宗兆文,張連陽,沈 岳,郭慶山,任永川,冉新澤,史春夢,程天民
(1.第三軍醫(yī)大學大坪醫(yī)院/野戰(zhàn)外科研究所全軍戰(zhàn)創(chuàng)傷中心創(chuàng)傷科,重慶400042;2.第三軍醫(yī)大學全軍復合傷研究所國家創(chuàng)傷、燒傷與復合傷重點實驗室復合傷分室,重慶400038)
脊髓損傷(spinal cord injury)后的功能恢復是醫(yī)學研究的難點之一,其修復的主要策略包括減少脊髓損傷后的繼發(fā)性損傷,采用組織或細胞移植促進中樞神經(jīng)系統(tǒng)的可塑性變化以及應用刺激神經(jīng)生長的因子和(或)阻斷抑制軸突生長的物質(zhì)以促進受損軸突的再生等[1-2]。腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)是研究最為廣泛的神經(jīng)營養(yǎng)素之一,在神經(jīng)系統(tǒng)中的作用廣泛而強大。大量的實驗證實,BDNF可以保護脊髓運動神經(jīng)元,并可促進紅核脊髓束和皮質(zhì)脊髓束軸突再生或出芽[3-4]。而干細胞移植被認為是修復脊髓功能損傷最有前景的方法之一,本課題前期實驗發(fā)現(xiàn)真皮多能干細胞(dermal multipotent stem cell,dMSCs)可在體外被誘導為神經(jīng)元和膠質(zhì)細胞[5-7],其他學者也證實dMSCs移植后可促進脊髓損傷后的功能恢復[8]。為了同時發(fā)揮dMSCs和BDNF的修復效果,本研究觀察了BDNF腺病毒表達載體(adenovirus vector of BDNF,Adv-BDNF)感染的dMSCs移植后對脊髓損傷的修復效果,報道如下。
1.1 動物和主要試劑 Wistar大鼠購自第三軍醫(yī)大學大坪醫(yī)院動物所。Adv-BDNF由本實驗室張正豐博士構建并饋贈。兔抗鼠BDNF多克隆抗體和異硫氰酸熒光素(fluoresceine isothiocyanate,FITC)結(jié)合的第二抗體購自Sigma-Aldrich公司。免疫組化試劑盒購自Boster公司。細胞培養(yǎng)用培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)基及血清等購自Hyclone公司。
1.2 dMSCs的分離培養(yǎng)與轉(zhuǎn)染 參照本研究所建立的早期貼壁法進行dMSCs的分離培養(yǎng)和鑒定[9]。方法簡述如下:新生1 d Wistar大鼠,引頸處死,乙醇消毒,剪取皮膚置于0.25%胰酶消化過夜;次日,用磷酸緩沖液(phosphate-buffered saline,PBS)清洗,去除表皮和皮下組織,將真皮組織剪成細胞碎片并吹打成細胞懸液,過濾并接種于培養(yǎng)瓶中;6 h后,棄培養(yǎng)液和懸浮細胞,繼續(xù)培養(yǎng)早期貼壁細胞;反復傳代至有集落樣細胞群體產(chǎn)生,按常規(guī)方法接種和選取細胞克隆,傳代備用;dMSCs移植前4 h向其培養(yǎng)基中加入0.2 mL第3代Adv-BDNF病毒原液(病毒滴度約為1.5×1010PFU/mL,PFU為plaque-forming unit,即空斑形成單位);繼續(xù)培養(yǎng)4 h后收集dMSCs,制成濃度為 1×107/mL的細胞懸液,備用。
1.3 建模、細胞移植與分組 成年Wistar大鼠72只采用改良Allen重物打擊法制作脊髓損傷模型[10],方法簡述如下:將麻醉后的大鼠俯臥位固定,顯露T10節(jié)段脊髓,用質(zhì)量20 g、打擊頭直徑2.5 mm的打擊器自2.5 cm高處自由落下,造成T10節(jié)段脊髓打擊傷。受傷大鼠隨機分為 A、B、C、D四組:A組接受Adv-BDNF感染的dMSCs移植(n=18),將 100 μ L感染Adv-BDNF的dM SCs懸液緩慢用微量注射器注入損傷脊髓處,注射完畢留針5 min以防細胞滲漏。B組接受未感染Adv-BDNF的 dMSCs移植(n=18)。C組接受單純 Adv-BDNF注射(n=18)。D組為單純脊髓損傷(n=18)。其中,B、C組的注射方式、部位、細胞密度及液體用量與A組相同。為防止膀胱感染,術后人工擠壓膀胱排尿,2次/天。
1.4 免疫熒光組織化學檢測 細胞移植后3 d和7 d,每組取6只大鼠引頸處死后取材,95%乙醇固定,常規(guī)制備5 μ m厚的脊髓石蠟切片,PBS漂洗3次,血清封閉后加兔抗鼠BDNF多克隆抗體,4℃孵育過夜。PBS漂洗3次后加熒光第二抗體,室溫孵育1 h。熒光顯微鏡觀察。
1.5 損傷脊髓局部凋亡細胞檢測 取傷后3 d大鼠脊髓,每組6只,常規(guī)消化、離心,冷PBS洗細胞 2次,加入預冷70%乙醇,4℃固定過夜。離心收集細胞,以1 mL的PBS洗滌細胞1次,加入 500 μ L 含 50 μ g/mL 溴 化乙錠 、100 μ g/mL RNA 酶A、0.2%Triton X-100的PBS,采用流式細胞儀檢測凋亡細胞的百分比。
