納 寧, 何善陽, 徐 霖, 陳 康, 趙 湛, 廖 冰, 曹開源
(1中山大學附屬第三醫(yī)院腎移植科,廣東 廣州 510630;2中山大學第一附屬醫(yī)院黃埔院區(qū)婦產(chǎn)科,廣東 廣州 510700;3中山大學熱帶病防治研究教育部重點實驗室,廣東廣州 510080;4東莞市中醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,廣東東莞 523000;3中山大學中山醫(yī)學院病理學教研室,廣東廣州 510080)
移植物抗宿主病(graft-versus-h(huán)ost disease,GVHD)是同種異體骨髓移植(allogeneic bone marrow transplantation,allo-BMT)后最主要的并發(fā)癥之一,它的發(fā)生嚴重影響著移植后的生存時間和生存質(zhì)量。GVHD的發(fā)生主要是由于植入的供者免疫活性細胞識別受者的移植抗原,產(chǎn)生細胞免疫和體液免疫反應,使受者的組織細胞受到免疫反應的攻擊而受損,可累及全身多個組織器官,嚴重時可致病人死亡,其中皮膚、肝臟和胃腸道是最主要的受損器官。本課題組近年來致力于不成熟CD8α+樹突狀細胞(dendritic cells,DCs)誘導免疫耐受的研究,已成功建立起不成熟CD8α+DC的體外誘導培養(yǎng)體系[1-3],并通過體外實驗證明其具有分泌高水平白細胞介素10(interleukin-10,IL-10),抑制同種混合淋巴細胞反應的作用[4],但其體內(nèi)防治GVHD的功能尚有待進一步證實。因此,本研究通過建立小鼠EL9611紅白血病和急性GVHD動物模型,并通過臨床表現(xiàn)、病理改變和生存時間等指標評估動物模型的可靠性,為不成熟CD8α+DC防治急性GVHD和保留移植物抗白血病(graft-versus-leukemia,GVL)的研究打下堅實基礎。
4-6周雄性 SPF級 C57BL/6小鼠(合格證號為0017563),4-6周雄性 SPF級 BALB/c小鼠(合格證號為0013056),均由中山大學實驗動物中心提供。所有GVHD及紅白血病模型鼠(BALB/c鼠)均飼養(yǎng)于中山大學實驗動物中心SPF實驗環(huán)境中(動物實驗設施使用證號為0006523)。EL9611紅白血病細胞株購自天津中國醫(yī)學科學院血液學研究所。
采用體內(nèi)傳代的方法,無菌條件下取紅白血病BALB/c小鼠脾臟,剪碎后經(jīng)不銹鋼濾網(wǎng)過濾,PBS洗滌1次,離心去上清,加入0.15 mol/L NH4Cl紅細胞裂解液處理,洗滌2次,計數(shù)。尾靜脈注射白血病鼠脾細胞2×106個/鼠建立EL9611紅白血病動物模型。觀察小鼠的存活時間、肝脾稱重并進行病理檢查,發(fā)病晚期鏡下計數(shù)外周血白細胞(white blood cell,WBC)數(shù)目,并涂片進行Giemsa染色鏡檢。當外周血WBC>3.0×1010/L時拉頸處死,取脾細胞傳代。
以allo-BMT當天為第0 d,EL9611紅白血病鼠第-7 d每只小鼠接種2×106白血病細胞;第-5 d開始,飲用水中添加慶大霉素320 mg/L和紅霉素250 mg/L;第0 d進行1次性全身致死劑量的[60Co]γ射線照射治療,照射劑量8.0 Gy;照射后5 h內(nèi)進行骨髓移植,每只小鼠經(jīng)尾靜脈輸注同種異基因C57BL/6(H-2b)小鼠骨髓細胞2×106+脾細胞1×107,輸注總劑量0.5 mL/只。移植后第3 d撤去紅霉素和慶大霉素,觀察小鼠臨床表現(xiàn),包括:精神狀態(tài)、活動能力、體位改變、皮毛、體重、大便等,記錄每只小鼠的生存時間、計算存活率并繪制生存曲線。病理檢查瀕死小鼠的皮膚、肝臟、小腸。
白血病組:n=10,第-7 d每只小鼠尾靜脈輸注2×106白血病細胞,不進行[60Co]γ射線照射,尾靜脈輸注PBS 0.5 mL。照射對照組:n=4,第-7 d每只小鼠尾靜脈輸注2×106個EL9611細胞,經(jīng)1次[60Co]γ射線8.0 Gy照射,照射后不進行allo-BMT,尾靜脈輸注PBS 0.5 mL,照射后第7 d開始每天計數(shù)WBC。GVHD組:n=10,第0 d進行1次8.0 Gy的[60Co]γ射線照射,照射后進行allo-BMT,建立EL9611白血病鼠的急性GVHD模型。正常對照組:n=4,正常BALB/c小鼠未進行照射,第0 d尾靜脈輸注PBS 0.5 mL。
各組織經(jīng)常規(guī)10%甲醛-PBS固定、石蠟切片、HE染色檢查。白血病組進行肝、脾HE染色,血涂片行Giemsa染色觀察。照射對照組取瀕死鼠的股骨進行骨髓病理切片和HE染色。GVHD組進行肝、皮膚、小腸的組織切片和HE染色;以正常對照組小鼠相應的組織切片作為正常對照。
