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    氣相色譜法檢測干辣椒中的11種農(nóng)藥殘留量

    2011-01-22 00:51:43劉寶圣呂運(yùn)開郭春海陳瑞春
    化學(xué)分析計(jì)量 2011年3期
    關(guān)鍵詞:干辣椒菊酯正己烷

    劉寶圣 呂運(yùn)開 郭春海 陳瑞春

    (河北大學(xué)化學(xué)與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,保定 071002) (河北出入境檢驗(yàn)檢疫局,石家莊 050051 )

    辣椒品種繁多,形狀各異,其栽培具有極強(qiáng)的生長適應(yīng)性,許多國家和地區(qū)皆大量種植。由于辣椒在生長或儲藏過程中經(jīng)常會出現(xiàn)病蟲害,尤其對于干辣椒,由于不少農(nóng)戶忽視農(nóng)藥的正確、合理使用,農(nóng)藥污染問題經(jīng)常發(fā)生,毒死蜱、三氟氯氰菊酯、氯氰菊酯、氰戊菊酯殘留量時(shí)有超標(biāo)現(xiàn)象。而我國和歐盟、美國、日本、韓國等國家或地區(qū),出于維護(hù)本國經(jīng)濟(jì)利益和保護(hù)人們健康,相繼對進(jìn)口辣椒及制品中的幾種農(nóng)藥殘留量等衛(wèi)生指標(biāo)提出了要求,規(guī)定的限量范圍為0.2~30 mg/kg。

    為有效監(jiān)控各類農(nóng)藥在辣椒及其制品等生產(chǎn)中的合理使用,開展農(nóng)藥殘留分析[1,2]以及相關(guān)樣品前處理技術(shù)[3,4]研究非常必要。農(nóng)藥殘留的檢測方法有很多報(bào)道,但大多是水果、蔬菜中的殘留分析[5]。干辣椒的基質(zhì)復(fù)雜,盡管電子捕獲檢測器(ECD)選擇性很強(qiáng),但由于檢測的組分限量很低,當(dāng)使用有機(jī)溶劑提取時(shí),如果凈化方法選擇不當(dāng),色素等雜質(zhì)干擾嚴(yán)重,極易污染儀器,給檢測結(jié)果的判定帶來影響。農(nóng)藥檢測的凈化方法有很多,如氟羅里硅土/活性炭混合柱層析法[6,7]、氟羅里硅土固相萃取柱法[8-10]、中性氧化鋁柱法[11]、硅藻土凈化法、凝膠滲透色譜凈化法[12]、基質(zhì)分散技術(shù)凈化法等[13]。這些凈化方法中,有些步驟略顯繁瑣,有些僅適用于蔬菜、水果中部分農(nóng)藥殘留的檢測,或者是用質(zhì)譜法檢測,對色素較重的干辣椒等基質(zhì)的凈化效果不理想。經(jīng)查詢辣椒中百菌清、毒死蜱、聯(lián)苯菊酯等11種農(nóng)藥殘留同時(shí)檢測的方法未見報(bào)道。筆者采用丙酮提取,正己烷液液萃取加硅膠60 SPE柱凈化[14],GC-ECD檢測,可以滿足干辣椒及其制品中百菌清、毒死蜱、聯(lián)苯菊酯、甲氰菊酯、氯氟氰菊酯、氯菊酯、氟氯氰菊酯、氯氰菊酯、氟胺氰菊酯[15]、氰戊菊酯、溴氰菊酯等殘留的檢測,方法快速、簡便,測定結(jié)果準(zhǔn)確。

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 主要儀器與試劑

    氣相色譜儀:7890A型,配有電子捕獲檢測器(ECD),美國Agilent公司;

    旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:Laborota 4000型,德國Heidolph公司;

    氮?dú)鉂饪s儀:TurboVapTMLv,美國Caliper公司;

    平板搖床:S-02型,英國 Stuart Scientific公司;

    硅膠60:63~200 μm,德國Fluka公司;

    SPE空管:6 mL,北京艾杰爾科技有限公司;

    Florisil SPE柱:1 g,6 mL,北京迪馬科技有限公司;

    丙酮、正己烷、二氯甲烷:農(nóng)殘級,北京迪馬科技有限公司;

