 450001 2)鄭州大學(xué)生物工程系細(xì)胞生物學(xué)研究室鄭州 450001 #通訊作者,男,1944年 2月生,研究員,研究方向:腫瘤與生物工程,E-mail:xuelx@371.net

    杜氏鹽藻高鹽誘導(dǎo)蛋白的分離和鑒定*

    柴玉榮1),劉國紅1),崔柳青2),劉紅濤2),李 杰2),薛樂勛2)#

    1)鄭州大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院組織學(xué)與胚胎學(xué)教研室鄭州 450001 2)鄭州大學(xué)生物工程系細(xì)胞生物學(xué)研究室鄭州 450001 #通訊作者,男,1944年 2月生,研究員,研究方向:腫瘤與生物工程,E-mail:xuelx@371.net

    杜氏鹽藻;雙向電泳;質(zhì)譜;高鹽

    目的:對高鹽和低鹽培養(yǎng)條件下杜氏鹽藻蛋白質(zhì)組的雙向電泳 (2-DE)圖譜進(jìn)行比較分析,篩選高鹽誘導(dǎo)蛋白并鑒定。方法:提取高鹽 (3.5 mol/L NaCl)和低鹽 (1.5 mol/L NaCl)培養(yǎng)條件下杜氏鹽藻的總蛋白并進(jìn)行2-DE,考馬斯亮藍(lán)染色后用 I mage-Scanner掃描儀掃描,I mageMaster 5.0圖像分析軟件分析,并利用基質(zhì)輔助激光解析電離質(zhì)譜法 (MALD I-TOF)對在高鹽培養(yǎng)條件下增強(qiáng)表達(dá)達(dá)到 3倍的蛋白進(jìn)行鑒定。結(jié)果:2-DE圖譜上共分離出 509個杜氏鹽藻蛋白質(zhì)斑點(diǎn),主要分布在等電點(diǎn) 4~8和相對分子質(zhì)量 20 000~97 000的范圍內(nèi);高鹽培養(yǎng)條件下有 21個蛋白增強(qiáng)表達(dá)達(dá)到 3倍并且通過MALD I-TOF鑒定出了其中的 12個。結(jié)論:成功獲得了分辨率和重復(fù)性較好的杜氏鹽藻蛋白質(zhì)組 2-DE圖譜,鑒定得到了 12種高鹽誘導(dǎo)增強(qiáng)表達(dá)達(dá)到 3倍的蛋白。

    近年來,人們對生物耐鹽機(jī)制有了深入的認(rèn)識,但植物的整個耐鹽體系及耐鹽機(jī)制仍不清楚[1-2]。杜氏鹽藻 (Dunaliella salina,D.salina)是一種沒有細(xì)胞壁的單細(xì)胞真核綠藻,其突出優(yōu)點(diǎn)在于光合自養(yǎng)、培養(yǎng)條件簡單且抗逆性極佳,能在NaCl濃度很高甚至飽和的環(huán)境中生長繁殖[3]。目前,以鹽藻作為研究植物耐鹽機(jī)制的模式生物已取得了一些成果[4-5]。王曉慶等[6]用第二向垂直電泳 (SDS-PAGE)的方法發(fā)現(xiàn)鹽藻中相對分子質(zhì)量為 51 000和 23 000的蛋白可能與其耐鹽機(jī)制有關(guān)。作者采用蛋白質(zhì)雙向電泳(two-dimensional gel electrophoresis,2-DE)技術(shù)分離低鹽和高鹽培養(yǎng)條件下D.salina的總蛋白,獲得差異蛋白質(zhì)表達(dá)譜,并對明顯增強(qiáng)表達(dá)的蛋白斑點(diǎn)進(jìn)行了鑒定,以期為進(jìn)一步克隆鑒定特異的鹽藻耐鹽基因及最終闡明高等植物的耐鹽機(jī)制提供依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 試劑與儀器 24 cm線性 pH 3~10固相 pH梯度 (immobilized pH gradients,IPG)膠條,Ettan IPGphor等電聚焦儀、Ettan DALTsix電泳儀、I mage-Scanner圖像掃描儀、I mageMaster 5.0凝膠圖像分析軟件及標(biāo)準(zhǔn)蛋白標(biāo)志物為 GE公司產(chǎn)品;pH 3~10兩性電解質(zhì)、尿素及硫脲為Bio-Rad公司產(chǎn)品;3-[3-(膽酰胺基丙基)二甲氨基 ]丙磺酸鹽 (CHAPS)、蛋白酶抑制劑、Triton-X 100、二硫蘇糖醇 (DTT)、碘乙酰胺、丙烯酰胺、甲叉雙丙烯酰胺、十二烷基磺酸鈉(SDS)、四甲基乙二胺(TEMED)、小牛血清白蛋白均為 Sigma公司產(chǎn)品。

