金黃色葡萄球菌isdb基因的克隆表達(dá)及其小鼠免疫試驗(yàn)

馬金柱，崔玉東,，張晶，朱戰(zhàn)波，樸范澤

1 黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生命科技學(xué)院，大慶 163319

2 黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院，大慶 163319

金黃色葡萄球菌isdb基因的克隆表達(dá)及其小鼠免疫試驗(yàn)

馬金柱1，崔玉東1,2，張晶1，朱戰(zhàn)波2，樸范澤2

1 黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生命科技學(xué)院，大慶 163319

2 黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院，大慶 163319

為了研究金黃色葡萄球菌表面Isdb蛋白的免疫原性，應(yīng)用PCR方法擴(kuò)增出金黃色葡萄球菌Wood46株的isdb基因并進(jìn)行序列分析，再將isdb 基因插入到pET32-a(+) 載體上，構(gòu)建了pET32-a(+)-isdb重組質(zhì)粒，將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到宿主菌大腸桿菌BL21中并誘導(dǎo)表達(dá)和純化Isdb蛋白。用純化的Isdb蛋白免疫小鼠，檢測(cè)小鼠血清中抗體水平；在二次免疫之后的第2周，用金黃色葡萄球菌Wood46、HLJ23-1株對(duì)小鼠攻毒，每組8只小鼠。研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)：isdb基因在不同菌株中高度保守；Isdb蛋白在宿主菌中獲得成功表達(dá)；在免疫后血清抗體效價(jià)與對(duì)照組相比，均顯著升高 (P＜0.05)；攻毒結(jié)果表明Isdb蛋白對(duì)Wood46和HLJ23-1兩種菌株攻毒保護(hù)率分別為62.5%和75%。以上結(jié)果表明Isdb蛋白具有較好的免疫原性和免疫保護(hù)作用。

金黃色葡萄球菌，isdb基因克隆，Isdb蛋白表達(dá)，免疫原性

Abstract:In order to characterize the immunogenicity and immunoprotection of the Staphylococcus aureus (S. aureus) surface Isdb, we amplified isdb gene from S. aureus Wood46 strain. The isdb gene was subsequently inserted into pET32a(+) vector and the recombinant plasmid was transformed into E. coli strain BL21. The recombinant Isdb was expressed and purified. Then, we immunized mice with the purified recombinant protein. The antibody level was measured by enzyme-linked immunosorbent assay. Finally, immunized mice were challenged with S. aureus strains Wood46 and HLJ23-1. These results showed that isdb gene sequences were highly conserved, and the recombinant Isdb was successfully expressed. The antibody titer in the immunized groups was increased significantly (P<0.05) compared with the control, the protective rate of Isdb protein inducted by challenge with the two S. aureus stains Wood46 and HLJ23-1 was 62.5% and 75%, respectively. These results showed that the Isdb protein had high immunogenicity and immunoprotective capacity.

Keywords:Staphylococcus aureus, isdb gene cloning, Isdb expression, immunogenicity

金黃色葡萄球菌 Staphylococcus aureus是一種重要的致病菌，可以引起人和動(dòng)物的多種疾病，尤其它是引起奶牛乳房炎的主要病原菌，給奶牛業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失[1-3]。目前，抗生素和金黃色葡萄球菌全菌苗、類毒素等傳統(tǒng)疫苗是臨床上預(yù)防和治療奶牛金黃色葡萄球菌性乳房炎的主要方法，但是抗生素的耐藥性、藥物殘留和傳統(tǒng)疫苗免疫原性低等問(wèn)題，一直以來(lái)都是亟待解決的重要難題[4-6]。近年來(lái)，研究發(fā)現(xiàn)菌體表面蛋白疫苗要比傳統(tǒng)疫苗具有許多優(yōu)點(diǎn)。它可引起機(jī)體產(chǎn)生較強(qiáng)的免疫應(yīng)答，并且免疫持續(xù)時(shí)間長(zhǎng)，同時(shí)它還可解決抗原血清型限制性等問(wèn)題，這些優(yōu)點(diǎn)使菌體表面蛋白可以作為新型疫苗。為了研究金黃色葡萄球菌菌體表面 Isdb蛋白的免疫原性，本研究通過(guò)基因工程方法表達(dá)Isdb蛋白，并將純化的表達(dá)蛋白免疫小鼠，研究該蛋白的免疫原性，為進(jìn)一步研制和開發(fā)金黃色葡萄球菌新型疫苗提供了有利參考。

