許龍巖 袁慕云 凌莉 黃華軍 鄒志飛
(廣東出入境檢驗(yàn)檢疫局 廣東廣州 510623)
經(jīng)典的副溶血性弧菌(Vibrio Parahemolyticus,VP)分離培養(yǎng)和鑒定需要1-2周時(shí)間,人力物力花費(fèi)大,不適應(yīng)實(shí)際檢驗(yàn)工作的需要。隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,分子水平上的分型與診斷方法以其敏感性高、特異性強(qiáng)、分型率和分辨率佳的優(yōu)點(diǎn),逐漸取代了傳統(tǒng)的表型分型技術(shù),在微生物的分型與診斷中發(fā)揮巨大的作用[1]。DiversiLab系統(tǒng)(DVL)是以基因外重復(fù)回文序列-PCR(Repetitive Extragenic Palindromic- PCR,REP-PCR)技術(shù)為原理的自動(dòng)化分子分型系統(tǒng),已應(yīng)用于原核和真核微生物的分子分型,包括具有重要流行病學(xué)意義的微生物如不動(dòng)桿菌、肺炎鏈球菌、結(jié)核分枝桿菌和曲霉[2]。本研究用DVL系統(tǒng)對(duì)近幾年從食品中分離的21株VP進(jìn)行REP-PCR分子分型,掌握其在食品中的分子型別,并與PFGE結(jié)果相比較,探討其對(duì)VP的分型能力,為VP的快速分型和溯源提供技術(shù)基礎(chǔ)。
2.1.1 試驗(yàn)菌株
食品中分離的VP 21株,為本實(shí)驗(yàn)室和中國(guó)檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院食品所保存菌株,均用API 20E和VITEK2確認(rèn)為VP,菌株信息見表1。PFGE分子量標(biāo)準(zhǔn)沙門氏菌H9812為本實(shí)驗(yàn)室保存菌株。
2.1.2 主要儀器和試劑
DVL系統(tǒng)、REP-PCR試劑盒及微流體芯片:法國(guó)梅里埃公司;
PTC-200型PCR儀、CHEF MAPPER脈沖場(chǎng)電泳儀、Gel Doc XR凝膠成像系統(tǒng):美國(guó)Biorad公司;
一次性血瓊脂平板:廣州環(huán)凱公司。
2.2.1 DNA 提取
用接種環(huán)刮取血平板上分離純化的VP菌落,使用REP-PCR配套核酸提取試劑盒,按照廠家說明書推薦步驟提取 DNA,DNA濃度控制在25-50ng/uL。
2.2.2 REP -PCR 分型
以提取的VP DNA為模版,使用DVL配套的REP-PCR試劑盒進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR循環(huán)參數(shù)為:94℃ 2min,94℃30s,50℃30s,70℃90s,35 個(gè)循環(huán),70℃ 3min,反應(yīng)體積為25uL。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物注入微流體芯片放入DVL系統(tǒng)進(jìn)行電泳。DVL系統(tǒng)自動(dòng)生成分析報(bào)告,包括聚類分析樹狀圖、凝膠圖像虛擬圖、矩陣圖。
2.2.3 PFGE 分型
21株VP中選擇 VP1、VP3、VP5、VP8、VP9、VP10、VP16,共7株進(jìn)行 PFGE分型,方法按照文獻(xiàn)報(bào)道[3]進(jìn)行,限制性內(nèi)切酶用NotⅠ。電泳條件為起始轉(zhuǎn)換時(shí)間為10.0s,最終轉(zhuǎn)換時(shí)間為 32.5s,電泳時(shí)間18h。分子量標(biāo)準(zhǔn)沙門氏菌H9812的PFGE分型按照文獻(xiàn)報(bào)道[4]進(jìn)行。
DVL系統(tǒng)將21株VP分為16個(gè)群,菌株之間的相似度在64.5% -99.1%,VP21、VP10分布在1群,VP1、VP7分布在 2群,VP2、VP4在 3群,VP3、VP22在 11群,VP6、VP12在 15群,VP23、VP5、VP15、VP18、VP16、VP14、VP8、VP13、VP14、VP9、VP11分別分布在4群、5群、6群、7群、8群、9群、10群、12群、13群、14群、16群,詳見圖1。圖1顯示,分離自相同地區(qū)、相同食品中的VP分在同一個(gè)群。如VP1、VP7分離自廣東無頭凍蝦,2株菌分在2群;VP2、VP4分離自廣東出口凍蝦仁,2株菌分在3群;VP6、VP12分離自廣東地區(qū)凍蝦仁,2株菌株分在15群。但也有發(fā)現(xiàn)分離自不同地區(qū)、不同食品中的VP分在同一個(gè)群中。如VP21分離自孟加拉凍墨魚,VP10分離自廣東蝦,2株菌株分在1群;VP3、VP22分別分離自廣東熟鳳尾蝦和生蠔,2株菌株分在11群。