    1.2 D.salina細(xì)胞的培養(yǎng)與分組D.salina購自美國德州大學(xué),采用改良的 PKS液體培養(yǎng)基[7],培養(yǎng)條件為:26℃,光照強(qiáng)度 4 500 Lux,12 h光照,12 h暗培養(yǎng)。分別取在高鹽 (3.5 mol/L NaCl)和低鹽(1.5 mol/L NaCl)條件下培養(yǎng)至對數(shù)生長期的鹽藻細(xì)胞,經(jīng) 2000 r/min離心 5 min后富集。

    1.3 D.salina細(xì)胞總蛋白的提取 加入裂解緩沖液(6 mol/L尿素、2 mol/L硫脲、0.02 mol/L DTT、20 g/L CHAPS、體積分?jǐn)?shù) 0.2%兩性電解質(zhì)、體積分?jǐn)?shù)1%Triton-X 100及蛋白酶抑制劑)混勻后超聲破碎,三氯醋酸-丙酮沉淀法過夜。蛋白沉淀后用上樣緩沖液(6 mol/L尿素、2 mol/L硫脲、0.02 mol/L DTT、20 g/L CHAPS、體積分?jǐn)?shù) 0.2%兩性電解質(zhì)和體積分?jǐn)?shù) 0.05%IPGBuffer)復(fù)溶,采用BradFord法測定蛋白濃度。

    1.4 第一向等電聚焦電泳(IEF) 用 24 cm線性pH 3~10 IPG膠條,蛋白樣品上樣量均為 400μg,用 IPGphor等電聚焦系統(tǒng)進(jìn)行 IEF。程序如下:30 V,12 h;200 V,1 h;500 V,1 h;1 000 V,1 h;線性梯度從 1 000 V升至 8 000 V;8 000 V,10 h,限制電流為50μA/膠條。

    1.5 SDS-PAGE 將聚焦后的膠條在 SDS平衡液

    (1.5 mol/L Tris-Cl,pH 8.8;50 mmol/L體積分?jǐn)?shù)30%甘油;6 mol/L尿素;20 g/L SDS)中平衡 2次,搖床上振蕩 15 min/次,其中第 1次平衡液中加入 20 mmol/L DTT,第 2次平衡液中加入 100 mmol/L碘乙酰胺。取出膠條在 Ettan DALTsix上進(jìn)行垂直 SDSPAGE,用 125 g/L的聚丙烯酰胺凝膠分離,40 mA 40 min,60 mA 5 h,直至溴酚藍(lán)前沿到達(dá)玻璃板底部。

    1.6 圖像分析 凝膠經(jīng)考馬斯亮藍(lán)染色及脫色后,用 I mage-Scanner掃描儀掃描 2-DE圖像,I mageMaster 5.0軟件進(jìn)行圖像分析。高鹽培養(yǎng)和低鹽培養(yǎng)得到的 2塊蛋白膠,通過蛋白斑點(diǎn)檢測和匹配分析,選定在高鹽條件下鹽藻蛋白增強(qiáng)表達(dá)達(dá)到 3倍以上的斑點(diǎn)。

    1.7 差異表達(dá)蛋白的鑒定 將選定的斑點(diǎn)從 2-DE凝膠上切下,胰蛋白酶消化后進(jìn)行基質(zhì)輔助激光解析電離質(zhì)譜法(MALD I-TOF)分析,利用肽指紋圖譜比對程序?qū)⑺觅|(zhì)譜數(shù)據(jù)信息在NCB I植物數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行比對分析,篩選出比對結(jié)果達(dá)到預(yù)期肽指紋圖譜比對程度分值要求的蛋白質(zhì)。

    2 結(jié)果

    2.1 D.salina總蛋白 2-DE考馬斯亮藍(lán)染色圖譜高鹽和低鹽培養(yǎng)條件下鹽藻總蛋白的 2-DE圖譜(圖 1)斑點(diǎn)清晰,重復(fù)性好,主要分布在等電點(diǎn) (p I) 4~8和相對分子質(zhì)量 20 000~97 000范圍內(nèi)。2塊膠中匹配的蛋白質(zhì)點(diǎn)為 509個,從中篩選出高鹽下蛋白增強(qiáng)表達(dá)達(dá)到3倍的蛋白點(diǎn)共 21個。

