李 敏,張 冰,劉小青
(1.陜西中醫(yī)學(xué)院藥學(xué)院,陜西咸陽(yáng) 712046;2.北京中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院,北京 100102)
肝是機(jī)體藥物代謝的主要器官,大多數(shù)藥物都要經(jīng)過(guò)肝代謝酶作用發(fā)揮效應(yīng),其中細(xì)胞色素P4503A(cytochrome P4503A,CYP3A)是最主要的藥物代謝酶。CYP3A的活性直接影響藥物對(duì)機(jī)體的治療作用及毒性反應(yīng)[1]。CYP3A表達(dá)主要通過(guò)核受體孕烷X受體(pregnane X receptor,PXR)調(diào)控[2]。cAMP-PKA信號(hào)通路介導(dǎo)體內(nèi)多種信號(hào)傳導(dǎo),該信號(hào)通路可能調(diào)節(jié) CYP3A 的表達(dá)[3]。8-Br-cAMP和 H-89 分別是cAMP-PKA信號(hào)通路的激動(dòng)劑和抑制劑,本實(shí)驗(yàn)研究8-Br-cAMP及H-89作用于L02細(xì)胞,觀察CYP3A的變化,研究CYP3A的表達(dá)機(jī)制,探討該信號(hào)通路對(duì)藥物代謝酶的影響。
L02細(xì)胞由北京中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院生物技術(shù)系王春梅老師惠贈(zèng)。錐蟲(chóng)藍(lán)(MTT),8-Br-cAMP和H-89均購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;RPMI1640培養(yǎng)基(干粉)、胎牛血清、D-Hanks均購(gòu)自美國(guó)Gibco公司;無(wú)水甲醇、磷酸二氫鉀、磷酸、異丙醇均為分析純,購(gòu)自北京化學(xué)試劑公司。胰酶、青霉素和鏈霉素購(gòu)自Gibco公司。
超凈工作臺(tái)(天津醫(yī)藥凈化設(shè)備廠(chǎng));CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱(美國(guó)Nap-co公司);Bio-Rad-550酶標(biāo)儀(美國(guó)Metertech公司);低溫高速離心機(jī)、Nikon生物顯微鏡和NIS圖像采集分析系統(tǒng)(日本Nikon公司);電泳儀和轉(zhuǎn)膜機(jī)(美國(guó)Bio-Rad公司)。
液氮罐中取出凍存的L02細(xì)胞株,復(fù)蘇培養(yǎng),培養(yǎng)基為 1640(含 10%FCS,青霉素100 kU·L-1,鏈霉素100 kU·L-1),置 37℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng),24 h后更換培養(yǎng)基,細(xì)胞為單層貼壁生長(zhǎng),當(dāng)細(xì)胞貼壁大于85%時(shí)(對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期)可傳代培養(yǎng)。
細(xì)胞傳至第四、五代狀態(tài)較好時(shí),調(diào)整細(xì)胞密度108L-1,培養(yǎng)12 h后,大于85%的細(xì)胞貼壁,吸出原培養(yǎng)基,按組別分別加入含藥的無(wú)血清培養(yǎng)基,每孔加入 100 μl濃度為 10-3,10-4,10-5,10-6,10-7,10-8和10-9mol·L-1的 8-Br-cAMP 或 H-89 溶液,設(shè)5 個(gè)復(fù)孔,培養(yǎng)48 h,每孔加20 μl MTT 溶液5 g·L-1(pH=7.4)。繼續(xù)孵育4 h后,小心吸棄孔內(nèi)培養(yǎng)上清液。每孔加二甲亞砜150 μl,微量振蕩器振蕩10 min,在波長(zhǎng) 570 nm酶標(biāo)儀測(cè)定吸光度(absorbance,A)值,觀察8-Br-cAMP和H-89對(duì)細(xì)胞活力的影響。
L02細(xì)胞108L-1,接種于12孔板,正常對(duì)照組,8-Br-cAMP 10 μmol·L-1組,H-89 10 μmol·L-1組,培養(yǎng)48 h后收集細(xì)胞,檢測(cè)相關(guān)指標(biāo),每組設(shè)3個(gè)平行,重復(fù)3次,測(cè)PKA的培養(yǎng)孔中放入圓形蓋玻片,細(xì)胞爬片后做免疫組化用。
