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    三重處理法獲得大麻種子無菌苗研究

    2011-05-23 02:32:24程超華李育君趙立寧臧鞏固
    中國麻業(yè)科學 2011年1期
    關鍵詞:菌苗種皮次氯酸鈉

    程超華,李育君,趙立寧,唐 蜻,臧鞏固

    (中國農(nóng)業(yè)科學院麻類研究所,長沙 410205)

    大麻(Cannabis sativa)為大麻科大麻屬一年生草本植物,按其用途分為工業(yè)大麻、油用大麻和藥用大麻三類。工業(yè)大麻相關產(chǎn)品可用于造紙、化妝品、服裝、地毯、汽車、建筑、農(nóng)業(yè)、回收、食品等領域,多功能性使其在市場上有很強的競爭優(yōu)勢;油用大麻和藥用大麻也因其獨特性分別在食品和醫(yī)藥領域占有重要地位。大麻一般是雌雄異株,為異質結合體,同一群體內不同個體間表現(xiàn)多樣性,遺傳基礎復雜,其育種進程遠落后于其它植物。因此,利用生物技術手段對傳統(tǒng)育種方法進行改良和輔助,是推進大麻育種的有效方法。

    離體培養(yǎng)是生物技術工作的基礎,目前大麻離體培養(yǎng)研究均采用野外生長的實生苗作為外植體。大麻生長周期短,外植體取材時期有限且難以消毒滅菌,是離體培養(yǎng)研究的瓶頸[4,6,7]。健壯的無菌苗是有效開展轉基因研究及其它組培實驗的基礎和關鍵。種子是獲得大麻無菌苗的主要途徑之一,因此,種子滅菌顯得尤為重要。但是,大麻種子結構復雜,內部攜帶大量的微生物,種皮堅硬,自然破殼萌芽時間長,波蘭研究者曾試驗用種子無菌苗獲得外植體,但因種子內生菌多,污染嚴重而放棄[10]。目前未見高效獲取大麻種子無菌苗研究的報道。本研究以大麻種子為材料,進行多種方法的滅菌處理,獲得了出苗率高、污染少的種子無菌苗培養(yǎng)方法,為大麻組織培養(yǎng)和遺傳轉化研究打下了基礎。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    供試品種為尤紗31,皖大麻,山西本地麻2號、汾麻3號。分別來自黑龍江和山西。

    1.2 滅菌方式

    選取飽滿、勻實種子,經(jīng)三個步驟進行種子滅菌處理:

    (1)用98%工業(yè)硫酸浸泡20min后,于自來水下沖洗30min;

    (2)用75%酒精浸洗2min;

    (3)經(jīng)下述四種不同方式進行處理,接種于MS培養(yǎng)基上:

    ① 0.1%深汞浸泡20min后,用無菌水沖洗數(shù)次,于干凈濾紙上吸干水分,用手術刀和鑷子剝去種皮,接種于培養(yǎng)基上。

    ② 0.1%深汞浸泡20min后,用無菌水沖洗數(shù)次,于干凈濾紙上吸干水分,不剝種皮直接接種于培養(yǎng)基上。

    ③ 3%次氯酸鈉浸泡20min后,用無菌水沖洗數(shù)次,于干凈濾紙上吸干水分,用手術刀和鑷子剝去種皮,接種于培養(yǎng)基上。

    ④ 3%次氯酸鈉浸泡20min后,用無菌水沖洗數(shù)次,于干凈濾紙上吸干水分,不剝種皮直接接種于培養(yǎng)基上。

    每一處理30個外植體,重復3次,3天后每天統(tǒng)計污染率和種子萌發(fā)情況。

    為了試驗不同品種對滅菌處理的反應,分別取皖大麻,山西本地麻2號、汾麻3號按照處理③進行滅菌處理,3天后統(tǒng)計污染率與種子萌芽情況。

    1.3 試驗結果的統(tǒng)計方法

    參考王子成的方法[5]:

    污染率=(污染外植體數(shù)/接種外植體數(shù))×100%;

    未萌芽率=[(死亡個數(shù)+未萌芽數(shù))/接種外植體數(shù)]×100%;

