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    豬繁殖與呼吸綜合征病毒ORF7基因的克隆、高效表達與鑒定

    2011-09-25 08:05:14云,斌,君,赟,霞,
    大連工業(yè)大學學報 2011年1期
    關(guān)鍵詞:毒株質(zhì)粒試劑盒

    張 秀 云, 吳 斌, 肇 慧 君, 賈 赟, 劉 霞, 張 瑞

    ( 1.大連工業(yè)大學 生物工程學院, 遼寧 大連 116034;2.遼寧出入境檢驗檢疫局, 遼寧 大連 116001;3.河南農(nóng)業(yè)大學 牧醫(yī)工程學院, 河南 鄭州 450002 )

    0 引 言

    豬繁殖與呼吸綜合征(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome, PRRS)是由豬繁殖與呼吸綜合征病毒(Porcine reproductive and respiratory syndrome virus, PRRSV)。近年來,PRRS在我國存在不同程度的流行,造成嚴重的經(jīng)濟損失[1]。自PRRSV在北美發(fā)現(xiàn)以來,圍繞其準確診斷與疫苗的研究不斷深入。但由于PRRSV基因組具有較大的變異性[2],為研究帶來一定的難度。

    PRRSV系單股正鏈RNA病毒,該病毒的基因組長約15 kb。PRRSV的核衣殼N蛋白最為保守,是該病毒免疫原性最強的結(jié)構(gòu)蛋白[3],也是目前進行PRRS診斷的抗原基礎(chǔ)。感染PRRSV后的早期免疫應答主要是針對N蛋白的,對其產(chǎn)生的抗體持續(xù)時間也最長,N蛋白以其強大的免疫性和相對的保守性成為現(xiàn)行診斷試驗的抗原基礎(chǔ),也是研制重組診斷抗原的首選靶抗原[4]。

    本實驗對PRRSV的N蛋白基因(ORF7)[5]進行克隆、測序鑒定、原核表達及純化,純化后的重組蛋白和PRRSV陽性血清進行免疫學印跡試驗(Western-blotting),驗證表達蛋白的免疫學活性,為下一步血清學檢測方法的建立和診斷試劑盒的研制奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 細胞、質(zhì)粒、菌種與毒株

    Marc-145細胞及PRRSV ATCC VR2332標準毒株凍干樣品由遼寧出入境檢驗檢疫局動檢實驗室提供;pET-28a(+)、Ni-NTA His Bind Resis購自Novagen公司;感受態(tài)細胞DH5α、BL21(DE3)宿主菌、pMD18-T載體均購自大連寶生物公司;巴氏小鼠購自大連醫(yī)科大學實驗動物中心。

    1.2 試 劑

    DMEM培養(yǎng)基為GIBCO公司出品;新生犢牛血清購自杭州四季青公司;Taq DNA聚合酶、限制性內(nèi)切酶、反轉(zhuǎn)錄酶AMV購自大連寶生物公司;一抗為自制鼠抗PRRSV抗體;二抗(羊抗鼠IgG-HRP)購自SIGMA公司;病毒RNA/DNA快速純化試劑盒、DNA凝膠回收試劑盒、質(zhì)粒DNA小量純化試劑盒購自大連寶生物公司。

    1.3 引物的設(shè)計與合成

    根據(jù)GenBank發(fā)表的PRRSV VR2332株的核衣殼ORF7基因序列,采用Oligo 6.0軟件自行設(shè)計引物,由大連寶生物公司合成,擴增完整的ORF7基因序列。

    P1:5′-GCCGAATTCATGCCAAATAACAAC-3′

    EcoRI

    P2:5′-AATCTCGAGTCATGCTGAGGGTGA-3′

    XhoI

    擴增目的片段長度為372 bp。

    1.4 PRRSV標準毒株的增殖

    MARC-145細胞在含10%小牛血清的DMEM培養(yǎng)基內(nèi)貼壁長滿單層后,棄培養(yǎng)基,按病毒液與維持液(含2%小牛血清的DMEM)1∶10的比例,接種PRRSV VR2332標準毒株凍干樣品稀釋液,37 ℃吸附1 h,加入維持液后置37 ℃、5% CO2細胞培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),待細胞出現(xiàn)70%以上病變時收獲病毒。凍融3次后的細胞培養(yǎng)液作為提取PRRSV的RNA的材料,RNA提取方法按Trizol法進行。

    1.5 ORF7基因片段擴增

    RT-PCR擴增反應,獲得目的基因。反轉(zhuǎn)錄條件:42 ℃,1 h;95 ℃,15 min。

    PCR條件:94 ℃,5 min; 94 ℃,45 s;52 ℃,45 s;72 ℃,1 min,30個循環(huán);72 ℃,10 min。1%瓊脂糖凝膠電泳檢查PCR產(chǎn)物,按膠回收試劑盒說明書回收特異性目的片段。

