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    多穗柯三葉苷的抑制糖尿病關(guān)鍵酶活性和抗氧化性

    2011-10-18 04:17:04寧正祥董華強(qiáng)
    食品科學(xué) 2011年5期
    關(guān)鍵詞:波糖阿卡蘆丁

    張 毅,寧正祥,*,董華強(qiáng)

    (1. 華南理工大學(xué)輕工與食品學(xué)院,廣東 廣州 510641;2. 佛山科學(xué)技術(shù)學(xué)院食品科學(xué)系,廣東 佛山 528231)

    多穗柯三葉苷的抑制糖尿病關(guān)鍵酶活性和抗氧化性

    張 毅1,寧正祥1,*,董華強(qiáng)2

    (1. 華南理工大學(xué)輕工與食品學(xué)院,廣東 廣州 510641;2. 佛山科學(xué)技術(shù)學(xué)院食品科學(xué)系,廣東 佛山 528231)

    從多穗柯中提取分離得到三葉苷,以抗糖尿病藥物阿卡波糖為陽(yáng)性對(duì)照,檢測(cè)多穗柯三葉苷對(duì)小腸α-葡萄糖苷酶和胰臟α-淀粉酶活性的抑制作用和對(duì)α-葡萄糖苷酶活性抑制類(lèi)型,并以蘆丁為陽(yáng)性對(duì)照檢測(cè)其清除DPPH自由基能力。結(jié)果顯示:多穗柯三葉苷對(duì)α-葡萄糖苷酶有明顯抑制作用,為非競(jìng)爭(zhēng)性抑制,抑制效果與阿卡波糖無(wú)明顯差別,對(duì)α-淀粉酶活性的抑制率低于阿卡波糖;清除DPPH自由基能力強(qiáng)于蘆丁。表明多穗柯三葉苷是一種有應(yīng)用潛力的抗糖尿病活性物質(zhì)。

    三葉苷;多穗柯;α-葡萄糖苷酶;α-淀粉酶;糖尿病

    Ⅱ型糖尿病又稱(chēng)非胰島素依賴(lài)型糖尿病(NIDDM),表現(xiàn)為患者血糖水平升高[1]。近年來(lái)的流行病學(xué)研究表明,餐后血糖水平是糖耐量受損(impaired glucose tolerance,IGT)患者發(fā)展為Ⅱ型糖尿病的重要因素,嚴(yán)格控制餐后血糖可減少大血管及微血管并發(fā)癥的發(fā)生[2-5]。餐后血糖水平的上升與胰臟α-淀粉酶促進(jìn)淀粉水解和小腸黏膜上的α-葡萄糖苷酶水解葡萄糖苷鍵生成葡萄糖分子密切相關(guān)[6]。因此對(duì)α-葡萄糖苷酶和α-淀粉酶的抑制是防治Ⅱ型糖尿病的一個(gè)有效途徑。

    阿卡波糖(acarbose)是臨床常用的α-葡萄糖苷酶抑制劑,它也是α-淀粉酶的強(qiáng)抑制劑[7]。阿卡波糖雖然有效,但卻存在引起腸道不適等明顯的副作用[8]。研究指出這是由于對(duì)胰臟α-淀粉酶的過(guò)度抑制引起的[7]。因此,有必要尋找有效而副作用小的α-葡萄糖苷酶抑制劑[9-10]。

    多穗柯(Lithocarpus polystachyus Rehd) 主要分布于我國(guó)長(zhǎng)江以南各省區(qū)[11-12],是我國(guó)傳統(tǒng)民間草藥和保健飲料植物[13]。Dong等[14]用多穗柯黃酮粗提物灌胃處理四氧嘧啶糖尿病模型小鼠,證明有明顯的抗糖尿病活性。本實(shí)驗(yàn)將對(duì)多穗柯三葉苷抑制α-葡萄糖苷酶、α-淀粉酶活性及抗氧化活性進(jìn)行研究和評(píng)價(jià)。

    1 材料與方法

    1.1 材料、試劑與儀器

    多穗柯(Lithocarpus polystachyus Rehd)嫩葉采自貴州東部山區(qū)。

    根皮苷(99.7%)、DPPH(分析純)、α-葡萄糖苷酶(EC 3.2.1.20)、對(duì)硝基苯-β-D-半乳糖吡喃糖苷(PNPG)、豬胰腺α-淀粉酶(EC 3.2.1.1,VI型) 美國(guó)Sigma公司;抗壞血酸、蘆丁(99.6%)、3,5-二硝基水楊酸、酒石酸鈉鉀(四水) 上海晶純?cè)噭┯邢薰?;阿卡波?德國(guó)拜耳公司。