    成功率=(萌芽不污染數(shù)/接種外植體數(shù))×100%

    這里,用未萌芽率代替殺死率,更能反映滅菌的負面影響。因為有一部分外植體雖未被殺死,但由于受到的傷害也較重,不能萌發(fā),因而也不能進行繼續(xù)培養(yǎng)。所得數(shù)據(jù)用鄧肯氏新復極差法分析。

    2 結果與分析

    2.1 不同滅菌方法對污染率及種子萌發(fā)的影響

    接種1天后,剝皮處理(③和①)的種子開始萌發(fā),到第3天時長勢良好,可見深綠色子葉及小部分真葉,是用作組織培養(yǎng)的極佳材料,3天后萌發(fā)未見增多,可見3天是種子萌發(fā)生長及外植體取材的最佳時期。未剝皮處理(②和④)的種子則萌發(fā)啟動時間長,一周后才開始突破種皮,第10天時可見子葉和真葉。10天后萌發(fā)率未見增加。表1的結果表明,處理③的滅菌效果最好,成功率達到80.83%,污染率只有4.17%。處理①的成功率和污染率均顯著低于處理③,這可能是因深汞不能充分浸入種子內部對其內生菌進行滅殺。而且有可能己對種子內部造成傷害,影響其萌芽。處理②和④污染率極低,但因其萌發(fā)時間長,出芽率低。不適合用作獲取無菌苗。由上可見,處理③的消毒方法,即3%的次氯酸鈉處理種子后剝去種皮接種于培養(yǎng)基上,滅菌效果好,污染少,成功率高,是獲取無菌苗的最佳消毒方法。

    表1 不同滅菌方法得到無菌苗的情況Table 1 Results ofdifferent hemp seeds with different disinfection protocols

    2.2 種皮留存對污染率及種子萌發(fā)的影響

    從表1可知,處理④和處理②的滅菌處理分別與③、①相同,但均未剝種皮接種于培養(yǎng)基上,雖然污染率極低,但出芽時間長且出芽率低。這是由于大麻種殼堅硬,培養(yǎng)基的理化條件不適合其自然萌芽,其在培養(yǎng)基中的萌芽時間明顯高于田間條件。對于要求快速、大量無菌苗作外植體的離體培養(yǎng)來說,超凈臺上剝去種皮雖然較難操作,但出苗時間和出苗數(shù)量卻明顯好于不剝種皮。

    2.3 不同大麻品種污染率的差異

    表2的結果表明,在用處理③的方法對不同品種大麻種子進行滅菌處理時,不同品種間的成功率和污染率存在著一定的差異,這可能與不同品種種子外表皮結構和內生菌攜帶量有關,也可能與不同材料對次氯酸鈉的耐受力有關。皖大麻經(jīng)滅菌以后,成功率最??;其它品種,經(jīng)滅菌后均有較高的成功率,其中汾麻3號最高,達到87.78%。所以,在對污染率較高的大麻品種進行滅菌處理時,可對現(xiàn)有方法進行適當改進調整,或者每瓶培養(yǎng)基盡量少接種種子,避免交叉污染,以便獲得更好的成功率。

    表2 不同品種得到無菌苗的情況Table 2 Difference amonghemp cultivars on gaininggermfree seedlings bythree-step treatment

    3 討 論

    植物組織的離體培養(yǎng)技術是轉基因育種和體細胞突變技術育種的前提和基礎。種子無菌苗因能大量、便捷地產(chǎn)生離體培養(yǎng)所需的外植體(子葉、真葉、下胚軸)而被廣泛應用。因此,如何成功的對種子滅菌,縮短萌芽時間,獲得大量無菌苗,是進行生物技術研究的前提。

    種子消毒方法得當與否是獲得無菌苗的關鍵,由于作物種子在其生長發(fā)育過程中易受自然界各種細菌和真菌的浸染,種子不僅表面帶菌,而且內部也可能被感染,所以對種子進行徹底的滅菌就非常重要。

