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    大腸癌線粒體DNA誘導NIH3T3細胞D-環(huán)突變的作用與機制

    2011-06-08 02:01:02姬宏莉姬宏娟馬永全
    實用醫(yī)藥雜志 2011年6期
    關鍵詞:大腸癌多態(tài)性線粒體

    姬宏莉,姬宏娟,馬永全,杜 芳,王 輝

    腫瘤的發(fā)生不僅取決于核內(nèi)遺傳物質(zhì),而且還與核外的線粒體DNA(mitochondrial DNA,mtDNA)密切相關[1,2]。mtDNA是細胞內(nèi)唯一的核外遺傳物質(zhì),具有可自主復制的DNA基因組。mtDNA是具有編碼區(qū)和非編碼區(qū)共16 569個堿基對的雙鏈閉環(huán)分子,其中編碼區(qū)含有37個基因,2種rRNA,22種tRNA和13種與線粒體氧化磷酸化有關的蛋白多肽基因;非編碼區(qū)由 1120bp(16025-576)的 D環(huán)(D-Loop)構成[3]。多項研究發(fā)現(xiàn)mtDNA的D環(huán)可能為mtDNA突變的熱點所在,但不同的實體腫瘤,有關該區(qū)突變的頻率報道存在明顯差異[4]。本實驗通過將大腸癌細胞突變的mtDNA片斷轉染NIH3T3細胞,觀察NIH3T3的突變和多態(tài)性變化,以便明確變異的mtDNA造成腫瘤發(fā)病的機制和作用。

    1 材料與方法

    1.1 材料 DMEM高糖培養(yǎng)基、0.25%胰蛋白酶購自美國Gibco公司;mtDNA提取試劑盒購自杭州V-gene生物科技公司;2×Pfu PCR MasterMix購自北京TianGene生物科技公司。Lipofection2000TM轉染試劑購自Invintrogen公司。

    1.2 實驗用細胞株及質(zhì)粒 ①NIH3T3細胞株購于南方醫(yī)院病理生理教研室;②大腸癌mtDNA的重組表達載體:在 pcDNA3.1(+)載體 BamH I,Xho I位點間插入1200bp的突變的大腸癌mtDNA的D環(huán)區(qū),命名為 pcDNA3.1(+)-Sw480 mtDNA,pcDNA3.1(+)-Lovo mtDNA,由本課題組構建。

    1.3 方法

    1.3.1 細胞培養(yǎng) NIH3T3細胞在37℃,5%CO2飽和濕度的孵育箱中培養(yǎng),培養(yǎng)基為含10%進口胎牛血清(GIBCO)的DMEM高糖培養(yǎng)基,隔天換液1次,每4~5 d用0.25%胰蛋白酶消化傳代培養(yǎng)。

    1.3.2 細胞轉染與篩選 轉染前24 h將處于對數(shù)生長期的NIH3T3細胞消化計數(shù),調(diào)整濃度為1×105個/ml,接種于六孔板中,用Lipofection2000TM將pcDNA3.1(+)-Sw480 mtDNA、pcDNA3.1(+)-Lovo mtDNA分別導入NIH3T3細胞,具體轉染操作過程參考 Invintrogen公司的Lipofection2000TM說明書及相關文獻[5]。置于37℃,5%CO2飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后更換無抗生素的含10%胎牛血清的DMEM 高糖培養(yǎng)液,48 h后用 G418 200 μg/ml篩選,2周后挑選單克隆細胞群落,用含G418 100 μg/ml的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。

    1.3.3 mtDNA的提取 用杭州V-gene試劑公司的mtDNA提取試劑盒,采取膜裂解和膜選擇結合DNA的技術分離mtDNA。

    1.3.4 PCR法擴增mtDNA D-loop 參照mtDNA D-loop的全長設計兩段引物并送上海博亞生物技術公司合成。Primer1 5’-tcgaattctttcatggggaagcaga tttgg-3’、Primer2 5’ -atggatccggaggtaagctacataaactg-3’,50 μl PCR 體 系 :mtDNA 4 μl、Primer1 (25 μmol/L)2 μl、Primer2 (25 μmol/L)2 μl、2×MasterMix 25 μl、ddH2O 17 μl。PCR 條件:預變性 94 ℃ 3 min、以下變性 94℃ 30 s、復性 56℃ 30 s、延伸 72℃1 min共33個循環(huán),結束延伸72℃ 5 min。并將PCR產(chǎn)物5 μl行1%瓊脂糖凝膠電泳。

