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      IAA處理對(duì)擬南芥葉原生質(zhì)體分離的影響

      2011-07-09 13:00:24趙嚴(yán)偉黃志剛李合松
      湖南農(nóng)業(yè)科學(xué) 2011年13期
      關(guān)鍵詞:原生質(zhì)離析擬南芥

      趙嚴(yán)偉,黃志剛,李合松

      (湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)生物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410128)

      原生質(zhì)體是重要的生物材料,廣泛地應(yīng)用于植物學(xué)研究的各個(gè)方面,如細(xì)胞雜交、亞細(xì)胞定位、基因瞬時(shí)表達(dá)、啟動(dòng)子分析等[1]。但原生質(zhì)體在分離過(guò)程中受到的酶解壓力可能影響其重要的生理狀態(tài),如形態(tài)改變、再生能力喪失等[2]。酶解壓力主要由酶解時(shí)間和酶濃度造成,時(shí)間越長(zhǎng)、濃度越高,壓力越大[3]。因此,這對(duì)在較小的壓力下得到大量的有活力原生質(zhì)體具有一定意義,使其能更好地應(yīng)用于后續(xù)研究工作,提高試驗(yàn)成功率。

      植物激素中的IAA可通過(guò)激活細(xì)胞壁水解酶,加速木葡聚糖的降解[4],從而有可能減少酶處理的濃度與時(shí)間。前人的研究主要集中于原有的分離純化條件中諸因素的優(yōu)化[3],或通過(guò)施加抗壞血酸(ASA)、過(guò)氧化物酶(POD)和過(guò)氧化氫酶(CAT)等[5]抑制膜損傷來(lái)提高原生質(zhì)體的數(shù)量與活力,而對(duì)植物激素應(yīng)用于原生質(zhì)體分離的研究較少。筆者以擬南芥為材料,主要通過(guò)不同濃度的IAA處理擬南芥葉片,探討其對(duì)原生質(zhì)體分離的影響以及IAA處理是否有利于降低酶解壓力,分析最合適的IAA施用濃度、酶解時(shí)間與酶濃度。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 供試材料 哥倫比亞野生型擬南芥(Arabidopsis accessions:Col-0),種子由湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)植物激素重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室提供。

      種子經(jīng)4℃春化處理3 d,播種于培養(yǎng)基質(zhì)(營(yíng)養(yǎng)土∶蛭石=1∶3)中,光照培養(yǎng)箱培養(yǎng),培養(yǎng)條件為:溫度22℃,光/暗周期12/12 h,濕度70%。取生長(zhǎng)35 d叢生葉片的第7、8、9片平展葉為試驗(yàn)材料。

      1.1.2 試 劑 纖維素酶R-10,離析酶R-10,MES,IAA 等。

      1.2 方法

      1.2.1 IAA處理 在分離原生質(zhì)體2 h前,對(duì)分離材料擬南芥葉片表面噴灑IAA。

      1.2.2 原生質(zhì)體分離 試驗(yàn)方法基本參照Yoo等[6]的方法,材料鮮重與酶液體積比例為1∶10?;静襟E:將生長(zhǎng)狀態(tài)良好的擬南芥葉片切成2 mm左右寬度的細(xì)絲后立即浸入含1.0%纖維素酶R-10及0.2%離析酶R-10的酶解液中,23℃黑暗靜置4 h,細(xì)胞篩過(guò)濾,100 g×1 min離心純化2次,棄上清液。每個(gè)處理的材料量均為50 mg擬南芥葉片,每個(gè)處理3次重復(fù)。

      1.2.3 細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù) 計(jì)數(shù)方法及規(guī)則參照郭軍英[7]的方法,中性紅(0.01%)染色鑒定原生質(zhì)體的活力[8]。

      1.3 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

      1.3.1 不同酶解方式下IAA處理對(duì)原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響 為探明IAA處理對(duì)原生質(zhì)體分離的影響是否與酶的種類(lèi)有關(guān),設(shè)置了雙酶混合處理與纖維素酶+離析酶、離析酶+纖維素酶兩種單酶依次處理。IAA處理濃度為10-5mol/L。

      1.3.2 不同濃度IAA處理對(duì)原生質(zhì)體數(shù)量與活力的影響選用L9(34)正交設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)(表1),研究纖維素酶R-10濃度、果膠酶R-10濃度與IAA處理濃度對(duì)擬南芥葉肉細(xì)胞原生質(zhì)體分離效果的影響。

      1.3.3 不同酶解時(shí)間下IAA處理對(duì)原生質(zhì)體產(chǎn)量與活力的影響 選用0.6%纖維素酶+0.2%離析酶+10-7mol/L IAA組合作為IAA處理組,比較IAA處理組與對(duì)照1(0.6%纖維素酶+0.2%離析酶)及對(duì)照2(1.0%纖維素酶+0.2%離析酶)在1~4 h的原生質(zhì)體產(chǎn)量與活力差異,分析IAA對(duì)原生質(zhì)體分離的作用與酶解時(shí)間的關(guān)系。