    1.6 ORF7基因片段的克隆、鑒定和測序

    將回收的N基因片段與pMD-18T載體進行連接反應,構(gòu)建重組質(zhì)粒pMD-18T-N。pMD18T-N轉(zhuǎn)化至DH5α感受態(tài)細胞,涂氨芐平板,置37 ℃恒溫箱過夜培養(yǎng),挑取單菌落接種于含50 μg/mL氨芐青霉素的液體LB中過夜培養(yǎng)。按試劑盒提取質(zhì)粒,用EcoRI、XhoI酶切鑒定重組質(zhì)粒pMD-18T-N,核酸電泳檢查插入片段的大小,然后對pMD-18T-N進行測序。

    1.7 重組表達質(zhì)粒的構(gòu)建

    經(jīng)EcoRI、XhoI雙酶切的ORF7基因片段與表達載體pET-28a(+) 進行連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至BL21感受態(tài)細胞,涂卡那霉素平板,置37 ℃恒溫箱過夜培養(yǎng),挑取單菌落接種于含50 μg/mL卡那霉素的液體LB培養(yǎng)基內(nèi)振蕩過夜培養(yǎng)。按試劑盒提取質(zhì)粒,重組質(zhì)粒經(jīng)PCR擴增及雙酶切鑒定,篩選到陽性重組質(zhì)粒pET-28a(+)-N。

    1.8 陽性重組質(zhì)粒在大腸桿菌中的表達

    將pET-28a(+)-N轉(zhuǎn)化至BL21感受態(tài)細胞,涂板,挑取單菌落37 ℃過夜培養(yǎng),菌液以1∶100比例接種于含卡那霉素的新鮮LB培養(yǎng)基中,于37 ℃振蕩培養(yǎng)約3 h,至OD600值達到0.6時,分別在30、37 ℃培養(yǎng)溫度下,加入不同終濃度的IPTG(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mmol/L),繼續(xù)培養(yǎng)5 h,其間每隔1 h取1 mL菌液進行12% SDS-PAGE電泳鑒定。

    1.9 重組蛋白的純化及免疫學活性檢測

    將在37 ℃,0.2 mmol/L IPTG誘導培養(yǎng)5 h的500 mL菌液離心沉淀,用8 mL Denaturing Binding Buffer(8 mol/L Urea,20 mmol/L Na2HPO4,500 mmol/L NaCl,pH 7.8) 重懸,將其置于冰浴中超聲破碎12 min。5 000 r/min離心15 min,獲取上清待用。另取20 μL上清進行SDS-PAGE電泳鑒定。

    用Ni-NTA層析柱在變性條件下純化重組蛋白。Ni-NTA resin經(jīng)裝柱、平衡、上樣后,依次洗脫、收集、透析復性。收集的蛋白在-80 ℃保存?zhèn)溆?。按Western-blotting方法鑒定表達蛋白免疫學活性。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 病毒增殖

    將PRRSV ATCC VR2332病毒接種于Marc-145細胞上,在72 h出現(xiàn)約70%的細胞病變,如圖1所示。

    圖1 Marc-145細胞接毒后病變情況

    2.2 PRRSV ORF7基因片段擴增

    以RT-PCR獲得的CDNA為模板擴增完整ORF7基因片段,大小為372 bp,與預計相符。如圖2所示。

    M,DL2000 Marker;1、2,RT-PCR擴增產(chǎn)物;3,陰性對照

    圖2 PRRSV VR2332標準株ORF7基因的RT-PCR擴增

    Fig.2 RT-PCR amplification for ORF7 gene of PRRSV VR2332

    2.3 重組質(zhì)粒pMD-18T-N的酶切鑒定和測序分析

    將PCR產(chǎn)物連接入pMD-18T載體,用EcoRI、XhoI雙酶切鑒定,選取酶切出現(xiàn)約2.7 kb和372 bp大小的質(zhì)粒為陽性重組質(zhì)粒,挑取陽性重組質(zhì)粒進行測序。

    用DNA star軟件對測序結(jié)果進行分析,并與美洲株VR2332、歐洲株LV和國內(nèi)數(shù)株參考毒株ORF7基因序列進行比較分析。其基因與氨基酸同源性比較結(jié)果如表1所示。

    由表1可以看出,測序基因與VR2332株ORF7基因序列同源性為100%,與LV株ORF7基因序列同源性為65.1%。氨基酸同源性比較中,本實驗室毒株與VR2332株ORF7同源性為100%,與LV株氨基酸同源性為58.5%,并與大部分國內(nèi)PRRSV毒株氨基酸序列同源性較高。