1 材料與方法

1.1 材料

菌株、質(zhì)粒：金黃色葡萄球菌標(biāo)準(zhǔn)菌株Wood46(S. aureus Wood46) 和地方分離菌株HLJ23-1(S. aureus HLJ23-1)、E. coli BL21宿主菌、原核表達(dá)載體pET32a(+) 均由黑龍江省八一農(nóng)墾大學(xué)生物工程實(shí)驗(yàn)室提供。

主要試劑及酶：質(zhì)粒提取試劑盒、限制性內(nèi)切酶 Nco I/Xho I、Taq DNA聚合酶、DNA連接酶、蛋白marker、MagneHis?蛋白純化系統(tǒng)、HRP標(biāo)記的羊抗鼠抗體均購(gòu)自大連寶生物工程有限公司；細(xì)胞因子 ELISA定量檢測(cè)試劑盒購(gòu)自 BPB Biomedical公司。

實(shí)驗(yàn)動(dòng)物：昆明潔凈級(jí)小鼠，體重約10~15 g，由長(zhǎng)春市養(yǎng)殖場(chǎng)提供。

1.2 方法

1.2.1 表達(dá)載體的構(gòu)建

引物設(shè)計(jì)：根據(jù)GenBank中的isdb基因序列，利用DNAStar軟件設(shè)計(jì)1對(duì)擴(kuò)增isdb編碼全基因的特異性引物，并且引物兩端分別加上酶切位點(diǎn)Nco I和Xho I的堿基序列 (下劃線所示)，經(jīng)分析后引物具有很好的特異性。引物序列見(jiàn)表 1，由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。

表1 融合基因引物Table 1 Primers for fusion gene

isdb編碼基因的獲得：采用蛋白酶方法提取金黃色葡萄球菌Wood46株的基因組DNA，并將其作為模板進(jìn)行 PCR擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系組成如下：去離子水 14.3 μL，上游引物 1 μL (25 μmol/L)和下游引物 1 μL (25 μmol/L)，DNA 模板 0.5 μL，2.5 mmol/L dNTPs 1 μL，10×PCR 緩沖液 2 μL，10 U/μL Taq DNA 聚合酶 0.2 μL，總反應(yīng)體系為20 μL。PCR反應(yīng)條件為：94 ℃預(yù)熱3 min；94 ℃40 s，56 ℃ 50 s，72 ℃ 1 min ，30個(gè)循環(huán)；最后72 ℃延伸10 min。PCR反應(yīng)結(jié)束后，取3 μL產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳。

酶切與連接及轉(zhuǎn)化：將純化的 PCR產(chǎn)物和pET32a(+) 載體酶切，酶切體系包括：10×NEB緩沖溶液 5 μL，PCR 產(chǎn)物 8 μL，100×BSA 0.5 μL，Nco I 1 μL，Xho I 1 μL，ddH2O 34.5 μL，混勻后，37 ℃水浴中酶切4 h。再將純化的酶切產(chǎn)物進(jìn)行連接，連接體系為：Solution I 5 μL (含 T4 DNA 連接酶)，PCR產(chǎn)物 4 μL，載體 11 μL，最后 16 ℃連接 6 h。將上述連接產(chǎn)物加入感受態(tài)細(xì)胞中按熱休克方法進(jìn)行轉(zhuǎn)化。

表達(dá)載體的鑒定：上述轉(zhuǎn)化的菌培養(yǎng)12 h后，用質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒。采用酶切和測(cè)序分析的方法對(duì)提取的重組質(zhì)粒進(jìn)行鑒定，將獲得正確的重組質(zhì)粒命名為 pET32a(+)-isdb，從而獲得 isdb原核表達(dá)載體。

