王 洋,陳艷萍,張業(yè)中
(長江大學(xué)化學(xué)與環(huán)境工程學(xué)院,湖北 荊州 434023)
氯酚類化合物被廣泛用作防腐劑、防銹劑、除草劑及農(nóng)藥,在水中的溶解度大,結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,不易分解和轉(zhuǎn)化,它們?cè)谧匀唤缰胁粩喾e累,給自然環(huán)境造成較大危害,已被美國環(huán)保局和我國列為優(yōu)先控制污染物[1]。2,4-二氯苯酚(DCP)是氯酚類化合物的一個(gè)典型代表,作為一種重要的有機(jī)中間體,DCP能通過食物鏈在動(dòng)物體內(nèi)不斷積累,對(duì)人體、動(dòng)植物等具有很強(qiáng)的毒性、致癌性及突變性,因此,對(duì)氯酚類化合物的研究日益引起人們的關(guān)注[2]。
人血清白蛋白(HSA)是血漿中含量最豐富的重要載體蛋白,由585個(gè)氨基酸殘基組成,具有存儲(chǔ)和轉(zhuǎn)運(yùn)內(nèi)源性代謝產(chǎn)物和外源性藥物小分子的重要生理功能。藥物分子進(jìn)入血液后不同程度地與人血清白蛋白結(jié)合,可以控制藥物的釋放和代謝。因此,研究二者的相互作用對(duì)于了解藥物在人體內(nèi)的儲(chǔ)存、運(yùn)輸、吸收、分布及代謝進(jìn)程,闡明血清白蛋白與藥物小分子相互作用的本質(zhì)具有重要的指導(dǎo)意義[3,4]。作者利用熒光光譜法、紫外吸收光譜法、圓二色譜法和三維熒光光譜法等方法研究DCP與HSA的相互作用,獲得其相互作用機(jī)理、結(jié)合常數(shù),并考察了DCP與HSA結(jié)合后HSA構(gòu)象的變化。
2,4-二氯苯酚(溶液濃度1.0×10-3mol·L-1),上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;2.0×10-6mol·L-1HSA溶液,Sigma公司;Tris-HCl緩沖溶液(pH值7.40);所用試劑均為分析純,實(shí)驗(yàn)用水為二次蒸餾水,經(jīng)檢測均無熒光雜質(zhì)。
LS-55型熒光分光光度計(jì),美國PE公司;J-810型圓二色譜儀,日本Jasco公司;TU-1901型紫外可見分光光度計(jì),北京普析分析儀器公司;AY-120M型電子分析天平,日本島津公司;SYC-15型超級(jí)恒溫水浴(控溫精度±0.1℃),南京桑力電子設(shè)備廠。
1.2.1 熒光光譜
測定條件:激發(fā)波長λex為285 nm、激發(fā)狹縫寬度為15 nm、發(fā)射狹縫寬度為4.0 nm。在模擬人體生理?xiàng)l件下,用微量進(jìn)樣器加入不同量的DCP溶液,測定其與HSA相互作用的熒光猝滅圖譜,記錄波長在300~450 nm范圍內(nèi)的熒光光譜。
1.2.2 紫外吸收光譜
測定條件:石英比色皿光路長為1.0 cm,測定200~320 nm波長范圍內(nèi)的紫外吸收光譜。
1.2.3 圓二色譜
測定條件:比色杯光路長為0.1 cm,掃描速度為200 nm·min-1。在pH值為7.40、持續(xù)氮流的條件下測定190~270 nm波長范圍內(nèi)HSA與DCP作用前后的圓二色譜圖,通過Jasco′s Spectra Manager MT軟件來控制。在相同實(shí)驗(yàn)條件下,作為參照物的緩沖溶液從樣品光譜中扣除。圓二色譜的測量結(jié)果用平均摩爾橢圓率(MRE)表示,單位為degree·cm2·dmol-1。游離的和結(jié)合的蛋白質(zhì)中,α-螺旋結(jié)構(gòu)的含量根據(jù)208 nm處的MRE值依下式計(jì)算[5]:
式中:MRE208為208 nm處觀測到的MRE值;4000為208 nm處β-折疊和無規(guī)卷曲構(gòu)象的MRE值;33000為208 nm處純?chǔ)?螺旋結(jié)構(gòu)的MRE值。
1.2.4 三維熒光光譜
測定條件:初始激發(fā)波長為200 nm,每隔5 nm記錄一次200~500 nm之間的發(fā)射光譜,掃描31次,其它參數(shù)與熒光猝滅光譜的參數(shù)相同。