7株VP用NotⅠ酶切PFGE電泳后,共有7個(gè)不同的PFGE型別,菌株之間相似度27.07% -84.37%,見圖2。按照PFGE結(jié)果判斷標(biāo)準(zhǔn),7株VP是相互不相關(guān)的菌株;而 VP1、VP3、VP5、VP8、VP9、VP10、VP16在REP-PCR樹狀圖上分別分布在2、11、5、10、14、1、8 不同的 7 個(gè)群中。
REP-PCR是以細(xì)菌DNA中串聯(lián)重復(fù)序列為引物,對(duì)細(xì)菌基因組DNA進(jìn)行擴(kuò)增,得到指紋圖譜并進(jìn)行分析。WONG等研究評(píng)價(jià)了REP-PCR對(duì)副溶血性弧菌的分型方法,其分型能力與PAGE相當(dāng),優(yōu)于核糖體分型方法,但其簡(jiǎn)捷性和實(shí)用性是PAGE 方法所無可比擬的[5,6]。DVL 是自動(dòng)化的REP-PCR分型系統(tǒng),該系統(tǒng)使用一個(gè)標(biāo)準(zhǔn)化算法,可以在4h內(nèi)自動(dòng)化分析13個(gè)樣品,包括獲得聚類分析樹狀圖、凝膠圖像虛擬圖、矩陣圖等報(bào)告,克服了手動(dòng)REP-PCR實(shí)驗(yàn)室間重復(fù)性差,周轉(zhuǎn)時(shí)間長(zhǎng),并且需要瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行DNA分離和檢測(cè)的缺點(diǎn),加快了細(xì)菌分子流行病學(xué)研究[7]。
圖1 21株VP REP-PCR分型樹狀圖和矩陣圖
圖2 7株VP PFGE分型聚類分析樹狀圖
本研究用DVL系統(tǒng)對(duì)食品中分離的21株VP進(jìn)行REP-PCR分型,結(jié)果21株VP分成16個(gè)群,REP-PCR型別分散,表現(xiàn)出較大的遺傳多樣性。這可能與樣品來自不同地區(qū)和不同廠家,而且分離菌株的年份相隔較遠(yuǎn)有關(guān)。同時(shí)也發(fā)現(xiàn),分別從相同食品中分離的VP1和 VP7、VP2和VP4、VP6和VP12,在聚類圖上分別分在2、3、15群,而且菌株之間有不可分辨的REP-PCR型。這一結(jié)果提示,來自相同食品中的VP是否均有不可分辨的REPPCR型,DVL系統(tǒng)能否應(yīng)用于食品中VP污染源的追蹤、溯源,這有待于今后的進(jìn)一步研究。
DVL系統(tǒng)對(duì)于REP-PCR分型結(jié)果的解釋,廠家建議的判斷標(biāo)準(zhǔn)是:相似性大于97%,沒有條帶的差異,判斷為不可辨別的菌株;相似性大于95%,有1-2條不同的條帶,判斷為相似菌株;相似性小于95%,有多條不同的條帶,則判斷為不同菌株。但研究發(fā)現(xiàn),在實(shí)際工作中對(duì)菌株進(jìn)行分群時(shí),要根據(jù)產(chǎn)生的電泳條帶比較,在97%的水平上適當(dāng)上調(diào)或下調(diào)相似性百分?jǐn)?shù),本研究是按上述原則,在菌株之間相似性為96.6%水平上對(duì)VP進(jìn)行了分群。
雖然上述DVL系統(tǒng)的判斷標(biāo)準(zhǔn)不夠明確,但卻具有簡(jiǎn)便、快速的特點(diǎn),可廣泛應(yīng)用于分支桿菌、腦膜炎奈瑟菌、鮑曼不動(dòng)桿菌的分子分型,為臨床實(shí)驗(yàn)室提供了一個(gè)可靠的 REP-PCR 分型系統(tǒng)[8,9]。B.healy等(阪崎腸桿菌的新分類名)用DVL系統(tǒng)和PFGE對(duì) Cronocacter菌屬進(jìn)行分型比較中發(fā)現(xiàn),DVL系統(tǒng)把 C.malonatius和 C.dublinensis分在不同的群中進(jìn)行REP-PCR聚類分析,比PFGE更能分辨一些分類群中菌株的關(guān)系,其種群分類能力比PFGE優(yōu)勝[10]。本研究7株VP的 PFGE分型結(jié)果分析發(fā)現(xiàn),7株P(guān)FGE型別不同、按PFGE判斷標(biāo)準(zhǔn)彼此不相關(guān)的VP,在REP-PCR樹狀圖上分別分布在7個(gè)不同的群中,而且7株VP按照DVL系統(tǒng)的判斷標(biāo)準(zhǔn)也是不同的菌株,表明DVL系統(tǒng)在VP的分群能力和分辨率上與PFGE分型結(jié)果相似。