1.2.2 重組Isdb蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)及純化

將構(gòu)建的重組菌50 μL接種于含100 μg/mL氨芐青霉素的LB培養(yǎng)基中，37 ℃培養(yǎng)至OD600為0.4時(shí)，加入IPTG誘導(dǎo)表達(dá)4 h后，取1 mL菌液，10 000 r/min離心，棄上清，在沉淀中加入90 μL 1×上樣緩沖液和 10 μL DTT (1 mmol/L) 后，煮沸5 min，取15 μL用于SDS-PAGE，同時(shí)，以未誘導(dǎo)重組菌和誘導(dǎo)的 pET32a(+) 空載體的重組菌為對(duì)照。另外，采用鎳顆粒蛋白純化試劑盒進(jìn)行蛋白純化，然后取10 μL蛋白濃縮液用于SDS-PAGE電泳檢測(cè)蛋白純化效果。

1.2.3 動(dòng)物免疫

取健康小鼠62只，隨機(jī)分成2組，每組31只，分別為對(duì)照組和Isdb蛋白免疫組。首免時(shí)對(duì)照組和蛋白免疫組每只小鼠分別用200 μL弗氏完全佐劑和與PBS乳化物 (體積比1∶1) 和200 μL Isdb蛋白免疫原 (含有100 μg Isdb蛋白PBS溶液與弗氏完全佐劑等體積乳化制成) 免疫。首疫后第21天進(jìn)行2次免疫，對(duì)照組每只小鼠采用200 μL弗氏不完全佐劑與PBS乳化物 (體積比1∶1) 免疫，蛋白免疫組用200 μL Isdb 蛋白免疫原 (含有 100 μg Isdb 蛋白 PBS溶液與弗氏不完全佐劑等體積乳化制成) 免疫，免疫途徑均為背部多點(diǎn)注射。在一免后7 d、14 d、21 d及二免后7 d、14 d進(jìn)行采血，每次每組隨機(jī)取3只小鼠采血，分離血清，用于抗體水平檢測(cè)，每組剩16只小鼠用于攻毒試驗(yàn)。

1.2.4 重組Isdb蛋白的免疫原性檢測(cè)

重組Isdb蛋白的Western blotting檢測(cè)：將未經(jīng)誘導(dǎo)和IPTG誘導(dǎo)4 h的樣品進(jìn)行SDS-PAGE。按半干轉(zhuǎn)印法將膠中的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移至 Nitrocellulose膜上，用金黃色葡萄球菌全菌體疫苗免疫二免 2周后的稀釋1 000倍小鼠血清為一抗；HRP標(biāo)記的羊抗小鼠為二抗，用立春紅顯色法顯色，進(jìn)行重組蛋白的Western blotting檢測(cè)。

水平的測(cè)定：將作適當(dāng)稀釋的Isdb純化蛋白以100 μL/孔(60 ng) 包被 ELISA 板，4 ℃過(guò)夜；PBST洗滌后加封閉液37 ℃封閉1 h；PBST洗滌，加入用5%脫脂奶粉稀釋的待檢免疫血清，37 ℃作用1 h；PBST洗滌后，加入HRP標(biāo)記的羊抗鼠IgG(1 ∶ 1 0 000)，37 ℃作用1 h；PBST洗滌后，每孔各加入TMB 100 μL溶液，避光37 ℃作用10 min；加50 μL終止液；最后測(cè)樣品OD值并分析。

小鼠攻毒試驗(yàn)：取 50 μL ?20 ℃凍存的 S. aureus Wood46 (Ⅴ型莢膜) 和S. aureus HLJ23-1 (Ⅷ型莢膜) 菌液接種到5 mL TSB培養(yǎng)基中，37 ℃培養(yǎng)復(fù)壯后，按平板計(jì)數(shù)法測(cè)定菌數(shù)，取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)菌用PBS 洗滌3次后，根據(jù)測(cè)定以上兩種菌對(duì)小鼠的最小致死量分別為3×109CFU和1×109CFU，最終將兩種菌終濃度分別定為 1.5×1010CFU/mL和5×109CFU/mL。用兩種菌分別對(duì)二免2周的Isdb蛋白免疫組和對(duì)照組各 8只小鼠攻毒，每只腹腔注射菌液0.2 mL，攻毒后，每天觀察小鼠死亡情況并記錄結(jié)果。

2 結(jié)果

2.1 isdb基因PCR擴(kuò)增結(jié)果

以提取的金黃色葡萄球菌Wood46菌株DNA為模板，經(jīng)PCR擴(kuò)增得到一條特異DNA條帶，與預(yù)期片段大小 (1 893 bp) 相符，電泳結(jié)果如圖1所示。

2.2 重組質(zhì)粒的鑒定結(jié)果

圖1 isdb基因的PCR產(chǎn)物Fig. 1 PCR products of isdb. 1: PCR products; 2: DNA marker.