    2.2 高鹽培養(yǎng)條件下增強(qiáng)表達(dá)蛋白的鑒定 所篩選的 21個蛋白經(jīng)質(zhì)譜分析和數(shù)據(jù)庫比對,其中 9個蛋白未找到有效匹配結(jié)果;其余12個蛋白均獲得有效匹配結(jié)果,得以鑒定,其中 2個暫未命名,余 10個鑒定結(jié)果見表 1。

    圖 1 高鹽(A)和低鹽(B)培養(yǎng)條件下的D.salina總蛋白的 2-DE圖譜

    表1 鑒定的2-DE圖譜中的高鹽誘導(dǎo)蛋白

    3 討論

    近年來,蛋白質(zhì)組學(xué)方法已經(jīng)廣泛應(yīng)用于從生物整體水平分析樣本間蛋白表達(dá)的差異,它具有高通量的特點(diǎn)[8]。2-DE技術(shù)是目前蛋白質(zhì)組學(xué)研究中分離蛋白質(zhì)的核心方法,利用 2-DE技術(shù)分離不同樣本的總蛋白,可獲得分辨率高且重復(fù)性好的 2-DE圖譜,這是篩選鑒定差異表達(dá)蛋白的基礎(chǔ)。該實(shí)驗(yàn)中所獲得的低鹽和高鹽培養(yǎng)條件下鹽藻總蛋白的2-DE圖譜分辨率高,蛋白斑點(diǎn)清晰均勻,且重復(fù)性好,為后續(xù)的分析和鑒定提供了可靠基礎(chǔ)。

    盡管數(shù)據(jù)庫中鹽藻的基因組序列和蛋白質(zhì)組序列非常有限,蛋白質(zhì)組學(xué)分析仍然是一種非常有效的檢測和鑒定鹽藻中差異蛋白質(zhì)表達(dá)的方法[3-4]。該研究中,盡管高鹽培養(yǎng)條件下D.salina總蛋白 2-DE圖譜中出現(xiàn)了一些低鹽培養(yǎng)條件下圖譜中未顯現(xiàn)的特異蛋白斑點(diǎn),但考慮到假陽性的可能性,所以只選擇了高鹽培養(yǎng)條件下增強(qiáng)表達(dá)并且蛋白表達(dá)量達(dá)到3倍或以上的蛋白質(zhì)點(diǎn)作為進(jìn)一步鑒定的對象。所選擇的 21個蛋白點(diǎn)經(jīng)質(zhì)譜分析后有 9個未能找到有效數(shù)據(jù)匹配,但比對的結(jié)果仍然提供了可靠的部分氨基酸序列,這些氨基酸序列為進(jìn)一步對這些蛋白基因進(jìn)行深入研究提供了依據(jù)。

    高鹽脅迫適應(yīng)過程是一個復(fù)雜的相互作用的網(wǎng)絡(luò)系統(tǒng),需要大量基因協(xié)同作用。該研究中所鑒定出的高鹽誘導(dǎo)蛋白均和高鹽脅迫條件下的生物個體的生理反應(yīng)相關(guān)[9-10],例如鐵-超氧化物歧化酶能夠清除活性氧,鈣依賴性蛋白激酶和 G蛋白參與了細(xì)胞膜上的信號傳導(dǎo),30S核糖體蛋白 S4與鹽脅迫下增強(qiáng)光合作用有關(guān),ATP合成酶、葡萄糖-6-磷酸異構(gòu)酶和乙醇脫氫酶均與能量代謝和葡萄糖代謝相關(guān),動力蛋白 1-α重鏈極有可能與鹽脅迫下鹽藻鞭毛的運(yùn)動相關(guān)。

    綜上所述,作者采用 2-DE成功分離和比較了D.salina低鹽和高鹽培養(yǎng)條件下的蛋白質(zhì),質(zhì)譜分析所鑒定的鹽誘導(dǎo)相關(guān)蛋白為進(jìn)一步探索其耐鹽機(jī)制以及利用這些鹽誘導(dǎo)相關(guān)蛋白來改善其他物種的耐鹽性提供了依據(jù)。

    [1]Parida AK,DasAB.Salt tolerance and salinity effects on plants:a review[J].Ecotoxicol Environ Saf,2005,60 (3):324

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    CHA I Yurong1),L IU Guohong1),CU I L iuqing2),L IU Hongtao2),LI Jie2),XUE Lexun2)1)Departm ent of Histology and Em bryology,College of Basic M edical Sciences,Zhengzhou University, Zhengzhou 4500012)Laboratory for Cell B iology,Departm ent of B ioengineering,Zhengzhou University, Zhengzhou 450001

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    Q786

    *國家自然科學(xué)基金資助項目 30540067

    (2010-01-07收稿 責(zé)任編輯徐春燕)

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