    一般常用的滅菌劑有:75%酒精、0.1%升汞、3%-4%次氯酸鈉等,其它抗菌素、雙氧水、硝酸銀、溴水等亦可采用。升汞是應用最廣泛的一種消毒劑,它殺菌力強,但刺激性和腐蝕性大,對金屬器皿有腐蝕作用,對人畜有劇毒。對細菌的滲透性小,遇有機物效果降低。升汞消毒后難以除去殘余汞對外植體的殺傷作用;而次氯酸鈉滅菌的原理是水解形成次氯酸,次氯酸再進一步分解形成新生態(tài)氧,新生態(tài)氧的極強氧化性使菌體和病毒上的蛋白質等物質變性,從而使病源微生物致死[3]。

    迄今各種滅菌方法已有不少報道:如杜燕等曾對貯存過期油菜種子進行消毒處理研究,結果以10%NaClO處理較好[1]。張志飛等研究表明,適用于富含內生真茵的高羊茅種子的最佳消毒組合為50℃溫水浸泡10 min.再經(jīng)70%酒精處理5 min.然后用次氯酸鈉處理15 min,在保證較高種子發(fā)芽率的前提下,可降低種子污染率,提高出愈率[8]。

    本研究中,大量易獲取的、不受取材時間限制的無菌苗為大麻組織培養(yǎng)提供了良好的基礎,該體系下獲得的無菌苗可以直接作為組織培養(yǎng)的外植體來源,無需進行再次消毒,我們的初步試驗表明,將這些外植體直接接種在培養(yǎng)基上可誘導出愈傷組織。

    本研究建立的新的滅菌方法的優(yōu)點在于:一、用次氯酸鈉作為滅菌劑,處理以后殘毒能夠自然降解,避免了對環(huán)境的污染,因而優(yōu)于用升汞處理;二、用工業(yè)硫酸預處理種子,除去種子上附著的雜質,減少污染機率,軟化后種皮有利于下一步的剝皮操作。三、種子經(jīng)滅菌處理后,于超凈臺上人工剝去種皮,能大大加快種子萌芽速度,3-4天時間便能生產(chǎn)大批量無菌苗,快捷方便。至今,還沒有該方法的報道,我們將該方法命名為“三重處理法”。本研究建立的“三重處理法”不但解決了大麻種子滅菌不易的難題,而且對其它難滅菌材料,特別是種子堅硬,內生菌較多的種子的滅菌,也有一定的參考價值。但應該指出的是,不同種類的植物材料,同一植物不同成熟程度的材料,對滅菌劑的耐受力不同,在進行滅菌處理時,應該根據(jù)具體情況,決定滅菌處理的時間,以獲得較高的成功率[2]。

    [1] 杜燕.蔣海玉.劉其寧.貯存過期油菜種子消毒方法的研究[J].種子,2003(02):39-40.

    [2] 胡凱,張立軍,自雪梅,等.植物組織培養(yǎng)污染原因分析及外植體的消毒[J].安徽農(nóng)業(yè)科學,2007,35(3):680-681.

    [3] 唐琳,劉建國,馬欣榮.兩種滅菌方法對番茄種子滅菌效果的評價[J].種子,2008,27(9):17-18.

    [4] 佟金風,高南,李凝,等.大麻試管苗生根培養(yǎng)基的優(yōu)化[J].安徽農(nóng)業(yè)科學,2008,36(33):14438-14440.

    [5] 王子成,李忠愛,鄧秀新.柑橘成年態(tài)莖段外植體消毒方法研究[J].河南大學學報(自然科學版),2005,35(2):58-59.

    [6] 尹品訓,楊明,郭鴻彥,等.大麻的離體培養(yǎng)與快速繁殖.西南農(nóng)業(yè)學報[J],2005,18(4):503-505.

    [7] 尹品訓,楊明,郭鴻彥,等.大麻組織培養(yǎng)中玻璃化苗研究初報[J].云南農(nóng)業(yè)科技,2004(4):12.

    [8] 張志飛,饒力群.高羊茅種子內生真菌的消毒方法[J].草業(yè)科學,2008,25(6):93-97.

    [9] 張志元,官春云.油菜無菌苗培養(yǎng)前的種子消毒技術[J].中國油料作物學報,2005,(1):88-91.

    [10] Aurelia Slusarkiewicz-Jarzina,etc.ACTA BIOLOGICA CRACOVIENSIA Series Botanica[J].Influence of cltivar,explant source and plant growth regulator on callus induction and plant regeneration ofcannabis sativa L.2005,47(2):145-151.

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