圖2 pET32a(+)-isdb的酶切鑒定Fig. 2 Identification of pET32a(+)-isdb by enzyme digestion.1: DNA marker; 2: pET32a(+)-isdb Digested with Nco I and Xho I.

pET32a(+)-isdb質(zhì)粒采用Nco I與Xho I雙酶切后，經(jīng)過(guò)瓊脂糖電泳，可見(jiàn)插入的片段與目的片段大小相符，酶切后得到約為1 900 bp和5 900 bp的兩條帶，如圖2所示。目的基因測(cè)序結(jié)果與GenBank上 4種標(biāo)準(zhǔn)菌株 (Staphylococcus aureus MW2，Staphylococcus aureus COL，Staphylococcus aureus N315，Staphylococcus aureus NEMAN) 的核酸和氨基酸之間比較同源性均為98.5%以上 (圖3、4)，說(shuō)明不同菌株間isdb具有較高的同源性。以上結(jié)果表明目的基因插入正確。

2.3 重組菌的表達(dá)結(jié)果

重組菌誘導(dǎo)表達(dá)后進(jìn)行SDS-PAGE電泳，結(jié)果在大于87 kDa位置出現(xiàn)1條明顯的條帶，與預(yù)測(cè)的重組蛋白Isdb (87.3 kDa) 大小相符 (圖5)。

2.4 Isdb蛋白的Western blotting檢測(cè)結(jié)果

應(yīng)用S. aureus全菌免疫小鼠的血清為一抗體，測(cè)定重組蛋白的免疫原性，結(jié)果顯示在87 kDa位置出現(xiàn)特異性條帶，說(shuō)明重組蛋白Isdb能與免疫血清發(fā)生反應(yīng)并具有好的免疫原性 (圖6)。

2.5 重組蛋白的免疫效果檢測(cè)

2.5.1 IgG水平的測(cè)定結(jié)果

將每份一免小鼠血清1:1 000倍稀釋后，再做2倍倍比稀釋 (每組3只小鼠血清)，即做1:2 000、1:4 000、1:8 000、1:16 000、1:32 000、1:64 000倍稀釋。二免小鼠以1:4 000、1:8 000、1:16 000、1:32 000、1:64 000、1:128 000、1:256 000、1:512 000倍稀釋，以羊抗鼠IgG為二抗做間接ELISA檢測(cè)血清中IgG。結(jié)果小鼠免疫后Isdb抗體效價(jià)有明顯提高，并隨著免疫時(shí)間推移，抗體效價(jià)逐漸上升，并在二免2周時(shí)抗體效價(jià)達(dá)到高峰 (表2)。

圖3 核酸序列的比較Fig. 3 Comparison of nucleic acid sequence.

圖4 氨基酸序列的比較Fig. 4 Comparison of amino acid sequence.

圖5 重組菌誘導(dǎo)表達(dá)結(jié)果Fig. 5 Expression of induced recombinant E. coli. M: protein marker; 1: uninduced recombinant E. coli (pET32a(+)-isdb); 2:induced recombinant E. coli (pET32a(+)-isdb); 3: induced recombinant E. coli (pET32a(+); 4: uninduced recombinant E. coli (pET32a(+)).

圖6 Isdb蛋白的Western blotting結(jié)果Fig. 6 Western blotting analysis of Isdb protein. 1: induced recombinant E. coli (pET32a(+)-isdb); 2: purified Isdb protein;3: protein marker.

2.5.2 攻毒實(shí)驗(yàn)結(jié)果

各免疫組在二免2周后，每組隨機(jī)選出8只小鼠分別用S. aureus Wood46和S. aureus HLJ 23-1菌株攻毒，攻毒后 1周內(nèi)觀察小鼠的死亡情況。結(jié)果表明：S. aureus Wood46株攻毒組中，對(duì)照組小鼠全部死亡時(shí)，Isdb蛋白免疫組的保護(hù)率為 62.5%；S. aureus HLJ 23-1株攻毒組中，對(duì)照組小鼠全部死亡時(shí)，Isdb蛋白免疫組的保護(hù)率為 75%，如表3所示。

