董文賓, 許先猛
(陜西科技大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院, 陜西 西安 710021)
杜仲(EucommiaulmoidesOliv),我國特有的珍稀瀕危保護(hù)植物.杜仲中含杜仲膠、京尼平苷、綠原酸、槲皮素、山柰醇等多種活性成分,具有消炎抑菌、抗疲勞、抗衰老、降血壓、降血脂、補腎、安胎等諸多功效[1].研究證明[2,3],杜仲皮與葉有著相似的化學(xué)成分和藥理作用,其各類物質(zhì)的多酚成分陸續(xù)被國內(nèi)外學(xué)者所研究[4,5].有關(guān)杜仲葉中的多酚物質(zhì)研究的報道很少,相關(guān)文獻(xiàn)大多是對綠原酸的提取和純化.本論文應(yīng)用超聲法和浸提法對杜仲葉中多酚物質(zhì)的提取條件進(jìn)行了考察與優(yōu)化,并且比較了各自的優(yōu)缺點,為杜仲葉綜合利用提供一定的理論依據(jù),同時對杜仲葉多酚粗提物進(jìn)行了初步分離純化,也為多酚類物質(zhì)的分離純化工作奠定了一定的基礎(chǔ).
原料:杜仲葉(采自陜西略陽),陰干,粉碎過40目篩.
試劑:沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)品,貴州遵義佳宏化工有限責(zé)任公司,純度98%;福林酚,美國Sigma公司;無水碳酸鈉,分析純,天津市百世化工有限公司.
儀器:JY92-Ⅱ超聲細(xì)胞粉碎機,寧波新芝生物科技股份有限公司;754PC型紫外可見分光光度計及722型可見分光光度計,上海光譜儀器有限公司;BS-224型電子天平,德國SARTORIUS公司;微量移液器,芬蘭Dragonmed 公司;RE-52AA型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器及SHZ-Ⅲ循環(huán)水多用真空泵,上海亞榮生化儀器廠;DZ-1BC真空干燥箱,天津泰斯特儀器有限公司.
1.2.1 工藝流程
杜仲葉→陰干→粉碎過篩→稱取→超聲提取/浸提→過濾→濃縮→干燥→粗提物
└→吸附→解吸→干燥
1.2.2 操作要點
(1)原料選擇.杜仲葉采自陜西略陽.
(2)提取.提取過程中,超聲和浸提的熱量會使乙醇提取液有不同程度的揮發(fā),對實驗結(jié)果有一定的影響,因此在實驗過程中需制作帶孔塑料薄膜對提取容器進(jìn)行密封.
(3)濃縮.濃縮過程中溫度不超過50℃,根據(jù)乙醇溶液濃度確定真空度.
(4)吸附.杜仲葉用40%乙醇進(jìn)行提取,提取液濃縮至適當(dāng)濃度(不含乙醇),離心,取上清液沿柱壁緩緩加入裝有樹脂的柱中,至流出液顏色和加入濃縮液顏色基本相同,靜置吸附24 h.
(5)解吸附.分別采用不同濃度乙醇對大孔樹脂吸附柱進(jìn)行洗脫.
(6)干燥.真空減壓干燥,溫度為50℃.
(7)檢測.以試劑空白做參比進(jìn)行吸光度的測定,測定過程中若吸光度過大則進(jìn)行一定比例的稀釋.
1.2.3 單因素實驗
超聲法選取超聲功率、超聲時間、乙醇濃度、料液比數(shù)等單因素進(jìn)行實驗,考察各因素對多酚得率的影
表1 多酚超聲法提取實驗因素水平表
響;浸提法選取浸提溫度、時間、乙醇濃度、料液比等單因素進(jìn)行實驗,考察各因素對多酚得率的影響.
1.2.4 正交試驗
本實驗采用L9(34)正交表,超聲法采用用超聲功率、超聲時間、乙醇濃度、料液比4個因素做正交試驗,各因素選取3個水平,實驗因素水平表見表1;浸提法采用浸提溫度、浸提時間、乙醇濃度、
表2 多酚浸提法提取實驗因素水平表
料液比4個因素做正交試驗,選取3個水平,實驗因素水平表見表2.
1.2.5 測定方法[6]
(1)標(biāo)準(zhǔn)溶液的制備與標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作.準(zhǔn)確稱取沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)品0.102 0 g,用蒸餾水溶解并定容至100 mL,制成沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)儲備液.用移液管分別移取1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)儲備液于100 mL容量瓶中,定容,濃度分別為10、20、30、40、50 μg/mL.
分別取上述不同濃度溶液1 mL加到10 mL容量瓶中,在每個容量瓶中分別加入5.0 mL的10%福林酚試劑,搖勻.反應(yīng)6 min后,加入4.0 mL 7.5%碳酸鈉溶液,加水定容至刻度,搖勻.室溫下放置60 min.以試劑空白為參比,在500~900 nm之間掃描最大吸收峰,確定最大吸收波長在766 nm處.在766 nm處測定標(biāo)準(zhǔn)溶液,由濃度對吸光度進(jìn)行回歸求得標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到?jīng)]食子酸濃度C(μg/mL)與吸光度A的關(guān)系的回歸方程為:y=0.022 2x+0.016 8(R2=0.999).