    2.4 原核表達重組質(zhì)粒pET-28a(+)-N的鑒定

    以特異性引物擴增重組質(zhì)粒pET-28a(+)-N,核酸電泳顯示出現(xiàn)大小為372 bp的ORF7基因片段。陽性質(zhì)粒經(jīng)EcoRI及XhoI雙酶切,出現(xiàn)5 324 bp和372 bp兩條帶,說明ORF7基因被定向插入到表達載體pET-28a(+)內(nèi),構(gòu)建成重組質(zhì)粒pET-28a(+)-N,如圖3所示。

    表1 測序基因與國內(nèi)外其他毒株N基因和氨基酸同源性比較

    M1,DL2000 DNA Marker;1,重組質(zhì)粒pET-28a(+)-N的EcoRI和XhoI的雙酶切;2,陰性對照;M2,DL15000 DNA Marker

    圖3 重組質(zhì)粒pET-28a(+)-N酶切鑒定

    Fig.3 The identification of pET-28a(+)-N

    2.5 重組質(zhì)粒pET-28a(+)-N的表達及表達蛋白的純化

    SDS-PAGE電泳顯示,重組質(zhì)粒pET-28a(+)-N轉(zhuǎn)化至BL21細胞中,在0.2 mmol/L IPTG,37 ℃誘導表達5 h時,PRRSV核衣殼重組蛋白在BL21細胞中獲得了高效表達,大小約為22 ku,與預期相符。重組蛋白經(jīng)His-bind Purification Kit親和層析柱純化、透析復性,12%的SDS-PAGE電泳顯示獲得單一純化蛋白。結(jié)果如圖4所示。

    2.6 重組蛋白免疫原性Western-blotting分析

    以自制鼠抗PRRSV全病毒的陽性血清作為一抗,對誘導表達的原核重組N蛋白進行Western-blotting檢測。結(jié)果在大小約22 ku處出現(xiàn)一清晰的特異性反應條帶,而宿主菌空載體pET-28a(+)無此條帶。表明重組蛋白在大腸桿菌中得到了正確表達并保留了與PRRSV陽性血清反應的抗原性,結(jié)果如圖5所示。因此,本實驗制備的重組蛋白可用來建立PRRS的血清學檢測方法。

    1,pET-28a(+)/BL21誘導后的菌體總蛋白; 2,pET-28a(+)-N/BL21誘導后的菌體總蛋白; M,低分子質(zhì)量蛋白Marker;3,純化后重組蛋白;4,復性后重組蛋白

    圖4 重組蛋白pET-28a(+)-N表達產(chǎn)物的SDS-PAGE分析

    Fig.4 SDS-PAGE analysis of the recombinant protein expression by pET-28a(+)-N

    1,pET-28a(+)/BL21誘導后的菌體總蛋白;2,pET-28a(+)-N/BL21誘導后的菌體總蛋白; M,低分子質(zhì)量蛋白Marker;3,純化后的重組蛋白;4,復性后的重組蛋白

    圖5 重組蛋白pET-28a(+)-N的Western-blotting檢測

    Fig.5 Western-blotting analysis of the recombinant protein expression by pET-28a(+)-N

    3 結(jié) 論

    本研究使用的PRRSV ATCC VR2332是豬繁殖與呼吸綜合征美洲型病毒的標準毒株,與GenBank中PRRSV VR2332 N基因進行比對符合率為100%,與國內(nèi)毒株N基因?qū)Ρ确下室捕驾^高。這對于建立具有臨床普遍意義的PRRSV檢測方法具有重要意義。將PRRSV株0RF7基因克隆到原核表達載體pET-28a(+)中,以期獲得原核表達重組質(zhì)粒pET-28a(+)-N,將其轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21,在IPTG誘導下獲得了高效表達。將純化復性后的重組N蛋白與抗PRRSV全病毒陽性血清進行Western-blotting鑒定,結(jié)果重組N蛋白與PRRSV陽性血清發(fā)生特異性反應,表明表達的重組N蛋白具有較好的反應活性。

    制備的重組N蛋白,與全毒檢測的方法相比,可以克服散毒這一弊端,只需通過簡單的溫度誘導就可獲得大量的重組表達。通過Ni-NTA柱的純化和透析復性后,重組蛋白的純度大大提高,并且抗原性更佳,可用做診斷抗原。這為利用該原核表達產(chǎn)物建立反應機體抗體水平的特異性診斷方法提供了基礎(chǔ)材料。

    [1] 蔡雪輝. 我國豬繁殖與呼吸綜合征的流行特點、分布規(guī)律與防制策略 [J]. 吉林畜牧獸醫(yī), 2002(4):6-7,17.

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