3 討論

目前，金黃色葡萄球菌耐藥菌株的不斷出現(xiàn)給臨床上疾病的預(yù)防和治療帶來(lái)了巨大的困難，這也使金黃色葡萄球菌性奶牛乳房炎解決的問(wèn)題變得更加嚴(yán)峻。在過(guò)去的40多年里，人們對(duì)金黃色葡萄球菌全菌滅活苗、莢膜多糖結(jié)合苗以及菌體結(jié)構(gòu)蛋白亞單位苗等作了大量研究，但免疫保護(hù)效果都不令人滿意。研究學(xué)者發(fā)現(xiàn)金黃色葡萄球菌表面蛋白具有很好的免疫原性，將是解決金黃色葡萄球菌性疾病一個(gè)新的研究方向[7]。Isdb是Sortase A錨定在金黃色葡萄球菌細(xì)胞壁上的一種蛋白，它在金黃色葡萄球菌轉(zhuǎn)運(yùn)宿主血紅蛋白過(guò)程中發(fā)揮重要作用[8-9]。Kuklin等研究表明 Isdb具有高度的保守性，并且Isdb蛋白對(duì)獼猴均有良好的免疫原性[10]，但是，目前Isdb蛋白對(duì)其他動(dòng)物的免疫原性的研究較少。

本研究表明Isdb蛋白能夠刺激小鼠產(chǎn)生良好的體液免疫，并且對(duì) S. aureus Wood46和 S. aureus HLJ23-1兩種不同的菌株攻毒保護(hù)率分別為 62.5%和75%，這種保護(hù)效果要比Gaudreau等研究的Clfa、FnBPA和Sortase酶 (Srt) 多蛋白的DNA疫苗的保護(hù)率高出10%左右[11]，與馮昊等研究的Clfa蛋白的保護(hù)率比較接近[12]，這進(jìn)一步說(shuō)明Isdb蛋白具有較好的免疫原性。Isdb蛋白不能完全起到保護(hù)作用的原因可能與金黃色葡萄球菌的致病因子的多樣性有關(guān)，也與金黃色葡萄球菌能通過(guò)莢膜阻止吞噬細(xì)胞的調(diào)理作用和產(chǎn)生多種免疫逃避因子以使自身逃避宿主免疫反應(yīng)有直接關(guān)系[13]，所以，要想解決金黃色葡萄球菌的感染問(wèn)題，還需要進(jìn)一步提高Isdb蛋白的保護(hù)率。隨著對(duì)這種病原菌認(rèn)識(shí)的不斷深入和對(duì)金黃色葡萄球菌疫苗的研究探索，有學(xué)者提出預(yù)防金黃色葡萄球菌感染需要使用多抗原成分疫苗有望提高疫苗的保護(hù)率[14-15]，這樣不同蛋白聯(lián)合免疫可以一定程度上提高其免疫效果[16]，至少不應(yīng)該比單一抗原免疫保護(hù)效果差[17]。所以，Isdb蛋白與金黃色葡萄球菌表面其他的結(jié)構(gòu)蛋白組成聯(lián)合疫苗有可能提高其免疫效果。另外，以上兩種菌保護(hù)率的差異可能是兩種菌不同莢膜型對(duì)抗吞噬作用影響程度的不同所致，也有可能是細(xì)菌本身毒力差異不同所致。要想澄清以上兩種菌株保護(hù)率差異的問(wèn)題還需要進(jìn)一步深入研究。本研究為臨床預(yù)防和治療奶牛乳房炎疾病提供了有利參考，也為解決人的金黃色葡萄球菌性疾病提供了很好借鑒。

表2 免疫鼠血清中Isdb的IgG抗體效價(jià)Table 2 Antibody titer of IgG in the sera of the immunized and control mice

表3 不同金黃色葡萄球菌菌株攻毒結(jié)果Table 3 Challenge of immunized mice with S. aureus strains

REFERENCES

[1] Watts A, Ke D, Wang Q, et al. Staphylococcus aureus strains that express serotype 5 or serotype 8 capsular polysaccharides differ in virulence. Infect Immun, 2005,73(6): 3502?3511.

[2] Thakker M, Park JS, Carey V, et al. Staphylococcus aureus serotype 5 capsular polysaccharide is antiphagocytic and enhances bacterial virulence in a murine bacteremia model. Infect Immun, 1998, 66(11): 5183?5189.