      表1 正交因素水平表

      2 結(jié)果與分析

      2.1 不同酶解方式下IAA處理對(duì)原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響

      從表2看出,不同酶解方式對(duì)IAA處理的反應(yīng)不同。雙酶混合處理下原生質(zhì)體數(shù)量顯著高于單酶依次處理。10-5mol/L IAA處理對(duì)原生質(zhì)體分離有顯著影響,降低了原生質(zhì)體數(shù)量40%左右,只有纖維素酶在前的單酶依次處理中IAA組原生質(zhì)體數(shù)量高于對(duì)照組,約是后者的2.4倍。

      表2 不同酶解方式下IAA處理對(duì)原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響

      2.2 不同濃度IAA處理對(duì)原生質(zhì)體數(shù)量與活力的影響

      如表3、表4所示,IAA濃度對(duì)活力原生質(zhì)體數(shù)量有顯著影響,影響程度為IAA濃度>纖維素酶R-10濃度>離析酶R-10濃度。雙因素交互作用方差分析表明(數(shù)據(jù)未顯示)三個(gè)因素間無(wú)相互作用。表5表明A1B2C2為最佳組合,在正交試驗(yàn)中,即0.6%纖維素酶+0.2%離析酶+10-7mol/L IAA。A因素間差異不顯著,B因素間差異不顯著,C3與C1和C2有顯著性差異(表5)。

      表3 擬南芥原生質(zhì)體分離正交試驗(yàn)結(jié)果

      表4 無(wú)相互作用的方差分析表

      表5 三因素均數(shù)表

      2.3 不同酶解時(shí)間下IAA處理對(duì)原生質(zhì)體產(chǎn)量與活力的影響

      表6表明,IAA處理后的擬南芥葉片能在較少的纖維素酶濃度下(0.6%)得到大量的有活力的原生質(zhì)體,與對(duì)照1相比提高了31.1%(4 h),與正常的對(duì)照組2相比,IAA處理組一直保持較高的活力,且在酶解1~3 h后的原生質(zhì)體數(shù)量高于對(duì)照2。

      表6 不同酶解時(shí)間下IAA處理對(duì)原生質(zhì)體產(chǎn)量與活力的影響

      3 討論與結(jié)論

      試驗(yàn)結(jié)果表明,IAA對(duì)原生質(zhì)體分離有較大影響,且對(duì)纖維素酶R-10與離析酶R-10的影響不同,在10-5mol/L IAA處理葉片后,纖維素酶先酶解的材料與離析酶先酶解的材料原生質(zhì)體數(shù)量分別比對(duì)照組提高了1.4倍和降低了40%左右,表明IAA可能主要對(duì)纖維素酶起作用。正交試驗(yàn)分析表明,0.6%纖維素酶+0.2%離析酶+0.1 μmol/L IAA是較好的酶解組合,能在3 h內(nèi)獲得大量有活力的原生質(zhì)體,且在4 h內(nèi)的活力均高于1.0%纖維素酶+0.2%離析酶組合,同時(shí)與未經(jīng)IAA處理的對(duì)照1(0.6%纖維素酶+0.2%離析酶)相比,原生質(zhì)體數(shù)量有較大提高,3 h時(shí)差異最大,原生質(zhì)體數(shù)量提高了約1.3倍,表明這種提高是由IAA處理引起的。方差分析發(fā)現(xiàn),IAA濃度對(duì)活力原生質(zhì)體數(shù)量有顯著影響,但纖維素酶濃度對(duì)其無(wú)顯著影響,且三因素間無(wú)相互作用,暗示IAA作用的主要目標(biāo)可能不是外施的纖維素酶,而是激發(fā)了細(xì)胞壁上本身存在的纖維素酶。

      綜上所述,IAA處理可提高酶解反應(yīng)的速度。合適的IAA處理濃度可在一定程度上減少酶的使用濃度及酶解時(shí)間,從而降低酶解壓力,提高原生質(zhì)體活力。

      10-7mol/L的IAA能有效提高活力原生質(zhì)體數(shù)量,而過(guò)高的IAA施用濃度可能由于過(guò)度激發(fā)壁上纖維素酶功能,而造成原生質(zhì)體的破裂。

      [1]Wu F H,Shen S C,Lee L Y,et al.Tape-Arabidopsis Sandwich-a simpler Arabidopsis protoplast isolation method[J].Plant Methods,2009,5(16):1-10.

      [2]Ana L O T,Lisete C D,José E B P P,et al.Protoplast production from napier grass and pearl millet triploid hybrids[J].Scientific Electronic Library Online,2010,34(5):1219-1223.

      [3]喬永旭,張永平,王桂蘭,等.蝴蝶蘭原生質(zhì)體提取方法的優(yōu)化[J].植物生理學(xué)通訊,2008,44(6):1177-1180.

      [4]Daniel J C.Growth of the plant cell wall[J].Nature Reviews Molecular Cell Biology,2005,6:850-861.

      [5]傅明輝,莊東紅.抗壞血酸對(duì)花生原生質(zhì)體分離過(guò)程中膜損傷的保護(hù)作用[J].亞熱帶植物科學(xué),2001,30(3):7-10.

      [6]Sang D Y,Young H C,Jen S,et al.Arabidopsis mesophyll protoplasts:a versatile cell system for transient gene expression analysis[J].Nature Protocols,2007,2(7):1563-1560.

      [7]郭軍英.關(guān)于血球計(jì)數(shù)板的使用及注意事項(xiàng)[J].教學(xué)儀器與實(shí)驗(yàn),2009,(4):26-28.

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