    無水硫酸鈉:分析純,北京化工廠;

    百菌清、毒死蜱、聯(lián)苯菊酯、甲氰菊酯、氯氟氰菊酯、氯菊酯、氟氯氰菊酯、氯氰菊酯、氟胺氰菊酯、氰戊菊酯、溴氰菊酯標(biāo)準(zhǔn)溶液:濃度均為100 μg/mL,農(nóng)業(yè)部環(huán)境保護(hù)科研監(jiān)測所。

    1.2 硅膠60 SPE柱的制備

    在放有5.0 mL正己烷的SPE空管中,依次加入1.0 g經(jīng) 130℃活化2 h的硅膠60,無水硫酸鈉。流速控制在1滴/秒,棄去正己烷,備用。

    1.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制

    分別準(zhǔn)確量取百菌清等11種農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)溶液1.0 mL于100 mL容量瓶中,用正己烷定容至刻度,備用。使用時(shí)配制成所需濃度。

    1.4 樣品處理

    稱取2.5 g(準(zhǔn)確至0.01 g)已絞碎混勻的辣椒干樣品于100 mL具塞錐形瓶中,加入適量水潤濕,再加入20 mL丙酮,振蕩30 min,過濾并轉(zhuǎn)移到250 mL分液漏斗中,用丙酮洗滌錐形瓶,并將洗滌液一并轉(zhuǎn)移至上述分液漏斗。加入30 mL正己烷、25 mL硫酸鈉水溶液(20 g/L),振瑤1.5 min,靜置分層,棄去水相,正己烷層經(jīng)過盛有無水硫酸鈉的漏斗過濾到雞心瓶中,用正己烷潤洗分液漏斗兩次,一并轉(zhuǎn)入雞心瓶;于45℃下在旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀上濃縮至干,用5 mL正己烷溶解定容。

    1.5 樣品凈化

    準(zhǔn)確移取上述雞心瓶中溶液1.0 mL,轉(zhuǎn)入硅膠60柱中,用5.0 mL正己烷-二氯甲烷(體積比4∶1)溶液淋洗,棄去淋洗液,再用6.0 mL二氯甲烷洗脫,將洗脫液吹干,用正己烷定容至2.0 mL,待測。

    1.6 儀器分析條件

    色譜柱:彈性石英毛細(xì)管柱DB-608(30 m× 0.32 mm,0.5 μm),美國Agilent公司;進(jìn)樣口溫度:250℃;檢測器溫度:280℃;柱箱溫度:150℃保持2 min,以8℃/min升至250℃,保持4 min,再以8℃/min升至270℃,保持18 min;載氣:氮?dú)?流速為3.5 mL/min;進(jìn)樣方式:不分流;進(jìn)樣量:2 μL。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 稱樣量的選擇

    分別稱取1.00、2.50、5.00 g辣椒樣品做空白實(shí)驗(yàn)。當(dāng)稱樣量為5.00 g時(shí),色譜圖的雜質(zhì)峰會產(chǎn)生干擾;稱取1.00 g時(shí),稀釋倍數(shù)過大,會影響檢測的定量限。綜合考慮凈化效果、氣相色譜法基體干擾情況以及滿足定量限要求等因素,選擇稱取2.50 g樣品進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

    2.2 液液萃取溶劑的選擇

    本實(shí)驗(yàn)涉及的農(nóng)藥脂溶性較強(qiáng),采用液液分配萃取法,可洗去樣品中一部分水溶性雜質(zhì),而選擇合適的有機(jī)萃取溶劑,既可以滿足回收率要求又不帶入更多的雜質(zhì)。在添加水平為1.00 mg/kg時(shí),分別采用石油醚和正己烷作為液液萃取溶劑,每種溶劑分別使用 30 mL萃取一次與用40 mL分兩次萃取,所得到的回收率結(jié)果均可滿足要求,考慮到快速簡便,選擇30 mL萃取一次;石油醚較正己烷揮發(fā)性強(qiáng),因此選用正己烷作為萃取溶劑。