    1.3.5 PCR產(chǎn)物直接測序 轉染不同重組質(zhì)粒NIH3T3/Sw480-mtDNA、pcDNA3.1(+)-Lovo mtDN的序列與未轉染的NIH3T3細胞及基因庫數(shù)據(jù)(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/viewer) 相比對。當轉染大腸癌mtDNA重組載體的NIH3T3細胞D環(huán)的核苷酸序列與NIH3T3細胞相同,但與基因庫記載的不同時,這種改變?yōu)槎鄳B(tài)性變化;當轉染大腸癌mtDNA重組載體的NIH3T3細胞D環(huán)的核苷酸序列與基因庫記載相同,但與NIH3T3細胞不同時,這種改變?yōu)槎鄳B(tài)性變化。發(fā)現(xiàn)突變后,為除外系統(tǒng)誤差,用 PCR重新擴增線粒體 D環(huán)區(qū),用不同的引物正反兩個方向再次測序以證實突變確實存在。

    2 結 果

    2.1 轉染細胞mtDNA D-loop的鑒定結果 取上述 PCR產(chǎn)物 5 μl行 1%瓊脂糖凝膠電泳,80 V,45 min,可見一條清晰的1.2 kb目的基因條帶 (圖1)。用Vilber Lourmat凝膠成像圖像分析儀分析圖像。并送上海博亞生物技術公司正反雙向測序。

    2.2 轉染細胞mtDNA D-loop測序變異結果 轉染不同重組質(zhì)粒 pcDNA3.1(+)-Sw480 mtDNA、pcDNA3.1(+)-Lovo mtDN的序列與未轉染的NIH3T3細胞及基因庫數(shù)據(jù)(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/viewer)相比對。分別檢測到轉染pcDNA3.1(+)-Sw480 mtDNA 的 NIH3T3細胞線粒體D環(huán)共有11個位點變化,包括5個突變,6個多態(tài)性變化,轉染 pcDNA3.1(+)-Lovo mtDN的NIH3T3細胞線粒體D環(huán)共有8個位點變化,包括3 個突變,5 個多態(tài)性變化(表1、2)。

    圖1 轉染前后NIH3T3細胞mtDNA D-loop電泳鑒定PCR結果

    表1 轉染pcDNA3.1(+)-Sw480 mtDNA的NIH3T3細胞線粒體D環(huán)區(qū)變化位點

    表2 轉染pcDNA3.1(+)-lovo mtDNA的NIH3T3細胞線粒體D環(huán)區(qū)變化位點

    3 討 論

    腫瘤的發(fā)生都是一個多因素作用,表現(xiàn)為多階段的復雜過程。線粒體 DNA的突變在腫瘤發(fā)病中的作用和機制的研究還處在起步階段。與cDNA相比,mtDNA更加脆弱,突變率更高。近來研究發(fā)現(xiàn)腫瘤的發(fā)生與線粒體DNA突變導致功能的改變密切相關。在大腸、肝、肺、胃等臟器以及血液系統(tǒng)的惡性腫瘤中,人們已經(jīng)發(fā)現(xiàn)mtDNA的畸變[6-9]。Habano等[10]也報道了D環(huán)區(qū)的突變能引起蛋白質(zhì)合成改變,影響線粒體的功能,進而對細胞的功能產(chǎn)生影響,推測線粒體基因改變將引起其功能異常,釋放大量活性氧自由基,而這些活性氧自由基能造成核基因損傷,從而引起各種腫瘤的發(fā)生。以往的所有研究均集中在發(fā)現(xiàn)腫瘤細胞或組織中存在mtDNA突變的現(xiàn)象,而mtDNA突變對腫瘤發(fā)生發(fā)展的機制則涉及尚少。為進一步研究mtDNA突變與腫瘤發(fā)生發(fā)展的內(nèi)在聯(lián)系,筆者選取NIH3T3細胞為惡性轉化的靶細胞,將突變大腸癌細胞的mtDNA轉染NIH3T3細胞,觀察轉染細胞mtDNA的D環(huán)區(qū)的突變情況,以進一步明確mtDNA在腫瘤發(fā)生發(fā)展過程中的作用。