    UV-260紫外-可見(jiàn)分光光度儀 日本島津公司;2690高效液相色譜儀 美國(guó)Waters公司;M2emicroplate reader儀 美國(guó)Molecular device公司;ZQ2000質(zhì)譜儀 美國(guó) Waters公司;DRX400核磁共振波譜儀 德國(guó)Bruker公司。

    1.2 多穗柯三葉苷分離純化

    提取分離步驟見(jiàn)參考文獻(xiàn)[15-16]。取多穗柯嫩葉,采用微波輔助法提取得粗提物,經(jīng)大孔樹(shù)脂和中性氧化鋁柱層析后獲得結(jié)晶。

    圖1 多穗柯三葉苷提取物高效液相色譜圖Fig.1 HPLC chromatogram of trilobatin separated from Lithocarpus polystachyus Rehd

    1.3 分析檢測(cè)方法

    1.3.1 色譜條件

    色譜柱:Diamonsil C18(150mm×4.6mm,5μm);流動(dòng)相:甲醇、水體積比6:4;流速:1.0mL/min;進(jìn)樣量:10μL;檢測(cè)波長(zhǎng):283nm。

    1.3.2 電噴霧-質(zhì)譜(ESI-MS )檢測(cè)

    噴霧毛細(xì)管電壓2.89kV,離子源溫度100℃,脫溶劑氣溫度250℃,負(fù)離子掃描,掃描范圍50~800m/z。

    1.3.3 核磁共振(NMR)波譜分析

    待測(cè)樣品用DMSO-d6溶解后,在室溫,400MHz條件下進(jìn)行1H和13C核磁共振波譜分析。

    1.3.4 抑制α-葡萄糖苷酶活性測(cè)定

    參照參考文獻(xiàn)[17]的測(cè)定方法,略作修改。取60μL待測(cè)液(0.8mg/mL樣品液、0.8mg/mL 阿卡波糖溶液,同量的緩沖液作為空白對(duì)照)于96孔酶標(biāo)板中,加入50μL α-葡萄糖苷酶溶液 (0.2U/mL),振勻后于37℃水浴保溫10min,加入50μL 5.0mmol/L PNPG溶液振勻,在37℃水浴中反應(yīng)20min,加入160μL Na2CO3溶液 (0.2mol/L)終止酶促反應(yīng),置于405nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度(A)。由于多穗柯三葉苷本身有顏色,因此每個(gè)樣品需要測(cè)定背景吸收,并最終測(cè)定結(jié)果進(jìn)行校正。每個(gè)樣品重復(fù)3次取平均值。抑制率按式(1)計(jì)算。

    式中:Aj為樣品組吸光度;A0為空白對(duì)照組吸光度。

    將最大抑制率一半所需樣品的濃度定義為IC50,以評(píng)價(jià)對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制水平。采用Lineweaver-Burk作圖法,對(duì)多穗柯三葉苷抑制α-葡萄糖苷酶的機(jī)理進(jìn)行分析。

    1.3.5 抑制α-淀粉酶活性測(cè)定

    參照參考文獻(xiàn)[17]的測(cè)定方法,略作修改。取40μL待測(cè)液(0.8mg/mL樣品溶液或0.8mg/mL阿卡波糖溶液,以同量緩沖液作為空白對(duì)照)于25mL比色管中,加入200μL胰α-淀粉酶溶液 (1.0U/mL),在37℃水浴中使酶活化10min,添加400μL底物可溶性淀粉(1.0g/100mL)在25℃反應(yīng)10min,加入1.0μL DNS(A液(12.0g四水合酒石酸鉀鈉溶于 8.0mL 2mol/L NaOH)與B液(0.88g的3,5-二硝基水楊酸溶于46mL去離子水)體積比為1: 1)終止反應(yīng),進(jìn)行沸水浴5min,冷卻至室溫后加入10mL蒸餾水以稀釋?zhuān)?40nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度。抑制率按式(2)計(jì)算。

    式中:Aj為樣品組吸光度;A0為空白對(duì)照組吸光度。

    將最大抑制率一半所需樣品的濃度定義為IC50以評(píng)價(jià)對(duì)胰α-淀粉酶的抑制水平。

    1.3.6 清除DPPH自由基能力測(cè)定

    參照參考文獻(xiàn)[17]的方法,略作修改。以甲醇為溶劑,配制不同質(zhì)量濃度的樣品溶液,吸取50μL待測(cè)液于96孔酶標(biāo)板中,加入150μL DPPH溶液 (0.2mmol/L),搖勻,25℃避光靜置30min,置于517nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度。按式(3)計(jì)算對(duì)DPPH自由基的清除能力。

    式中:Q為DPPH自由基清除率;A0為不加試樣DPPH溶液的吸光度;At為加試樣反應(yīng)后 DPPH溶液吸光度。

    以清除DPPH自由基達(dá)到穩(wěn)定態(tài)50%清除率所需加入抗氧化樣品的質(zhì)量濃度為IC50,用以表示其抗氧化能力。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 多穗柯黃酮結(jié)晶的結(jié)構(gòu)鑒定與表征