熒光猝滅過程分為動(dòng)態(tài)猝滅和靜態(tài)猝滅,它們可以從溫度影響、粘度影響或熒光壽命等方面加以區(qū)分。研究表明,對(duì)于靜態(tài)猝滅過程,其猝滅常數(shù)隨溫度的升高而減??;相反,動(dòng)態(tài)猝滅常數(shù)隨溫度的升高而增大。
不同濃度的DCP與HSA作用時(shí)的熒光發(fā)射光譜如圖1所示。
由圖1可知,當(dāng)激發(fā)波長為285 nm時(shí),HSA在350 nm處有一個(gè)強(qiáng)的熒光發(fā)射峰,隨著DCP濃度的增大,HSA的熒光發(fā)射光譜的峰形不變,峰位出現(xiàn)輕微藍(lán)移,熒光強(qiáng)度規(guī)律性地降低,說明DCP對(duì)HSA的熒光有猝滅作用。
為了判斷DCP對(duì)HSA的猝滅機(jī)制,用Stern-Volmer[6]方程[式(1)]分析4個(gè)溫度(292 K、298 K、304 K、310 K)下的熒光猝滅數(shù)據(jù):
F0/F=1+KSV[Q]=1+Kqτ0[Q]
(1)
式中:F0和F分別表示不存在和存在猝滅劑時(shí)生物大分子的熒光強(qiáng)度;KSV為Stern-Volmer猝滅常數(shù);[Q]為猝滅劑的濃度;Kq為生物大分子的猝滅速率常數(shù),它反映了體系中分子的彼此擴(kuò)散和相互碰撞對(duì)生物大分子熒光壽命衰減速率的影響;τ0為不存在猝滅劑時(shí)熒光分子的平均壽命,生物大分子的平均壽命約為10-8s[7]。
以F0/F對(duì)[Q]作圖(如圖2所示),根據(jù)方程(1)算出4個(gè)溫度下的猝滅常數(shù),結(jié)果列于表1。
圖2 4個(gè)不同溫度下的Stern-Volmer關(guān)系圖(pH=7.40)
表1 4個(gè)不同溫度下 DCP與 HSA相互作用的Stern-Volmer猝滅常數(shù)(pH=7.40)
由表1可知,KSV隨溫度的升高呈減小趨勢,并且4個(gè)溫度下相應(yīng)的Kq值都遠(yuǎn)大于生物大分子的最大分散碰撞猝滅速率常數(shù)(2.0×1010L·mol-1·s-1)[8]。這初步表明DCP對(duì)HSA的熒光猝滅為形成復(fù)合物所引起的靜態(tài)猝滅。
動(dòng)態(tài)猝滅只影響熒光分子的激發(fā)態(tài),不會(huì)改變熒光體的吸收光譜,而在靜態(tài)猝滅過程中,基態(tài)配合物的形成會(huì)導(dǎo)致熒光體吸收光譜的改變。所以通過觀察加入藥物前后HSA吸收光譜有無改變,可以判別猝滅類型。分別測定DCP、HSA和DCP-HSA的紫外可見吸收光譜,見圖3。
A.c(DCP)= 2.0×10-6mol·L-1 B.c(HSA) = 2.0×10-6mol ·L-1 C.c(HSA)=c(DCP)=2.0×10-6mol·L-1(1∶1)
由圖3可知,HSA的吸收光譜在加入DCP前后明顯不同(曲線B和曲線C),進(jìn)一步證明DCP對(duì)HSA的猝滅過程為靜態(tài)猝滅。
對(duì)于靜態(tài)猝滅,可用修正的Stern-Volmer方程[9][式(2)]對(duì)猝滅數(shù)據(jù)作進(jìn)一步分析:
F0/(F0-F)=1/(faKa[Q])+1/fa
(2)
式中:(F0-F)為加入猝滅劑前后熒光強(qiáng)度的差值;fa為熒光基團(tuán)可接近猝滅劑的部分(分?jǐn)?shù));Ka為有效猝滅常數(shù),它近似于DCP-HSA相互作用的結(jié)合常數(shù)。
以F0/(F0-F)對(duì)1/[Q]作圖,如圖4所示,根據(jù)方程(2)算出4個(gè)溫度下的有效猝滅常數(shù),結(jié)果列于表2。
圖4 4個(gè)不同溫度下修正的Stern-Volmer曲線(pH=7.40)
表2 修正的Stern-Volmer方程的有效猝滅常數(shù)與DCP-HSA體系的相關(guān)熱力學(xué)參數(shù)
比較表1和表2數(shù)據(jù)可知,Ka隨溫度的變化趨勢與KSV一致,說明DCP與HSA的結(jié)合過程確實(shí)為生成復(fù)合物的靜態(tài)猝滅過程。