接種2×106個白血病細胞的EL9611紅白血病鼠平均生存時間為(14.5±2.1)d,死亡率100%,無自發(fā)緩解,死亡時肝脾腫大,肝重(2.40±0.48)g,脾重(0.84±0.20)g,與正常對照組[肝(1.05±0.15)g,脾(0.07±0.01)g]相比P<0.01。外周血WBC升高,死亡前1-2 d WBC計數(shù)為(3.33±0.27)×1010/L,與正常對照組[(1.37±0.23)×1010/L]相比,P<0.05。外周血涂片中可見異形白血病細胞,肝脾病理檢查示脾臟正常結(jié)構(gòu)被破壞,彌漫性白血病細胞浸潤,核分裂相與凋亡相較多,肝臟中有大量白血病細胞浸潤灶,見圖1A-C,結(jié)果符合文獻報道EL9611紅白血病的表現(xiàn)[5]。
Figure 1.The pathological analysis in leukemia group and radiation control group.Mice in leukemia group received 2×106/mouse of EL9611 erythroleukemic cells via tail vein on day-7.Mice in radiation control group received 2×106/mouse of EL9611 erythroleukemic cells on day-7 and 8.0 Gy[60Co]γ TBI on day 0 without allo-BMT.A:liver of mice in leukemia group(HE staining,×400);B:spleen of mice in leukemia group(HE staining,×400);C:peripheral blood of mice in leukemia group(Giemsa staining,×800);D:bone marrow of mice in radiation control group(HE staining,×100).圖1 白血病組和照射對照組小鼠的病理表現(xiàn)
照射對照組經(jīng)照射后外周血白細胞進行性下降,第8 d以后WBC降為0,出現(xiàn)皮下出血等凝血功能下降癥狀,骨髓病理顯示無造血增生,骨髓被脂肪組織取代,表明死于造血衰竭,8.0 Gy為致死性照射劑量,見圖1D。GVHD組小鼠移植10-13 d后開始出現(xiàn)消瘦,死亡時體重(11.00±0.97)g,與正常對照組(15.60±1.90)g相比,P<0.05,以及弓背、豎毛、精神萎靡、皮毛脫落、腹瀉等典型的GVHD臨床癥狀[6],病理檢查顯示皮膚角化不良,表皮與真皮之間出現(xiàn)裂隙,交界處血管充血,真皮層炎癥細胞浸潤;肝臟中央靜脈充血,匯管區(qū)炎癥細胞浸潤;小腸可見腸黏膜上皮細胞脫落,黏膜下層炎癥細胞浸潤,其病理表現(xiàn)符合Ⅰ到Ⅱ度GVHD的改變,未見白血病征象,見圖2。
未進行BMT的照射對照組TBI后外周血WBC進行性減少,第8 d以后降為0,出現(xiàn)皮下出血等血小板減少征象,平均生存時間為(9.00±0.71)d,生存時間與GVHD組及正常對照組相比差異顯著(P<0.01),死亡率100%;未照射的白血病組平均生存時間為(7.50±0.65)d(以照射當天為第0 d),生存時間與GVHD組及正常對照組相比差異顯著(P<0.01),死亡率100%;GVHD對照鼠平均生存時間為(32.00±3.17)d,生存時間與其它各組相比差異顯著(P<0.01)。各組的生存曲線見圖3。
Figure 2.The pathological analysis and appearance of mice in GVHD group.Mice in GVHD group received 2×106/mouse of EL9611 erythroleukemic cells on day -7 and 8.0 Gy[60Co]γ TBI on day 0,then received allo-BMT of 2×106C57BL/6 bone marrow cells+1 ×107C57BL/6 spleen cells.A:skin(HE staining,×400);B:liver(HE staining,×400);C:small intestine(HE staining,×400);D:clinical manifestation of hunched back and depilation 10-13 d after allo-BMT.圖2 GVHD組的病理和臨床表現(xiàn)