    2.1.1 HPLC檢測(cè)結(jié)果

    分離得到的多穗柯黃酮結(jié)晶的HPLC檢測(cè)結(jié)果(圖1)表明,保留時(shí)間與標(biāo)準(zhǔn)品根皮苷(phloridzin)一致,純度達(dá)到99.87%,推斷其與根皮苷分子有非常相似的化學(xué)結(jié)構(gòu)。

    2.1.2 ESI-MS檢測(cè)結(jié)果

    圖2 多穗柯三葉苷ESI-MS圖-Fig.2 ESI-MS spectrum of ion [M-H]-of trilobatin separated from Lithocarpus polystachyus Rehd

    如圖2所示,峰435m/z是根皮苷的負(fù)離子準(zhǔn)分子峰[Ph-H]-(Ph=Phlridzin,根皮苷);峰273m/z是根皮苷分子失去一個(gè)葡萄糖殘基的負(fù)離子峰[Ph-glucoside]-;峰471m/z 是含2個(gè)結(jié)合水的根皮苷準(zhǔn)分子峰[Ph·2H2O-H]-。這個(gè)三葉苷的ESI-MS結(jié)果與標(biāo)準(zhǔn)品根皮苷結(jié)果完全一致(圖3A)。

    2.1.3 NMR檢測(cè)結(jié)果

    1.1H-NMR:

    δ(H-2, H-6)=7.01, δ(H-3, H-5)=6.65;δ(H-3', H-5')=6.05;δ(H-β) = 2.77。

    2.13C-NMR:

    δ(C-1) = 131.4, δ(C-2, C-6) = 129.1, δ(C-3, C-5) = 115.0,δ(C-4) = 155.4;

    δ(C-1') = 105.3, δ(C-2', C-6') = 163.9, δ(C-3', C-5') = 94.9,δ(C-4') = 163.3;

    δ(C = O) = 205.0, δ(C-α) = 45.6, δ(C-β) = 29.3;

    δ(G-1) = 99.5, δ(G-2) = 73.0, δ(G-3) = 77.1, δ(G-4) =69.2, δ(G-5) = 76.4, δ(G-6) = 60.4。

    上述測(cè)定結(jié)果與文獻(xiàn)報(bào)道根皮素- 4′-β- D -葡萄苷測(cè)定結(jié)果一致,因此確定該化合物為根皮素- 4′-β- D -葡萄糖苷(trilobatin,trb)即三葉苷,結(jié)構(gòu)式見(jiàn)圖3(B)。

    圖3 根皮苷(A)和三葉苷(B)的化學(xué)結(jié)構(gòu)式Fig.3 Chemical structures of phloridzin (A) and trilobatin (phloretin-4-β-D-glucoside) from Lithocarpus polystachyus Rehd (B)

    2.2 三葉苷對(duì)α-葡萄糖苷酶和α-淀粉酶活性的抑制

    2.2.1 與阿卡波糖和蘆丁的比較

    圖4 阿卡波糖、三葉苷、蘆丁對(duì)α-葡萄糖苷酶和α-淀粉酶活性抑制作用對(duì)比Fig.4 Inhibitory effects of trilobatin, acarbose, and rutin at a concentration level of 0.8 mg/mL onα-glucosidase (A) andα-amylase(B)

    從圖4A可看出,多穗柯三葉苷對(duì)α-葡萄糖苷酶活性有較強(qiáng)的抑制作用,抑制率明顯高于蘆丁,與阿卡波糖沒(méi)有明顯區(qū)別;對(duì)α-淀粉酶活性雖也有抑制作用,但抑制率卻明顯低于阿卡波糖(圖4B)。這說(shuō)明多穗柯三葉苷是一種較強(qiáng)的α-葡萄糖苷酶抑制劑和較弱的α-淀粉酶抑制劑。

    2.2.2 不同質(zhì)量濃度三葉苷、阿卡波糖和蘆丁對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制活性的影響

    由圖5可見(jiàn),隨著三葉苷質(zhì)量濃度的增加,對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制活性也隨之上升,至0.8mg/mL時(shí)達(dá)到最高,說(shuō)明三葉苷對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制活性是劑量依賴(lài)型的。比較不同質(zhì)量濃度三葉苷、阿卡波糖和蘆丁對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制活性可看出,隨質(zhì)量濃度增加,三葉苷對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制活性的上升速度快于蘆丁,但稍慢于阿卡波糖。三葉苷抑制α-葡萄糖苷酶活性的IC50值為0.37mg/mL,也是介于阿卡波糖(0.28mg/mL)和蘆丁(0.45mg/mL)之間。

