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    Sonic hedgehog阻斷抗體增強外周血單個核細胞抗宮頸癌HeLa細胞的作用*

    2011-07-31 14:05:48黃莉霞黃文浩
    中國病理生理雜志 2011年12期
    關(guān)鍵詞:共培養(yǎng)活化淋巴細胞

    孫 艷,黃莉霞,黃文浩,黃 斌

    (廣東藥學(xué)院生命科學(xué)與生物制藥學(xué)院,廣東 廣州 510006)

    Sonic hedgehog(Shh)是刺猬因子(Hedgehog,Hh)家族的成員之一。該家族最早在果蠅中發(fā)現(xiàn),并證實與果蠅體節(jié)發(fā)育有關(guān)[1]。后來科學(xué)家在高等動物中發(fā)現(xiàn)3種Hh分子——Shh、India hedgehog(Ihh)和Desert hedgehog(Dhh),并證實3種Hh分子經(jīng)過相同的信號通路[Patched(Ptch)/Smoothened(Smo)/glioma- associated oncogene(Gli)][2]在早期胚胎發(fā)育中起關(guān)鍵作用。Shh是Hh家族中研究得最多也最為清楚的,它除了作為一種重要的成形素指導(dǎo)組織器官發(fā)育外[3],還參與多種病理生理過程。研究顯示,Shh高表達或Shh信號異?;罨嵌喾N腫瘤細胞惡性增殖的機制之一[4]。與此同時,有研究報道Shh可以抑制CD3抗體刺激的外周T淋巴細胞活化[5]。因此,這類腫瘤細胞中高表達的Shh分子可能通過抑制淋巴細胞功能參與其發(fā)病。本研究擬在體外外周血單個核細胞(peripheral blood mononuclear cells,PBMCs)與HeLa細胞共培養(yǎng)體系中應(yīng)用 Shh阻斷抗體阻斷Shh分子作用,并通過檢測外周血淋巴細胞活化、功能性細胞因子分泌以及觀察PBMCs對HeLa的殺傷效果,初步探討Shh對PBMCs殺傷HeLa細胞功能的影響,為深入了解Shh信號與腫瘤免疫的關(guān)系提供實驗依據(jù)。

    材料和方法

    1 細胞株和試劑

    宮頸癌細胞株HeLa由廣東藥學(xué)院生物制藥研究所提供。Shh阻斷抗體、兔抗人IgG購自Santa Cruz,RPMI-1640購自Gibco,胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購自杭州四季青公司,CD3 PE-Cy5、CD69 FITC、CD71 FITC抗體購自BD,免疫組織化學(xué)超敏UltraSensitiveTMSP試劑盒購自福州邁新公司,TaKaRa RNA PCR(AMV)kit購自 TaKaRa,人 IFN - γ ELISA kit、人 IL-10 ELISA kit購自達科為公司,人Ficoll-Hypaque淋巴細胞分離液購自天津灝洋生物公司。

    2 方法

    2.1 免疫細胞化學(xué)技術(shù)檢測Shh在HeLa細胞中的表達 消化收集HeLa細胞,以適當(dāng)密度接種于多聚賴氨酸包被的蓋玻片上,37℃、飽和濕度、體積分數(shù)為5%CO2條件下培養(yǎng)過夜。于第2 d棄去培養(yǎng)液,PBS洗滌2次,質(zhì)量分數(shù)為4%多聚甲醛固定15 min。免疫細胞化學(xué)檢測按試劑盒操作步驟進行,包括:H2O2處理、血清封閉、Ⅰ抗(Shh抗體,1∶1000稀釋)孵育、生物素標(biāo)記的Ⅱ抗孵育、鏈霉親和素-辣根過氧化物酶結(jié)合、DAB顯色、脫水、封片。顯微鏡下觀察并拍照。取傳代多次的HeLa細胞,重復(fù)進行以上檢測。

    2.2 RT-PCR檢測Shh相關(guān)信號分子表達 收集對數(shù)生長期細胞,Trizol法提取總RNA(按Trizol試劑說明操作),逆轉(zhuǎn)錄生成cDNA。PCR擴增 Gli1、Gli2、Gli3、Ptch1和Smo基因。擴增條件為:95℃預(yù)熱5 min,95 ℃ 30 s,57 ℃ 30 s,72 ℃ 45 s,循環(huán) 30次,72℃ 2 min。所用的引物序列見表1。