一般說來,小分子與生物大分子間的作用力主要包括疏水作用力、氫鍵、范德華力、靜電引力等[10]。假如焓變(ΔH)在所研究的溫度范圍內(nèi)變化不大,其值可近似為常數(shù),于是熵變(ΔS)可由van′t Hoff方程[式(3)]求出:
lnK=-ΔHθ/RT+ΔSθ/R
(3)
式中:K為相應(yīng)溫度下的結(jié)合常數(shù);R為氣體常數(shù)。
以lnK對(duì)1/T作圖(如圖5所示),由斜率可求出焓變(ΔH),由截距可求出熵變(ΔS)。反應(yīng)的自由能變?chǔ)由式(4)計(jì)算:
ΔGθ=ΔHθ-TΔSθ
(4)
圖5 HSA與DCP相互作用的范特霍夫曲線
各熱力學(xué)參數(shù)的計(jì)算結(jié)果列于表2。從表2可知,ΔGθ<0,說明該反應(yīng)是自發(fā)過程。Ross等[11]從大量蛋白質(zhì)和藥物反應(yīng)實(shí)驗(yàn)中總結(jié)出了熱力學(xué)參數(shù)值與作用力類型間的聯(lián)系:ΔH>0、ΔS>0為典型的疏水作用力;ΔH<0、ΔS<0為氫鍵和范德華力;ΔH<0、ΔS>0為靜電引力。由焓變(-6.336 kJ·mol-1)和熵變(75.12 J·mol-1·K-1)的值可知,DCP與HSA分子間主要作用力為靜電引力。
HSA分子中有三個(gè)相似的結(jié)構(gòu)域,分別稱為結(jié)構(gòu)域Ⅰ、結(jié)構(gòu)域Ⅱ、結(jié)構(gòu)域Ⅲ,每個(gè)結(jié)構(gòu)域又可分為A、B兩個(gè)子域。其中結(jié)構(gòu)子域ⅡA和ⅢA又被稱作SiteⅠ和SiteⅡ,它們是大多數(shù)藥物特異性的強(qiáng)結(jié)合位點(diǎn)[12]。在SiteⅠ結(jié)合的藥物通常是電荷位于分子中央的環(huán)狀結(jié)構(gòu)的陰離子,在SiteⅡ結(jié)合的藥物通常是電荷位于分子末端的鏈狀分子,如脂肪酸等。DCP由于分子中存在較大的共軛體系,電荷分布在共軛體系的環(huán)上,故其結(jié)合在HSA上SiteⅠ位點(diǎn)的可能性較大。研究表明,華法林(Warfarin)常作為HSA上SiteⅠ的位點(diǎn)標(biāo)記物[13]。進(jìn)行了DCP與HSA-Warfarin相互作用的位點(diǎn)競爭實(shí)驗(yàn),結(jié)果如圖6所示。
T=298 K;λex=320 nm;c(HSA) = 2.0×10-6mol·L-1;c(Warfarin) =5.0×10-6mol·L-1;c(DCP) (×10-5mol·L-1),A~I(xiàn):0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0,1.2,1.4,1.6
由圖6可知,當(dāng)激發(fā)波長為320 nm(華法林的最大吸收峰處的波長)時(shí),Warfarin在390 nm附近有一個(gè)強(qiáng)的熒光發(fā)射峰,而DCP和HSA在390 nm附近的熒光強(qiáng)度幾乎為零。當(dāng)向Warfarin溶液中加入HSA溶液時(shí),Warfarin的熒光強(qiáng)度急劇增強(qiáng),且最大發(fā)射波長明顯藍(lán)移(曲線A)。隨著DCP不斷加入HSA-Warfarin混合溶液中,該體系的熒光強(qiáng)度逐漸降低且最大發(fā)射波長紅移(曲線B~I(xiàn))。這表明,隨著DCP的加入,體系的熒光圖譜逐漸向著只含有Warfarin時(shí)的熒光圖譜靠近。即DCP取代了Warfarin在HSA上的結(jié)合位點(diǎn),說明DCP在HSA上的結(jié)合位置為SiteⅠ。
2.4.1 圓二色譜
DCP對(duì)HSA二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響可以用圓二色譜研究。測定室溫條件下HSA和DCP-HSA體系的圓二色譜,并用MRE值來分析圓二色譜可以求出HSA中α-螺旋結(jié)構(gòu)的含量,結(jié)果見圖7。
c(HSA) = 2.0×10-6mol ·L-1;c(DCP)(×10-6mol·L-1),A~C:0,8.0,20.0