[3] Karakawa WW, Sutton A, Schneerson R, et al. Capsular antibodies induce type-specific phagocytosis of capsulated Staphylococcus aureus by human polymorphonuclear leukocytes. Infect Immun, 1988, 56(5): 1090?1095.

[4] Hiramatsu K, Hanaki H, Ino T, et a1. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus clinical strain with reduced vancomycin susceptibility. Anfimicmb Chemother, 1997,40(1): 135?136.

[5] Kerro-Dego O, Prysliak T, Potter AA, et al. DNA-protein immunization against the GapB and GapC proteins of a mastifs isolate of Staphyloococcus aureus. Vet Immunol Immunopathol, 2006, 13(1/2): 125?138.

[6] Zhang YY, Liang DR, Xu N. Clinical investigation and drug tolerance of Staphylococcus aureus (SA) on hospital infections. Chin J Infect Chemoth, 2002, 2(4): 241?242.

張勇?lián)P, 梁德榮, 徐楠. 金黃色葡萄球菌醫(yī)院感染的臨床調(diào)查及其耐藥性. 中國(guó)抗感染化療雜志, 2002, 2(4):241?242.

[7] Stranger-Jones YK, Bae T, Schneewind O. Vaccine assembly from surface proteins of Staphylococcus aureus.Proc Natl Acad Sci USA, 2006, 103(45): 16942?16947.

[8] Marraffini LA, Dedent AC, Schneewind O. Sortases and the art of anchoring proteins to theenvelopes of Gram-positive bacteria. Microbiol Mol Biol Rev, 2006,70(1): 192?221.

[9] Maresso AW, Schneewind O. Iron acquisition and transport in Staphylococcus aureus. BioMetals, 2006,19(2): 193?203.

[10] Kuklin NA, Clark DJ, Secore S, et al. A novel Staphylococcus aureus vaccine: iron surface determinant B induces rapid antibody responses in rhesus macaques and specific increased survival in a murine S. aureus sepsis model. Infect Immunity, 2006, 74(4): 2215?2223.

[11] Gaudreau MC, Lacasse P, Talbot BG. Protective immune responses to a multi-gene DNA vaccine against Staphylococcus aureus. Vaccine, 2007, 25(5): 814?824.

[12] Feng H, Liu LF, Chi JQ, et al. Immunogenicity of Staphylococcus aureus recombinant clumping factor A.Chin J Biotech, 2009, 25(8): 1180?1186.馮昊, 劉樂(lè)鋒, 遲佳琦, 等. 金黃色葡萄球菌凝集因子A的免疫原性. 生物工程學(xué)報(bào), 2009, 25(8): 1180?1186.

[13] Foster TJ. Immune evasion by staphylococci. Nat Rev Microbiol, 2005, 3(12): 948?958.

[14] Middleton JR. Staphylococcus aureus antigens and challenges in vaccine development. Expert Rev Vaccines,2008, 7(6): 805?815.

[15] Schaffer AC, Lee J C. Vaccination and passive immunisation against Staphylococcus aureus. Infect Dis Clin North Am, 2009, 23(1): 153?171.

[16] Stranger-Jones YK, Bae T, Schneewind O. Vaccine assembly from surface proteins of Staphylococcus aureus.Proc Natl Acad Sci USA, 2006, 103(45): 16942?16947.

[17] Zhou H, Xiong ZY, Li HP, et al. An immunogenicity study of a newly fusion protein Cna-FnBP vaccinated against Staphylococcus aureus infections in a mice model.Vaccine, 2006, 24(22): 4830?4837.

Cloning and expression of Staphylococcus aureus surface protein Isdb and its immune experiment in mice

Jinzhu Ma1, Yudong Cui1,2, Jing Zhang1, Zhanbo Zhu2, and Fanze Piao2
1 College of Life Science and Biotechnology, Heilongjiang Bayi Agricultural University, Daqing 163319, China
2 College of Animal Science and Veterinary Medicine, Heilongjiang Bayi Agricultural University, Daqing 163319, China

Received: August 31, 2010; Accepted: December 28, 2010

Corresponding author: Yudong Cui. Tel: +86-459-6819290; E-mail: cuiyudong@yahoo.com