    表1 引物序列Table 1.Primer sequences

    2.3 建立正常人PBMCs與HeLa細胞共培養(yǎng)體系消化收集HeLa細胞,按3×105/well接種于6孔板,37℃、飽和濕度、5%CO2條件下培養(yǎng)過夜。于第2 d采用PBMCs分離液分離正常人外周血PBMCs,調(diào)整細胞密度,按3×106/well接種于已有He-La細胞的6孔板,建立共培養(yǎng)體系。于共培養(yǎng)體系中加入Shh阻斷抗體使其終濃度為2 mg/L。設(shè)置對照組A(僅PBMCs培養(yǎng))以及對照組B(共培養(yǎng)體系加入兔抗人IgG抗體)。

    2.4 流式細胞術(shù)檢測淋巴細胞活化 以上各組細胞培養(yǎng)16 h,消化收集細胞,PBS洗滌2次。加入CD3-PE-CY5、CD69-FITC和CD71-FITC抗體避光孵育25 min,洗滌1次,1%多聚甲醛固定,流式細胞儀檢測。

    2.5 ELISA法檢測T細胞分泌細胞因子水平 于培養(yǎng)24 h、48 h、72 h后,收集以上各組上清,按試劑盒操作步驟進行ELISA檢測。主要實驗步驟包括:加樣、抗體孵育2 h、洗板3次、加酶孵育20 min、洗板3次、顯色10 min、終止顯色10 min、酶標(biāo)儀讀取450 nm波長處吸光度A值。同時將標(biāo)準(zhǔn)品梯度稀釋后按以上步驟檢測,制備標(biāo)準(zhǔn)曲線。根據(jù)樣品A值計算樣品濃度。每組設(shè)置3個復(fù)孔。

    3 統(tǒng)計學(xué)處理

    結(jié) 果

    1 HeLa細胞表達Shh及其信號分子

    免疫細胞化學(xué)技術(shù)檢測Shh在HeLa細胞的表達結(jié)果顯示,Shh在90%以上的HeLa細胞胞漿或胞核中呈陽性表達,尤其在圓形、橢圓形HeLa細胞中呈強陽性表達,見圖1A。將HeLa細胞傳代多次后再次進行檢測的結(jié)果顯示:HeLa細胞傳代6次,Shh表達水平?jīng)]有顯著改變,見圖1B。

    Figure 1.Expression of Shh in HeLa cells in vitro(×200).A:Shh was expressed in the first passage of HeLa cells in vitro;B:Shh was expressed in the sixth passage of He-La cells in vitro.圖1 Shh在HeLa細胞中的表達

    RT-PCR法檢測Shh信號分子在HeLa細胞中的表達結(jié)果顯示,Shh信號受體Ptch1、Smo以及轉(zhuǎn)錄因子Gli1、Gli2、Gli3均在HeLa細胞中表達,見圖2。

    Figure 2.Shh signaling molecules were expressed in HeLa cells.圖2 Shh信號分子在HeLa細胞中表達

    2 Shh阻斷抗體促進淋巴細胞活化

    流式細胞術(shù)檢測淋巴細胞活化的結(jié)果顯示:(1)培養(yǎng)16 h,對照組A CD3+細胞(T細胞)數(shù)較少;對照組B和實驗組CD3+細胞數(shù)較對照組A顯著增多,見圖3A。(2)培養(yǎng)16 h,對照組A和B均未見CD69+細胞,實驗組則出現(xiàn)較多 CD69+細胞(12.73% ±0.57%),見圖3B。實驗組 CD69+細胞與對照組B比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),見圖3D。(3)培養(yǎng)36 h,實驗組CD71+細胞為(10.83±2.51)%,而對照組A和對照組B CD71+細胞均處于較低水平,見圖3C。實驗組CD71+細胞與對照組B相比差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),見圖3D。