    本研究共檢測到9個位點變化,其中16 314位T→C,75位C→T,這2個位點變化在轉染不同重組質(zhì)粒的NIH3T3細胞和NIH3T3細胞中均檢測到,考慮為多態(tài)性變化。在轉染不同重組質(zhì)粒的NIH3T3細胞中均檢測到了與正常NIH3T3細胞和基因庫記載不同的核苷酸變化,考慮為突變。在 8個突變位點中,除在轉染重組質(zhì)粒pcDNA3.1(+)-Sw480 mtDNA的NIH3T3細胞線粒體DNA D環(huán)區(qū)的16 437位和16 438位間檢測插入序列G,另外的7個突變形式均為堿基置換。在轉染pcDNA3.1(+)-Sw480 mtDNA的NIH3T3細胞中檢測到16 223位 C→T,16 225位 T→C,16 237位 C→G,16 273位C→T,211位 A→T; 在轉染 pcDNA3.1 (+)-Lovo mtDN的NIH3T3細胞中檢測到 16 223位 C→T,16 225位C→T,665位C→T。因此,在轉染不同重組質(zhì)粒的NIH3T3細胞中,同時檢測到16 223位C→T,16 225位T→C,檢測到的相同的突變位點考慮為特征性改變,而這些特征性的改變目前認為可能和腫瘤的易感性有關,但是否致癌有待于進一步研究。

    本研究發(fā)現(xiàn),將大腸癌突變的線粒體 DNA導入到NIH3T3中,能夠誘導NIH3T3細胞線粒體DNA的D環(huán)區(qū)發(fā)生突變和多態(tài)性的變化,從而證實大腸癌線粒體DNA的D環(huán)區(qū)是一具有高突變性的區(qū)域,在一定程度上具有誘導NIH3T3細胞惡性轉化的傾向,然而在腫瘤發(fā)病中的作用和機制還需進一步研究。

    [1]Li Yan,Weibing Song,Liu Hong,et al.Mitochondrial DNA from colotectal cancer cells promotes the malignant phenotype of NIH3T3 cells.Cell Biology International,2008,32(10):979-983.

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    [3]Daozhen Chen,Huiying Zhan.Study on the mutations in the D-loop region of mitochondrial DNA in cervical carcinoma.J Cancer Res Clin Oncol,2009,135(3):291-295.

    [4]Lee HC,Yin PH,Lin JC,et al.Mitochondrial genome instability and mtDNA depletion in human cancers.Ann N Y Acad Sci,2005,1042:109-122.

    [5]Suzuki R,Oda Y,Namai E,et al.Development of site specific gene delivery system with sonoporation.Yakugaku Zasshi,2008,128(2):187-92.

    [6]Akouchekian M,Houshmand M,Hemati S,et al.High rate of mutation in mitochondrial DNA displacement loop region in human colorectal cancer.Dis Colon Rectum,2009,52(6):526-30.

    [7]Daozhen Chen,Huiying Zhan.Study on the mutations in the D-loop region of mitochondrial DNA in cervical carcinoma.J Cancer Res Clin Oncol,2009,135(3):291-295.

    [8]Ling-Juan Pang,Jian-Yong Shao,Xiao-Man Liang,et al.Mitochondrial DNA somatic mutations are frequent in nasopharyngeal carcinoma.Cancer Biology&Therapy,2008,7(3):198-207.

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    [10]Habano W,Sugai T,Nakamura SI,et al.Microsatellite instability and mutation ofmitochondrial and nuclear DNA in gastric carcinoma.Gastroenterology,2000,118:8352-841.

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