有蓋玻片的培養(yǎng)板小心吸去培養(yǎng)液,加入4%的多聚甲醛,4℃,固定24 h。取出蓋玻片,依次用PBS漂洗3×5 min,3%的H2O220 min。① 兔抗PKA抗體稀釋液(1∶100,武漢博士德)孵育24 h(4℃),37℃復(fù)溫40 min,PBS漂洗3×5 min;②二抗羊抗兔IgG 37℃ 40 min,PBS漂洗 3×5 min;③ DAB 顯色。常規(guī)脫水、透明、封固,光鏡下觀察并拍攝照片。采用圖像分析系統(tǒng)測(cè)定PKA陽(yáng)性免疫反應(yīng)產(chǎn)物的積分灰度值(著色深者灰度值低)進(jìn)行分析。
小心傾去培養(yǎng)液,用PBS洗2次,0.25%胰酶消化,收集細(xì)胞,126×g離心5 min,小心吸出上清液,PBS再清洗,126×g離心5 min,倒凈 PBS,加入200 μl裂解液(1.4 ml單去污劑裂解液和 20 μl PMSF),冰上裂解 30 min,4℃,13 427×g離心 8 min,吸取約 170 μl,-80℃保存待測(cè)。
采用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定蛋白含量,每孔加40 μl蛋白,采用SDS-PAGE電泳,13%分離膠,5%的濃縮膠,半干轉(zhuǎn)膜法將蛋白轉(zhuǎn)至PVDF膜上,0.5%脫脂奶粉封閉1 h后加入β肌動(dòng)蛋白一抗4℃過(guò)夜(1∶2000)。用含吐溫-20的PBS(PBST)洗滌3次,每次5 min,加入二抗,密封,室溫1 h,PBST液洗3次,加入PXR 一抗(1∶150),室溫1 h,PBST 液洗3 次,加二抗,PBST液洗3次,加顯色劑2 min,在暗室內(nèi)壓膠片曝光,觀察結(jié)果并掃描分析。PXR表達(dá)水平用目的條帶積分吸光度值(integrated absorbance,IA)與內(nèi)參β肌動(dòng)蛋白條帶的IA比值定量表示。
傾去培養(yǎng)液,PBS洗2次,0.25%胰酶消化,收集細(xì)胞,4023×g離心10 min,吸出上清液,加入0.2 ml pH 7.4的甘油磷酸緩沖液重懸細(xì)胞,用超聲破碎儀破碎細(xì)胞,1450×g,4℃離心15 min,取上清液,按照紅霉素-N-脫甲基法檢測(cè)CYP3A的活性[5]。
與正常對(duì)照組比較,8-Br-cAMP 1 mmol·L-1使細(xì)胞活性明顯降低(P <0.05),H-89 1 和 0.1 mmol·L-1使細(xì)胞活性明顯降低 (表 1)。所以8-Br-cAMP和H-89選擇對(duì)細(xì)胞沒(méi)有損害的10 μmol·L-1作為實(shí)驗(yàn)濃度。
表1 8-Br-cAMP和H-89對(duì)L02細(xì)胞活力影響Tab.1 Effect of 8-Br-cAMP and H-89 on the activity of L02 cells
如圖1所示,PKA主要分布在胞漿之中,免疫組化染色后,可發(fā)現(xiàn)細(xì)胞胞漿中分布著棕黃色陽(yáng)性顆粒。正常對(duì)照組有部分陽(yáng)性細(xì)胞,胞漿分布有棕黃色顆粒,正常對(duì)照組PKA表達(dá)灰度值211±20相比,8-Br-cAMP 10 μmol·L-1組陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)較多,且陽(yáng)性顆粒著色較深,其陽(yáng)性面積及PKA表達(dá)灰度值(296±18)明顯增加(P <0.05,P <0.01),H-89 組陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)較少、顆粒著色也比較淺,PKA表達(dá)灰度值(176±14)顯著降低(P <0.05)。
與正常對(duì)照組比較,8-Br-cAMP 10 μmol·L-1作用于細(xì)胞后,細(xì)胞PXR表達(dá)明顯增強(qiáng)(P<0.05),而 H-89 10 μmol·L-1組 PXR 表達(dá)沒(méi)有明顯差異(圖2)。
圖18-Br-cAMP和H-89對(duì)L02細(xì)胞PKA蛋白表達(dá)影響 (×400).A:正常對(duì)照組;B:8-Br-cAMP 10 μmol·L-1組;C:H-89 10 μmol·L-1組.Fig.1 Effect of 8-Br-cAMP and H-89 on the expression of PKA in L02 cells(×400).
圖2 Western印跡法檢測(cè)8-Br-cAMP和H-89對(duì)LO2細(xì)胞孕烷X受體(PXR)表達(dá)的影響.1:正常對(duì)照;2:8-Br-cAMP 10 μmol·L - 1;3:H-89 10 μmol·L -1 .Fig.2 Effect of 8-Br-cAMP and H-89 on the expression of PXR in L02 cells detected by Western blotting.