1.6 行為學檢測 傷后7 d采用BBB(Basso,Beattie and Bresnahan locomotor rating scale)神經(jīng)行為學評分法評定大鼠的功能恢復情況[11-12],功能評價完畢,取材進行上述1.4步驟的免疫組織化學檢測。
1.7 統(tǒng)計學處理 采用SPSS11.0統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計分析,計量資料用±s表示,t檢驗進行組間分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 脊髓損傷后大鼠脊髓中BDNF的表達 BDNF陽性細胞呈綠色熒光。A組大鼠損傷的脊髓中有大量較強的綠色熒光,為BDNF陽性細胞,大部分呈長梭狀,少數(shù)為神經(jīng)元樣細胞(封2圖1 A),提示大部分BDNF陽性細胞為dMSCs,其余可能為少數(shù)dM SCs壞死崩解后釋放病毒感染脊髓損傷局部的神經(jīng)元或脊髓損傷引起局部反應而出現(xiàn)神經(jīng)元BDNF的陽性表達。C組大鼠局部可見大量BDNF陽性細胞,多為神經(jīng)元形狀(封2圖1 C),提示Adv-BDNF局部注射可有效地感染脊髓損傷局部的神經(jīng)細胞。B組和D組脊髓損傷局部BDNF陽性細胞數(shù)量明顯稀少(封2圖1 B、D)。傷后 7 d,A組和C組大鼠脊髓損傷局部BDNF陽性細胞數(shù)量無明顯減少,B組和D組陽性細胞數(shù)量也無明顯變化。
圖2 脊髓損傷7 d大鼠的BBB神經(jīng)行為學評分
2.2 脊髓損傷后大鼠脊髓中細胞的凋亡 脊髓損傷急性期(1~3 d)為局部細胞凋亡的高峰期,因此,本研究觀察脊髓損傷3 d時細胞的凋亡情況。結(jié)果顯示A組大鼠脊髓損傷局部細胞的凋亡率為(4.7±0.4)%,略低于C組(4.9±0.3)%,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),但其明顯低于 B組[(6.2±0.4)%](P<0.05)和D組[(6.7±0.5)%](P<0.05)。
2.3 BBB神經(jīng)行為學評分法對大鼠神經(jīng)功能的評價 傷后7 d A組大鼠神經(jīng)功能恢復最好,明顯優(yōu)于其他各組(P<0.05);B組和C組大鼠功能恢復相當,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),但二者均高于 D組(P<0.05)。見圖2。
干細胞移植被認為是修復脊髓損傷最有前景的方法之一。相對于神經(jīng)干細胞和胚胎干細胞,皮膚來源的干細胞移植具有取材方便、來源豐富、可進行自體移植等諸多優(yōu)點。目前,已經(jīng)從真皮中分離到包括dMSCs、皮膚源性前體細胞等多種干細胞,均可在適當?shù)臈l件下被誘導為神經(jīng)元或膠質(zhì)細胞,移植后可促進損傷的脊髓神經(jīng)功能恢復[8,13-14]。本研究的前期實驗顯示,dMSCs在體外可被誘導為神經(jīng)元和膠質(zhì)細胞,提示dMSCs可作為修復脊髓損傷的合適選擇。
使用神經(jīng)營養(yǎng)素是修復脊髓損傷的另一策略。BDNF是目前被證實的作用最強的神經(jīng)營養(yǎng)因子,可促進神經(jīng)元的存活以及受損紅核脊髓束和皮質(zhì)脊髓束軸突的再生或出芽[3-4],在脊髓損傷的修復中具有重要作用。為了同時發(fā)揮BDNF和dMSCs的作用,本研究采用腺病毒感染的方法用BDNF基因修飾dMSCs,然后將其移植到脊髓損傷局部,結(jié)果表明較單純dMSCs移植和單純BDNF基因修飾,接受Adv-BDNF感染的dMSCs移植能更好地促進神經(jīng)功能的恢復。
本研究初步探討了BDNF基因修飾dMSCs的移植對脊髓損傷的修復作用。結(jié)果表明BDNF基因修飾可減少脊髓損傷局部細胞的凋亡,對脊髓損傷后的二次損傷具有一定的預防作用。而dMSCs的作用可能不是通過減少局部細胞的凋亡來實現(xiàn),因為單純dMSCs移植組脊髓損傷局部細胞的凋亡率高于單純BDNF修飾組,但兩組大鼠的神經(jīng)功能恢復并無顯著差異,提示dMSCs對損傷脊髓功能恢復的促進還可能存在其他機制,如dMSCs在脊髓損傷局部分化為神經(jīng)元和膠質(zhì)細胞而參與損傷修復。BDNF基因修飾dMSCs移植還可能通過保護大腦皮層的投射神經(jīng)元(如皮質(zhì)脊髓束),使其免于細胞凋亡以及促進損傷軸突的再生[15],從而達到修復損傷的目的。這些可能機制還需進一步深入探討。
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