由圖7可知,在209 nm和222 nm處出現(xiàn)了兩個(gè)負(fù)的特征肩峰譜帶,這是HSA中α-螺旋結(jié)構(gòu)的特征峰[14]。游離態(tài)的HSA中,α-螺旋結(jié)構(gòu)含量為58.85%,當(dāng)HSA與DCP的濃度比達(dá)到1∶10時(shí),α-螺旋結(jié)構(gòu)含量降至54.24%,說明DCP與蛋白質(zhì)多肽主鏈的氨基酸殘基結(jié)合,破壞了蛋白質(zhì)的氫鍵網(wǎng),使HSA的二級(jí)結(jié)構(gòu)有所伸展。雖然DCP的加入導(dǎo)致HSA兩個(gè)負(fù)的肩峰帶強(qiáng)度減小,但峰形和峰位并未改變,表明DCP雖對(duì)HSA的二級(jí)結(jié)構(gòu)有一定的影響,但α-螺旋結(jié)構(gòu)仍占主導(dǎo)地位。
2.4.2 三維熒光光譜
三維熒光光譜不僅可以全面展現(xiàn)待測樣品的熒光信息,還可以用來研究蛋白質(zhì)構(gòu)象的變化。圖8為HSA和DCP-HSA體系的三維熒光光譜,相關(guān)的特征參數(shù)列于表3。
圖8中,峰a是瑞利散射峰(λex=λem)[15],加入DCP后其熒光強(qiáng)度有所增加,原因可能是DCP-HSA復(fù)合物的生成導(dǎo)致溶液中溶質(zhì)的粒徑增大,散射效應(yīng)增強(qiáng)。峰b是二級(jí)散射峰(λem=2λex)。峰1(λex=285.0 nm,λem=349.0 nm)顯示了色氨酸和酪氨酸殘基的光譜行為,是研究熒光猝滅時(shí)的主熒光峰。峰2(λex=230.0 nm,λem=347.5 nm)是一個(gè)新的強(qiáng)熒光峰,它揭示了蛋白質(zhì)多肽鏈結(jié)構(gòu)的熒光特性,其熒光強(qiáng)度與蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化密切相關(guān)[15]。
c(HSA) (×10-6mol·L-1),A:2.0,B:2.0;c(DCP) (×10-6mol·L-1),A:0,B:2.0
表3 HSA和DCP-HSA復(fù)合物的三維熒光光譜特征
從表3可以看出,加入DCP前后峰2的熒光強(qiáng)度發(fā)生了明顯猝滅,表明加入DCP后,蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)發(fā)生了很大改變,該結(jié)論與圓二色譜的分析結(jié)果相符。由此可以得出:DCP與HSA的相互作用使蛋白質(zhì)的多肽鏈更加舒展,構(gòu)象發(fā)生改變,以前包埋在圓筒內(nèi)的疏水腔暴露出來,即DCP與HSA的相互作用使HSA的構(gòu)象和微環(huán)境發(fā)生了改變。
用一系列熒光方法對(duì)DCP與HSA相互作用進(jìn)行了分析。由熒光光譜和紫外可見吸收光譜分析可知,該反應(yīng)是形成復(fù)合物的靜態(tài)猝滅過程。根據(jù)van′t Hoff方程求得的不同溫度下的熱力學(xué)參數(shù)推斷出靜電引力是維持DCP-HSA復(fù)合物穩(wěn)定的主要作用力。ΔGθ<0,表明該反應(yīng)能自發(fā)進(jìn)行。此外,DCP在HSA的SiteⅠ位發(fā)生了較強(qiáng)的結(jié)合。圓二色譜和三維熒光光譜分析發(fā)現(xiàn),加入DCP之后,HSA中α-螺旋結(jié)構(gòu)的含量減少,肽鏈有所伸展,HSA的構(gòu)象和所處微環(huán)境發(fā)生了變化。
[1] Sathishkumar M,Binupriya A R,Kavitha D,et al.Adsorption potential of maize cob carbon for 2,4-dichlorophenol removal from aqueous solutions:Equilibrium,kinetics and thermodynamics modeling[J].Chemical Engineering Journal,2009,147(2-3):265-271.