    3 Shh阻斷抗體促進細胞因子IFN-γ的分泌,但抑制IL-10的分泌

    ELISA法檢測細胞因子分泌的結(jié)果顯示:(1)對照組A上清中IFN-γ水平在培養(yǎng)24 h、48 h、72 h后均保持在較低水平;而對照組B及實驗組上清中IFN-γ水平隨培養(yǎng)時間延長而逐漸升高。Shh阻斷抗體作用24 h、48 h、72 h,共培養(yǎng)體系上清中IFN-γ水平較對照組A及對照組B顯著增高,是對照組B的1.5~2倍,見圖4。(2)對照組A上清中IL-10水平在培養(yǎng)24 h、48 h、72 h均保持在較低水平;而對照組B及實驗組上清中IL-10水平均較對照組A有顯著升高。培養(yǎng)24 h、48 h、72 h,實驗組上清中IL-10水平均較對照組B顯著下降,見圖5。(3)培養(yǎng)24 h、48 h、72 h,實驗組、對照組 A、對照組 B 的培養(yǎng)上清中IL-4均維持在很低水平(<10 ng/L)。

    4 Shh阻斷抗體促進PBMCs對HeLa細胞的殺傷

    形態(tài)學(xué)觀察顯示,Shh阻斷抗體作用12 h,實驗組HeLa細胞形態(tài)已開始發(fā)生變化,部分HeLa細胞變圓,細胞間隙可見細胞碎片,見圖6B;培養(yǎng)48 h,He-La細胞數(shù)減少,細胞碎片增多,見圖6D;培養(yǎng)72 h,培養(yǎng)體系中大部分HeLa細胞已死亡,可見較多細胞碎片,見圖6F。而未加Shh阻斷抗體的共培養(yǎng)體系培養(yǎng)12 h,HeLa細胞未見明顯的形態(tài)學(xué)改變,見圖6A;培養(yǎng)48 h,HeLa細胞才開始出現(xiàn)形態(tài)變化,部分細胞變圓,培養(yǎng)體系中可見細胞碎片,但大部分HeLa細胞仍為短梭形,見圖6C;培養(yǎng)72 h,共培養(yǎng)體系中仍可見較多形態(tài)正常的HeLa細胞,見圖6E。

    討 論

    研究顯示,Shh在腫瘤中高表達或Shh信號異?;罨瘜?dǎo)致多種腫瘤,包括宮頸癌[6]的惡性增殖。但Shh是否也在體外培養(yǎng)的宮頸癌細胞株HeLa細胞中表達,目前尚未見報道。本研究因此首先檢測了HeLa細胞中Shh表達水平,結(jié)果表明Shh在90%以上的HeLa細胞中均有陽性表達,而且部分HeLa細胞呈強陽性表達。而鑒于Sasai等[7]曾報道體外培養(yǎng)的髓母細胞瘤Shh表達會嚴重下降,我們對傳代多次的HeLa細胞進行了重復(fù)檢測。結(jié)果顯示,HeLa細胞體外傳代6次,Shh表達水平仍未發(fā)生顯著改變,說明Shh的表達不會隨培養(yǎng)時間延長及傳代次數(shù)增多而下降。采用RT-PCR法檢測Shh信號分子,結(jié)果顯示HeLa細胞表達所有Shh信號通路分子,包括跨膜受體Ptch1、Smo蛋白以及Shh信號活化的轉(zhuǎn)錄因子 Gli1、Gli2、Gli3,提示 HeLa細胞自分泌Shh分子激活Shh信號通路,進一步證實Shh在He-La細胞中表達。

    Figure 3.Anti-Shh blocking antibody promoted activation of PBMCs.A:CD3+cells significantly increased in co-cultured system at 16 h;B:CD69+cells increased in co-cultured system with 2 mg/L anti-Shh blocking antibody at 16 h;C:CD71+cells increased in co-cultured system with 2 mg/L anti-Shh blocking antibody at 36 h;D:Bar graph showed the expression of CD3,CD69 and CD71..n=3.▲▲P<0.01 vs PBMCs;**P<0.01 vs PBMCs+HeLa.圖3 Shh阻斷抗體促進淋巴細胞活化

    Figure 4.Anti-Shh blocking antibody increased the secretion of IFN-γ..n=3.**P<0.01 vs PBMCs+HeLa.圖4 Shh阻斷抗體促進IFN-γ的分泌