Figure 3.The survival curve analysis among different groups.Mice in leukemic group received 2×106/mouse of EL9611 erythroleukemia cells via tail vein on day-7.Mice in radiation control group received EL9611 leukemia cell infusion on day -7 and 8.0 Gy[60Co]γ TBI on day 0 without allo-BMT.Mice in GVHD group received EL9611 leukemia cell infusion on day-7 and 8.0 Gy[60Co]γ TBI on day 0,then received allo-BMT of 2×106C57BL/6 bone marrow cells+1 ×107C57BL/6 spleen cells.圖3 各組小鼠的生存分析
GVHD的發(fā)生嚴重影響骨髓移植患者術后的生存時間和生存質(zhì)量。如何在防治GVHD的同時保留移植物抗感染和GVL效應已成為臨床上開展骨髓移植和治療白血病需要解決的難題之一。耐受性DCs為GVHD的防治提供了新的思路[7,8]。本課題組近年來已成功建立了不成熟CD8α+DCs的體外培養(yǎng)方法[1-3],體外實驗已證明所誘導的 CD8α+DCs具有抑制混合淋巴細胞反應的功能[4],但其體內(nèi)功能仍需進一步確證。建立白血病小鼠的GVHD動物模型是研究GVHD尤其是GVL效應機制和防治研究的重要基礎,但目前國內(nèi)對于GVL效應機制的研究很少,未見相關動物模型的報道,因此,本研究建立了白血病小鼠的GVHD動物模型,為不成熟CD8α+DC防治GVHD和GVL效應的研究提供實驗條件。本研究所選取的EL9611紅白血病模型是國內(nèi)建立的可移植性白血病動物模型,白血病細胞主要侵及骨髓、脾及肝臟,晚期外周血中可見大量瘤細胞,對常用化療藥物敏感,是較理想的動物模型之一[5]。目前國內(nèi)尚無白血病聯(lián)合GVHD動物模型建立的報道,而國外白血病和GVHD小鼠模型的建立常采用 C1498、A20、P815 等細胞株[9,10],未見應用紅白血病細胞株來建GVHD動物模型的報道,采用EL9611紅白血病細胞株建立起來的白血病GVHD動物模型國內(nèi)外更是未見相關報道。本研究中,接種2×106個白血病細胞的白血病組平均生存時間為(14.5±2.1)d[以照射當天為第0 d,則為(7.5±0.7)d],死亡率100%,無自發(fā)緩解,死亡時肝脾腫大,外周血WBC升高(P<0.05),病理檢查證實外周血中出現(xiàn)多量體積大、核異形的白血病細胞,并可見核分裂相,肝脾中均有大量白血病細胞浸潤,易見凋亡相與核分裂相,正常組織被破壞,符合白血病的病理改變[5](圖1A-C),表明EL9611紅白血病模型建立成功。本研究選在傳代7 d后即白血病的中期進行allo-BMT,照射前飲用水中添加紅霉毒與慶大霉素預防TBI后發(fā)生嚴重感染。由于小鼠較人類易于誘導免疫耐受,單純骨髓移植往往難于誘導出致死性GVHD,可能出現(xiàn)部分小鼠的GVHD癥狀自發(fā)緩解而長期存活的現(xiàn)象,病理改變也較輕,致死性GVHD病理檢查常不過是Ⅰ-Ⅱ度,難以產(chǎn)生如同人類的Ⅲ-Ⅳ度的病理改變。因此,誘導出致死性的、癥狀典型的GVHD往往需要同時添加成熟淋巴細胞才能實現(xiàn)[6]。本研究中采用TBI后每只受鼠靜脈輸注同種異基因供鼠骨髓細胞2×106+脾細胞1×107的方法建立GVHD的動物模型。照射對照組在TBI后外周血WBC進行性減少,第8天以后降為0,出現(xiàn)皮下出血等血小板減少征象,平均生存時間為(9.00±0.71)d,死亡率100%,病理檢查證實骨髓造血衰竭(圖1D),表明8.0Gy的照射劑量是致死性的合適劑量。GVHD組在移植后10-13天開始出現(xiàn)精神萎靡、消瘦、弓背、豎毛、脫毛(嚴重時出現(xiàn)表皮結(jié)痂脫落)、腹瀉等GVHD的臨床癥狀(圖2),與文獻報道的典型癥狀一致[6],死亡率100%,病理檢查顯示皮膚、肝臟、小腸的病理表現(xiàn)符合Ⅰ到Ⅱ度GVHD的改變(圖2),未見白血病細胞浸潤,生存期(32.00±3.17)d與照射對照組及白血病組相比均差異顯著(P<0.01),表明TBI加allo-BMT可以產(chǎn)生抗白血病的治療作用,allo-BMT可延長照射后小鼠的存活時間并恢復造血。以上實驗結(jié)果表明EL9611紅白血病鼠的急性GVHD動物模型建立成功,為GVHD防治和GVL效應的進一步研究打下了堅實的基礎。
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