總之,在VP的分型方法中,DVL系統(tǒng)是一種快速、簡(jiǎn)便的分型方法,其種群分類能力和分辨率也比較高,可應(yīng)用于VP的快速分型和溯源。
[1]董雪,王秋雨,金莉莉.副溶血性弧菌分子分型和檢測(cè)研究進(jìn)展[J].中國(guó)衛(wèi)生檢驗(yàn)雜志,2008,18(2):379 -381.
[2]T L Ross,W G Merz,M Farkosh.Comparison of an automated repetitive sequence-based PCR microbial typing system to pulsed-field gel electrophoresis for analysis of outbreaks of methicillinresistant staphylococcus aureus[J].Journal of clinical microbiology,2005,43(11):5642 -5647.
[3]Cooper K L,Luey C K,Bird M,et al.Development and validation of a pulse net standardized pulsed2field gel electrohoresis protocol for subtyping of vibrio cholerae[J].Foodborne Patbog Dis,2006,3(1):51 -58.
[4]許龍巖,袁幕云,劉靜宇,等.進(jìn)出口食品中沙門氏菌PFGE分型及耐藥研究[J].檢驗(yàn)檢疫科學(xué),2010,20(2):14 -17.
[5]WONG H C,LIN C H.Evaluation of Typing of Vibrio parahaemolyticus by Three PCR Methods Using Specific Primers[J].J Clin Microbiol,2001,39(12):4233-4240.
[6]金莉莉,董雪,王秋雨.副溶血性弧菌重復(fù)序列-PCR分型研究[J].微生物學(xué)通報(bào),2008,35(3):389-394.
[7]Healy M,J Huong,T Bittner,et al.Microbial DNA typing by au-tomated repetitive-sequence-based PCR[J].J Clin Microbiol,2005,43:199 -207.
[8]Cangelosi G A,R J Freeman,K N Lewis,et al.Evaluation of a high-throughput repetitive-sequence-based PCR system for DNA fingerprinting of Mycobacterium tuberculosis and Mycobacterium avium complex strains[J].J Clin Microbiol,2004,42:2685-2693.
[9]曲燕燕,王文飛,周華,等.DiversiLab系統(tǒng)鮑曼不動(dòng)桿菌基因分型可行性研究[J].中華檢醫(yī)學(xué)雜志,2010,33(5):425-429.
[10]B Healy,N Mullane,V Collin,et al.Evaluation of an automated repetitive sequence-based PCR system for subtyping Enterobacter sakazakii[J].Journal of Food Protection,2008,71(7):1372-1378.