    Figure 5.Anti-Shh antibody inhibited the secretion of IL-10..n=3.**P<0.01 vs PBMCs+HeLa.圖5 Shh阻斷抗體抑制IL-10的分泌

    Figure 6.Anti-Shh antibody promoted PBMCs to kill HeLa cells(×400).A:PBMCs+HeLa(12 h);B:PBMCs+HeLa+Shh Ab(12 h);C:PBMCs+HeLa(48 h);D:PBMCs+HeLa+Shh Ab(48 h);E:PBMCs+HeLa(72 h);F:PBMCs+HeLa+Shh Ab(72 h).White arrow:PBMCs.圖6 Shh阻斷抗體增強PBMCs殺傷HeLa細胞的作用

    我們進而采用Ficoll淋巴細胞分離液分離正常人PBMCs,并與HeLa細胞建立共培養(yǎng)體系。由于PBMCs主要是淋巴細胞和單核細胞,包含了抗腫瘤免疫的主要效應(yīng)細胞T淋巴細胞和NK細胞[8-9],因此可以在體外反映抗腫瘤功能。首先采用流式細胞術(shù)檢測淋巴細胞表達CD3、CD69和CD71分子的情況。結(jié)果顯示:與腫瘤細胞共培養(yǎng)16h,實驗組和對照組B CD3+細胞數(shù)目均顯著增加,達到無腫瘤細胞組的10倍左右。由于CD3主要表達于成熟T淋巴細胞和NK T細胞表面,是T淋巴細胞特異性表面標(biāo)記,同時也是參與傳遞T淋巴細胞活化第一信號的重要分子[10],因此CD3+細胞數(shù)增加表明在腫瘤細胞刺激下T淋巴細胞出現(xiàn)大量增殖。進一步檢測淋巴細胞早期活化標(biāo)記CD69分子和活化標(biāo)記CD71分子[11],結(jié)果顯示:培養(yǎng)16 h,Shh阻斷抗體處理的共培養(yǎng)體系中出現(xiàn)12.7%的 CD69+細胞,而沒有Shh抗體作用的對照組B和單純PBMCs組均未出現(xiàn)CD69+細胞,提示Shh阻斷抗體可以促進淋巴細胞早期活化。培養(yǎng)36 h,Shh阻斷抗體處理組出現(xiàn)10%左右的CD71+細胞,而對照組B和對照組A均未見CD71+細胞,提示Shh阻斷抗體進一步促進淋巴細胞發(fā)生晚期活化。

    淋巴細胞活化后會改變功能性細胞因子表達譜以完成相關(guān)的生物學(xué)功能[12],因此細胞因子分泌種類和數(shù)量的改變也可以間接反映淋巴細胞功能狀態(tài)。采用ELISA法檢測淋巴細胞活化相關(guān)的細胞因子,結(jié)果顯示:在腫瘤細胞刺激下,實驗組和對照組B IFN-γ和IL-10的分泌增加,而IL-4的分泌在腫瘤抗原刺激與否的情況下都處于很低水平,說明IFN-γ和IL-10參與了PBMCs抗HeLa細胞作用。研究結(jié)果還顯示,Shh阻斷抗體可以使IFN-γ分泌水平增加,但使IL-10分泌水平下降。由于IFN-γ是細胞免疫應(yīng)答重要的功能因子[13],具有較好的抗病毒、抗腫瘤作用[14],而IL-10則具有抑制細胞免疫應(yīng)答的功能[15],提示Shh阻斷抗體可以增強細胞免疫應(yīng)答反應(yīng)。此外,形態(tài)學(xué)觀察顯示,實驗組He-La細胞被殺傷得更快,說明Shh阻斷抗體可以促進PBMCs殺傷HeLa細胞。

    綜上所述,Shh阻斷抗體可以促進PBMCs活化、分泌功能性細胞因子IFN-γ以及殺傷HeLa細胞效果,但抑制PBMCs分泌具有抑制細胞免疫功能的細胞因子IL-10,說明Shh阻斷抗體可以增強PBMCs抗宮頸癌HeLa細胞的作用。而Shh是否參與了宮頸癌發(fā)病的免疫機制還需進一步深入研究和證實。

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