    2.3 凈化柱的選擇

    分別選擇氟羅里硅土和硅膠60 SPE柱凈化,前者上樣后需直接收集,否則目標(biāo)化合物會損失,而且干擾很大,組分被洗脫的同時(shí),也把過多的雜質(zhì)和色素帶到洗脫液中;選擇硅膠60,用正己烷條件化,正己烷-二氯甲烷(體積比4∶1,)溶液淋洗后,大部分色素隨淋洗液流出,排除了基體中大量雜質(zhì)的干擾,回收率滿足要求。各組分的濃度均為0.005 μg/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液的色譜圖見圖1,添加0.02 mg/kg標(biāo)準(zhǔn)溶液的干辣椒樣品過硅膠60柱所得氣相色譜圖見圖2。試驗(yàn)結(jié)果表明,凈化后不但效果好,而且還可以降低樣品雜質(zhì)對儀器進(jìn)樣口、色譜柱、檢測器的污染。

    1—百菌清; 2—毒死蜱; 3—聯(lián)苯菊酯; 4—甲氰菊酯;5—氯氟氰菊酯; 6—氯菊酯; 7—氟氯氰菊酯; 8—氯氰菊酯;9—氟胺氰菊酯; 10—氰戊菊酯; 11—溴氰菊酯圖1 標(biāo)準(zhǔn)溶液氣相色譜圖

    1—百菌清; 2—毒死蜱; 3—聯(lián)苯菊酯; 4—甲氰菊酯;5—氯氟氰菊酯; 6—氯菊酯; 7—氟氯氰菊酯; 8—氯氰菊酯;9—氟胺氰菊酯; 10—氰戊菊酯; 11—溴氰菊酯 圖2 添加0.02 mg/kg標(biāo)準(zhǔn)溶液的干辣椒樣品氣相色譜圖

    2.4 洗脫溶劑量的確定

    將1.0 mL濃度為1.0 μg/ mL干辣椒基質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)溶液,在硅膠60柱上進(jìn)行梯度洗脫,每2 mL洗脫液收集一次,定容至1 mL,總共收集4次,當(dāng)二氯甲烷洗脫到6 mL時(shí),各組分可從凈化柱上全部被洗脫下來,所以選用6 mL洗脫液,這樣既節(jié)省了時(shí)間,又減少了洗脫出雜質(zhì)的量。

    2.5 柱箱溫度的選擇

    采用多階程序升溫的條件來進(jìn)行樣品色譜分離,可以將一些低沸點(diǎn)雜質(zhì)峰與目標(biāo)化合物分開,消除了基質(zhì)峰對化合物分析的干擾,提高了定性和定量分析的準(zhǔn)確度。

    2.6 線性方程和定量限

    分別選擇0.005、0.02、0.05、0.1、0.2、0.5、1.0 μg/mL 7個水平的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液進(jìn)樣分析,運(yùn)用儀器的“峰加和”功能對有異構(gòu)體的化合物進(jìn)行定量分析,每種化合物的線性方程、相關(guān)系數(shù)見表1。以被測組分的信號值大于基線平均噪音10倍時(shí)的濃度為定量限(考慮了整個檢測過程),各化合物的定量限列于表1。

    表1 線性方程、相關(guān)系數(shù)和定量限

    注:Y—峰面積,X—溶液濃度。

    2.7 回收試驗(yàn)及精密度試驗(yàn)

    在選擇的實(shí)驗(yàn)條件下,分別在空白干辣椒樣品中添加絕對量為0.05、0.1、0.5 μg標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的混合溶液,得到相當(dāng)于樣品質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.02、0.04、0.2 mg/kg的3個添加樣品,對每個濃度平行測定6次,回收率和相對標(biāo)準(zhǔn)偏差列于表1。由此可見,精密度和準(zhǔn)確度滿足檢測要求。

    表2 回收及精密度試驗(yàn)結(jié)果

    3 結(jié)語

    參照有關(guān)文獻(xiàn),在SPE凈化柱和色譜條件的選擇上,以及被測組分的種類等方面進(jìn)行了一些改進(jìn)。經(jīng)過大量干辣椒樣品實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,此方法具有操作簡便,分離效率和檢測靈敏度高,線性范圍寬等優(yōu)點(diǎn);降低了對色譜柱、氣化室和檢測器維護(hù)成本,提供了辣椒干及其制品中的11種有害農(nóng)藥的檢測方法。該法節(jié)約檢測成本、易于推廣、定量準(zhǔn)確。

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