[2] Li N,Mei Z,Ding S G.2,4-Dichlorophenol sorption on cyclodextrin polymers[J].Journal of Inclusion Phenomena and Macrocyclic Chemistry,2010,68(1-2):123-129.
[3] 嚴(yán)贊開,陳東丹.二氫楊梅素鋅與牛血清白蛋白的相互作用[J].化學(xué)與生物工程,2010,27(3):60-62.
[4] Zhang Y Z,Dai J,Xiang X,et al.Studies on the interaction between benzidine and bovine serum albumin by spectroscopic methods[J].Molecular Biology Reports,2010,37(3):1541-1549.
[5] Lu Z X,Cui T,Shi Q L.Applications of circular dichroism and optical rotatory dispersion[J].Molecular Biology,1987:79-82.
[6] 許金鉤,王尊本.熒光分析法(第三版)[M].北京:科學(xué)出版社,2006:6-7.
[7] Lakowicz J R,Weber G.Quenching of fluorescence by oxygen.A probe for structural fluctuations in macromolecules[J].Biochemistry,1973,12(21):4161-4170.
[8] Eftink M R,Ghiron C A.Fluorescence quenching studies with proteins[J].Analytical Biochemistry,1981,114(2):199-227.
[9] Sherwin L S.Solute perturbation of protein fluorescence.The quenching of the tryptophyl fluorescence of model compounds and of lysozyme by iodide ion[J].Biochemistry,1971,10(17):3254-3263.
[10] Leckband D.Measuring the forces that control protein interactions[J].Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure,2000,29(1):1-26.
[11] Ross P D,Subramanian S.Thermodynamic of protein association reactions:Forces contributing to stability[J].Biochemistry,1981,20(11):3096-3102.
[12] Kang J,Liu Y,Xie M X,et al.Interactions of human serum albumin with chlorogenic acid and ferulic acid[J].Biochimica et Biophysica Acta,2004,1674(2):205-214.
[13] He X M,Carter D C.Atomic structure and chemistry of human serum albumin[J].Nature,1992,358(6383):209-215.
[14] Liu J Q,Tian J N,Tian X,et al.Interaction of isofraxidin with human serum albumin[J].Bioorganic & Medicinal Chemistry,2004,12(2):469-474.
[15] Zhang Y Z,Zhou B,Liu Y X,et al.Fluorescence study on the interaction of bovine serum albumin withp-aminoazobenzene[J].Journal of Fluorescence,2008,18(1):109-118.