與正常對(duì)照組比較,8-Br-cAMP 10 μmol·L-1作用于L02細(xì)胞后,細(xì)胞CYP3A活性明顯增強(qiáng)(P<0.05),H-89 10 μmol·L-1組細(xì)胞 CYP3A 活性無(wú)明顯差異(表2)。
表28-Br-cAMP和H-89對(duì)L02細(xì)胞中CYP3A活性的影響Tab.2 Effect of 8-Br-cAMP and H-89 on the activity of CYP3A in L02 cells
肝藥物代謝酶的表達(dá)及活性變化直接影響藥物的體內(nèi)過(guò)程,使藥物血藥濃度變化,對(duì)機(jī)體產(chǎn)生不同的生物學(xué)效應(yīng)。CYP3A是肝Ⅰ相藥物代謝酶中較為重要的代謝酶,介導(dǎo)臨床60%藥物的代謝,與藥物效應(yīng)密切相關(guān),CYP3A的表達(dá)主要由上游因子PXR調(diào)控。cAMP-PKA信號(hào)通路介導(dǎo)機(jī)體多種生物效應(yīng)[6],與 CYP3A 的表達(dá)也密切關(guān)聯(lián)[3]。
本研究通過(guò)體外實(shí)驗(yàn),觀察cAMP-PKA信號(hào)通路藥物代謝酶CYP3A的調(diào)控作用。L02細(xì)胞是體外培養(yǎng)的正常人類(lèi)肝臟細(xì)胞,肝臟是藥物代謝酶存在的主要器官,因此L02細(xì)胞中有較完整的肝臟藥物代謝酶系,可作為體外實(shí)驗(yàn)考察肝臟藥物代謝酶變化合適的細(xì)胞株。故實(shí)驗(yàn)選用L02細(xì)胞,考察cAMP-PKA通路激動(dòng)劑8-Br-cAMP、抑制劑H-89對(duì)L02細(xì)胞中CYP3A及PXR的影響,探討cAMP-PKA通路對(duì)CYP3A的調(diào)控的機(jī)制[7-8]。
實(shí)驗(yàn)應(yīng)用 MTT[8]法觀察8-Br-cAMP,H-89對(duì)細(xì)胞活性的影響,選擇合適的實(shí)驗(yàn)濃度。結(jié)果顯示,8-Br-cAMP 1 mmol·L-1有一定的細(xì)胞毒性,隨著濃度降低,對(duì)細(xì)胞損害越小,8-Br-cAMP 10 μmol·L-1及更低的濃度時(shí),對(duì)細(xì)胞基本沒(méi)有損害,故選用8-Br-cAMP 10 μmol·L-1作為實(shí)驗(yàn)濃度。同樣選擇 H-89 10 μmol·L-1作為實(shí)驗(yàn)濃度。
8-Br-cAMP 和 H-89 10 μmol·L-1作用于 L02 細(xì)胞后,PKA,PXR和CYP3A都發(fā)生變化。8-Br-cAMP 10 μmol·L-1,可以增強(qiáng)細(xì)胞中 PKA 和 PXR 表達(dá),并上調(diào) CYP3A 的活性,可見(jiàn) 8-Br-cAMP 10 μmol·L-1可以上調(diào)cAMP-PKA通路,并能增強(qiáng)PXR表達(dá),從而使CYP3A 活性增強(qiáng)。H-89 10 μmol·L-1使 L02 細(xì)胞的PKA表達(dá)降低,對(duì)細(xì)胞的PXR表達(dá)、CYP3A的活性影響不大??梢?jiàn),cAMP-PKA信號(hào)通路處于上調(diào)狀態(tài)時(shí)可以增強(qiáng)PXR表達(dá),從而增加CYP3A的活性,說(shuō)明cAMP-PKA信號(hào)通路可以調(diào)控CYP3A的表達(dá)。H-89 10 μmol·L-1使 cAMP-PKA 信號(hào)通路處于抑制狀態(tài),PKA表達(dá)下降,PXR蛋白表達(dá)和CYP3A活性無(wú)明顯改變,說(shuō)明cAMP-PKA信號(hào)通路抑制時(shí),可能存在其他途徑誘導(dǎo)PXR介導(dǎo)的CYP3A的表達(dá),其綜合效應(yīng)使PXR蛋白表達(dá)和CYP3A活性無(wú)明顯變化,可見(jiàn),除了cAMP-PKA信號(hào)通路,同時(shí)可能還有其他途徑共同調(diào)控CYP3A的表達(dá)。
cAMP-PKA信號(hào)通路在CYP3A表達(dá)中有積極意義,是影響CYP3A表達(dá)的途徑之一,進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)宜從基因和蛋白層次觀察該通路對(duì)CYP3A表達(dá)的影響。可見(jiàn),通過(guò)干預(yù)機(jī)體cAMP-PKA信號(hào)通路,影響CYP3A表達(dá),可改變機(jī)體藥物代謝水平,為研究影響藥效的深層次機(jī)制提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
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