    圖5 不同質(zhì)量濃度三葉苷、阿卡波糖和蘆丁對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用Fig.5 Concentration dependent inhibitory effects of trilobatin,acarbose, and rutin on α-glucosidase

    2.2.3 三葉苷對(duì)α-葡萄糖苷酶活性抑制機(jī)理

    圖6 三葉苷抑制α-葡萄糖苷酶Lineweaver-Burk雙倒數(shù)曲線(xiàn)圖Fig.6 Lineweaver-Burk plot analysis of the inhibition kinetics of trilobatin on α-glucosidase

    由圖6可見(jiàn),不同質(zhì)量濃度的兩條三葉苷抑制曲線(xiàn)倒推相交于X軸負(fù)值區(qū)域,與典型的非競(jìng)爭(zhēng)性抑制圖形完全一致,說(shuō)明三葉苷對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制機(jī)理屬于非競(jìng)爭(zhēng)性抑制。

    2.3 三葉苷對(duì)DPPH自由基清除能力

    圖7 三葉苷、蘆丁、VC對(duì)DPPH自由基的清除率Fig.7 DPPH radical scavenging activity of VC,trilobation and rutin

    由圖7可見(jiàn),隨著質(zhì)量濃度增加,三葉苷對(duì)DPPH自由基的清除活性也隨之上升,質(zhì)量濃度增加到1.2mg/mL時(shí),清除DPPH自由基活性達(dá)到最高,與VC相當(dāng),高于蘆丁,之后不再上升。這說(shuō)明多穗柯黃酮三葉苷有較強(qiáng)的抗氧化活性,而且在一定范圍內(nèi)呈濃度依賴(lài)型。三葉苷、VC和蘆丁清除DPPH自由基活性的IC50值分別為0.57、0.24、0.72mg/mL,三葉苷的IC50值雖然低于VC,但還是比蘆丁高。因此多穗柯黃酮三葉苷是一種較好的天然抗氧化劑。

    3 結(jié) 論

    多穗柯黃酮三葉苷對(duì)α-葡萄糖苷酶和α-淀粉酶活性都有明顯的抑制作用;與阿卡波糖一樣有很強(qiáng)的抑制α-葡萄糖苷酶活性的作用,而對(duì)α-淀粉酶活性的抑制作用卻明顯弱于阿卡波糖;三葉苷還具有較強(qiáng)的抗氧化能力。從上述研究結(jié)果看,多穗柯黃酮三葉苷對(duì)α-葡萄糖苷酶和α-淀粉酶活性都有明顯的抑制作用,與糖尿病治療藥物阿卡波糖比較,與阿卡波糖一樣有很強(qiáng)的抑制α-葡萄糖苷酶活性的作用,而對(duì)α-淀粉酶活性的抑制作用卻明顯弱于阿卡波糖,加上三葉苷還具有較強(qiáng)的抗氧化能力,多穗柯黃酮三葉苷是一個(gè)值得進(jìn)一步研究開(kāi)發(fā)的抗糖尿病天然活性物質(zhì)。

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    Inhibitory Potential of Trilobatin from Lithocarpus polystachyus Rehd against Key Enzymes Linked to Type ⅡDiabetes and Its Antioxidant Activity

    ZHANG Yi1,NING Zheng-xiang1,*,DONG Huang-qiang2
    (1. College of Light Industry and Food Sciences, South China University of Technology, Guangzhou 510641, China;2. Department of Food Science, Foshan University, Foshan 528231, China)

    The inhibitory effects of trilobatin separated from Lithocarpus polystachyus Rehd on the activities of α-glucosidase and α-amylase were determined and compared with those of the anti-diabetic drug acarbose as a positive control and the type of the enzymatic inhibition on α-amylase was investigated. Also, rutin was used as a positive control to measure the ability of the trilobatin from Lithocarpus polystachyus Rehd to scavenge DPPH free radicals. The results showed that α-glucosidase activity was inhibited remarkably by the trilobatin, and the inhibition was noncompetitive and did not exhibit a significant difference when compared to acarbose. Its inhibition rate against α-amylase, however, was lower than that of acarbose despite of having stronger DPPH free radical scavenging effect than rutin. From these experimental results, a conclusion could be drawn that the trilobatin from Lithocarpus polystachyus Rehd is a potential anti-diabetic compound.

    trilobatin;Lithocarpus polystachyus Rehd;α-glucosidase;α-amylase;diabetes

    Q946.83

    A

    1002-6630(2011)05-0032-04

    2010-07-05

    廣東省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(8152800001000023)

    張毅(1985—),女,碩士研究生,研究方向?yàn)槭称坊瘜W(xué)。E-mail:zhangyi85518@yahoo.com.cn

    *通信作者:寧正祥(1957—),男,教授,博士,研究方向?yàn)槭称飞锘瘜W(xué)。E-mail:fezhning@scut.edu.cn

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