(2)杜仲葉多酚的測定.吸取1 mL樣液,按合適比例稀釋后按上述方法測定.以試劑空白作參比測吸光度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算樣液多酚得率.多酚得率=[m1/(m總×106)]×100%,式中m1=(109.890 1A-0.033 0)×稀釋倍數(shù)×V提取液,m總為所取原料質(zhì)量(g).
2.1.1 超聲功率對多酚得率的影響
在超聲時間45 min,料液比1∶15,乙醇濃度60%條件下提取兩次,超聲功率對多酚得率的影響如圖1所示.
由圖1可以看出,超聲功率在200~400 W內(nèi),杜仲葉多酚得率隨超聲功率的增加有所提高;當(dāng)超聲功率大于400 W時,總多酚提取量開始隨超聲功率的增加而逐漸降低.可能因為隨著超聲功率增大,當(dāng)超過400 W時產(chǎn)生的熱量(溫度超過58 ℃)使杜仲葉多酚物質(zhì)結(jié)構(gòu)發(fā)生變化,從而使多酚得率降低.綜合考慮,本實驗選擇超聲功率為400 W.
2.1.2 浸提溫度對多酚得率的影響
在浸提時間1 h,料液比1∶15,乙醇濃度60%條件下提取兩次,浸提溫度對多酚得率的影響如圖2所示.
圖1 超聲功率對多酚得率的影響 圖2 浸提溫度對多酚得率的影響
由圖2可以看出,隨著浸提溫度的增加多酚得率呈現(xiàn)先增后減的趨勢,當(dāng)浸提溫度為60 ℃時多酚得率最高.這可能因為溫度過低杜仲葉中的多酚溶出速度較慢,隨著溫度升高多酚的得率增加,當(dāng)溫度高于60 ℃時多酚結(jié)構(gòu)會發(fā)生變化,從而使多酚得率降低.綜合考慮,本實驗選擇浸提溫度為60 ℃.
2.1.3 超聲及浸提時間對多酚得率的影響
在超聲功率400 W,料液比1∶15,乙醇濃度60%條件下提取兩次;在料液比1∶15,乙醇濃度60%,浸提溫度60 ℃條件下提取兩次.超聲提取時間及浸提時間對多酚得率的影響如圖3所示.
圖3 提取時間對多酚得率的影響 圖4 乙醇濃度對多酚得率的影響
由圖3可以看出,超聲法和浸提法隨著提取時間的延長多酚的得率呈現(xiàn)上升趨勢,其中超聲時間超過45 min時多酚得率下降.產(chǎn)生這種現(xiàn)象的原因可能有:(1)超聲法提取時間超過45 min后超聲產(chǎn)生的熱量(溫度超過58 ℃)使杜仲葉多酚物質(zhì)結(jié)構(gòu)發(fā)生變化,從而使多酚得率降低;(2)浸提法提取溫度在60 ℃溫度下,隨著時間的延長杜仲葉中多酚的溶出量越多,但多酚得率增加不明顯.綜合考慮,超聲提取實驗選擇超聲時間45 min,浸提時間選擇60 min為宜.
2.1.4 乙醇濃度對超聲法和浸提法提取多酚得率的影響
圖5 料液比對超聲法及浸提法提取多酚得率的影響
在超聲功率400 W,料液比1∶15,超聲時間45 min條件下提取兩次;在料液比1∶15,浸提時間1 h,浸提溫度60 ℃條件下提取兩次.乙醇濃度對超聲法及浸提法提取多酚得率的影響如圖4所示.
由圖4可以看出,超聲法和浸提法中隨著提取溶液乙醇濃度的增加多酚得率呈現(xiàn)先增后減的趨勢,其中超聲法乙醇濃度達(dá)到40%時多酚得率最大,浸提法乙醇濃度為60%時多酚得率最大.這可能是因為多酚中包含多種極性和非極性物質(zhì),隨著乙醇濃度的增加多酚提取的總量呈現(xiàn)先增后減的趨勢.綜合考慮,超聲提取實驗選擇40%乙醇,浸提乙醇濃度選擇60%乙醇為最佳條件.
2.1.5 料液比對超聲法和浸提法提取多酚得率的影響
在超聲功率400 W,乙醇濃度40%,超聲時間45 min條件下提取兩次;在乙醇濃度60%,浸提時間1 h,浸提溫度60 ℃條件下提取兩次.料液比對超聲法及浸提法提取多酚得率的影響如圖5所示.
由圖5可以看出,隨著溶劑量的增加,多酚得率也隨之增高,但增高幅度較小.綜合考慮提取成本,本實驗采用料液比1∶15為宜.
我們對影響多酚得率的幾個因素作了正交試驗,以期從多個因素中找出影響實驗結(jié)果的各因素的主次順序以及最優(yōu)的水平組合,實驗結(jié)果見表3.
表3 正交試驗結(jié)果與極差分析
注平行試驗3次,結(jié)果取平均值.
2.3.1 大孔樹脂的篩選
樹脂預(yù)處理[3]:分別選用樹脂LX-38、S-8、LS-300、LS-46、XDA-8、D-101B、LX-9、LX-60、LX-8、LS-806、LS-306、LSA-21,取適量(30 g)用1mol/L的NaOH溶液浸泡4 h,用純凈水洗至中性,然后用1 mol/L的HCl浸泡24 h,用純凈水沖洗至中性,用70%乙醇浸泡24 h備用.
圖6 大孔樹脂篩選結(jié)果
沒食子酸吸附:將預(yù)處理好的不同種類樹脂置于250 mL錐形瓶中,分別加入10 mL標(biāo)準(zhǔn)溶液及90 mL水,密封,于30 ℃、無光條件下,70 r/min搖床吸附12 h,過濾得到吸附飽和的大孔樹脂.
沒食子酸解吸:將過濾后的大孔樹脂置于250 mL錐形瓶中,分別加入100 mL 40%乙醇溶液,密封,于30 ℃、無光條件下,70 r/min搖床解吸30 min,過濾,測定解吸液中沒食子酸的吸光度并計算出解吸液中沒食子酸的質(zhì)量,結(jié)果如表4.
由圖6可以看出,XDA-8大孔樹脂對沒食子酸吸附效果最好,吸附量=[解吸沒食子酸質(zhì)量(g)/添加沒食子酸質(zhì)量(g)]×100%,經(jīng)計算達(dá)43.92%,因此本實驗選用XDA-8大孔樹脂對酚類物質(zhì)粗提物進(jìn)行初步的分離純化.
2.3.2 酚類物質(zhì)提取物初步分離、純化
多酚粗提物吸附:取經(jīng)預(yù)處理XDA-8大孔樹脂適量,濕法裝柱(2 cm×30 cm)至2/3柱高度,用純凈水沖洗至流出液不含有乙醇.將杜仲葉40%乙醇提取液濃縮至適當(dāng)濃度(不含乙醇),離心,取上清液沿柱壁緩緩加入裝有樹脂的柱中,至流出液顏色和加入濃縮液顏色基本相同,靜置吸附24 h.
多酚解吸附:分別用水、20%乙醇、40%乙醇、60%乙醇、80%乙醇、無水乙醇對吸附后大孔樹脂進(jìn)行洗脫,每次洗脫至洗脫液無色,最后測定洗脫液中多酚的吸光度,進(jìn)一步測定經(jīng)初步分離、純化后多酚的含量([溶液中多酚質(zhì)量(g)/洗脫液干重(g)]×100%)分別為:3.41%、11.35%、2.94%、2.38%、1.35%、0.23%.結(jié)果表明:20%乙醇洗脫液中多酚含量較高,其為多酚進(jìn)一步分離、純化提供了一定的基礎(chǔ).
(1)超聲法提取杜仲葉中多酚的最佳工藝為:A3B3C1D2,即在提取功率800 W,超聲波提取時間60 min,乙醇濃度40%,料液比1∶10 g/mL的條件下提取兩次,多酚得率為0.175%.
(3)XDA-8大孔樹脂對沒食子酸的吸附效果較好,吸附量為43.92%.
(4)大孔吸附樹脂對提取物進(jìn)行初步分離純化,20%乙醇洗脫液中多酚的含量最高為11.35%.
(5)經(jīng)長期放置的杜仲葉中多酚含量較低,這可能是多酚中含有光敏、熱敏及對氧氣敏感成分,所以作為多酚提取原料的杜仲葉應(yīng)避光、真空、陰涼條件下保存.
參考文獻(xiàn)
[1] 鄧素蘭,余繼宏,管 林,等.杜仲不同部位總黃酮含量的測定[J].生物質(zhì)化學(xué)工程,2007,41(3):37-38.
[2] 葉文峰.杜仲葉中化學(xué)成分、藥理活性及應(yīng)用研究進(jìn)展[J].林產(chǎn)化工通訊,2004,38(5):40-43.
[3] 管淑玉,蘇薇薇.杜仲化學(xué)成分與藥理研究進(jìn)展[J].中藥材,2003,26(2):124-129.
[4] 李 華,王蔚新,袁春龍,等.葡萄籽多酚提取物的提取工藝研究[J].食品研究與開發(fā),2005,26(6):69-72.
[5] 熱依木古麗·阿布都拉,劉 力,仲 婕,等.石榴花中多酚物質(zhì)的純化工藝研究[J].中國中藥雜志,2009,34(17):27-30.
[6] GB/T 8313-2008.茶葉中茶多酚和兒茶素類含量的檢測方法[S]. 北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社,2008.