崔志峰,沈情佳,汪琨,朱廷恒
(浙江工業(yè)大學(xué)生物與環(huán)境工程學(xué)院,浙江杭州,310032)
釀酒酵母CWY132以糖蜜為碳源生產(chǎn)2-苯乙醇的培養(yǎng)條件*
崔志峰,沈情佳,汪琨,朱廷恒
(浙江工業(yè)大學(xué)生物與環(huán)境工程學(xué)院,浙江杭州,310032)
對釀酒酵母CWY132利用糖蜜為碳源,生物轉(zhuǎn)化L-苯丙氨酸(L-Phe)生成2-苯乙醇的液-液兩相分批補(bǔ)料培養(yǎng)工藝進(jìn)行了研究。發(fā)現(xiàn)在以聚丙二醇(PPG1500)作為抽提劑的液-液兩相培養(yǎng)中,采用分批補(bǔ)料方式添加糖蜜和L-Phe使2-苯乙醇產(chǎn)量明顯提高。在0、4、8、12、24 h分別添加40g/L糖蜜,4、8 h分別添加12g/L、3g/L L-Phe的液-液兩相分批補(bǔ)料培養(yǎng)中,2-苯乙醇產(chǎn)量最高達(dá)到9.03g/L,其中抽提相中2-苯乙醇濃度22.5g/L,比優(yōu)化前的液-液兩相單批培養(yǎng)中的產(chǎn)量4.82g/L提高了87%。底物L(fēng)-Phe的摩爾轉(zhuǎn)化率達(dá)到0.82 mol/mol。
釀酒酵母,2-苯乙醇,糖蜜,分批補(bǔ)料
2-苯乙醇(2-phenylethanol,PEA) 是一種具有柔和細(xì)膩玫瑰氣味的芳香醇,大量應(yīng)用于玫瑰型及其他類型的香精配方中,在食品和日化用品等領(lǐng)域中也有廣泛應(yīng)用。天然2-苯乙醇一般從玫瑰等植物精油中提取,但由于原料來源和提取成本等原因而難以滿足市場需求。生物技術(shù)的發(fā)展為天然2-苯乙醇的生產(chǎn)提供了新的途徑,用酵母生物轉(zhuǎn)化生產(chǎn)天然2-苯乙醇周期短、原料便宜,具有大規(guī)模生產(chǎn)的潛在能力。
Etschmann等首次報道了酵母用糖蜜作為碳源產(chǎn)2-苯乙醇,并利用油醇(oleyl alcohol)/水兩相體系使2-苯乙醇產(chǎn)量大幅提高[1-2]。糖蜜作為制糖工業(yè)的副產(chǎn)物,含有豐富的可發(fā)酵糖和微量元素等其他營養(yǎng)成分,并具有廉價、易得等優(yōu)點(diǎn)。在前期研究中,課題組發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)室保存的釀酒酵母CWY132利用糖蜜作為碳源時的2-苯乙醇產(chǎn)量僅次于葡萄糖,而高于其他的碳源(蔗糖、麥芽糖、果糖、木糖)[3]。本課題組首先考察幾種由不同的有機(jī)溶劑萃取劑組成的有機(jī)溶劑/水兩相體系,重點(diǎn)研究了釀酒酵母CWY132在液-液兩相體系中以糖蜜為碳源生產(chǎn)2-苯乙醇的生物轉(zhuǎn)化過程特性。
高產(chǎn)酵母菌株CWY132,由S.cerevisiae AS 2.516通過紫外誘變得到(本實(shí)驗(yàn)室保存,專利號200710066884.0)。
固體瓊脂培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖20,蛋白胨20,酵母提取物10,瓊脂20,腺嘌呤0.04,pH 6.0~6.5。
液體種子培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖20,蛋白胨20,酵母提取物10,腺嘌呤0.04,pH 6.0~6.5。
發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):糖蜜60(或葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、果糖、木糖分別 30),MgSO40.5,KH2PO45,K2HPO42,酵母氮堿 0.17,L-Phe 5.8(通過過濾滅菌),pH值5.0。裝液量為50mL/500mL搖瓶。
單相培養(yǎng):從固體瓊脂培養(yǎng)基上挑取1環(huán)新鮮的菌落接入裝有5mL液體種子培養(yǎng)基的試管中,28℃,200 r/min條件下振蕩培養(yǎng)16 h,測OD600,按終濃度為1×107個細(xì)胞/mL的接種量轉(zhuǎn)接入發(fā)酵培養(yǎng)基。隨后在28℃,轉(zhuǎn)速200 r/min條件下振蕩培養(yǎng)48 h。
兩相培養(yǎng)體系:在培養(yǎng)12 h時,再往上述單相培養(yǎng)體系中加入一定體積的萃取劑(萃取劑以無菌方式加入)。
發(fā)酵液經(jīng)12 000 r/min離心15 min后分別收集上清液和菌體,取少量上清液用高效液相色譜法測定L-Phe和2-苯乙醇含量[3]。菌體沉淀用蒸餾水洗滌3次后烘干,稱細(xì)胞干重,測定生物量。
兩相培養(yǎng)體系中的2-苯乙醇含量測定,先將發(fā)酵液以12 000 r/min離心5 min得到水相和萃取相,水相直接用高效液相色譜法測2-苯乙醇含量,萃取相則用5倍甲醇稀釋后再測2-苯乙醇含量,總含量由如下公式計算得到:
其中,PPEA:2-苯乙醇產(chǎn)量;C水相:水相中的2-苯乙醇含量;C有機(jī)相:有機(jī)相中2-苯乙醇產(chǎn)量;V水相:水相的體積;V有機(jī)相:有機(jī)相的體積。
殘?zhí)菧y定:3,5-二硝基水楊酸比色法[4]。
選擇合適的有機(jī)溶劑是在液-液兩相體系中成功進(jìn)行生物轉(zhuǎn)化的關(guān)鍵之一。對生物催化劑的生物相容性以及對底物和產(chǎn)物合適的分配系數(shù)是選擇有機(jī)溶劑的2個主要標(biāo)準(zhǔn)[5]。其中有機(jī)溶劑的生物相容性可以用其在標(biāo)準(zhǔn)水/正辛醇體系中的分配系數(shù)的對數(shù)值logP值衡量。理論研究顯示,logP<4的有機(jī)溶劑對釀酒酵母細(xì)胞有毒性,logP在4~6之間的有機(jī)溶劑不確定,而logP>6的有機(jī)溶劑則無毒性[6]。結(jié)合已報道的研究結(jié)果,油酸和聚丙二醇(polypropylene glycol,PPG)是較為適用的萃取劑。
課題組進(jìn)一步比較了油酸和聚丙二醇對于酵母CWY132生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)2-苯乙醇的影響及萃取比例的確定。使用的聚丙二醇分子量為1 500(PPG1500)。在分別用油酸和PPG1500萃取標(biāo)準(zhǔn)品2-苯乙醇水溶液的時候,兩者都能在較短時間內(nèi)有效地將2-苯乙醇抽提到有機(jī)相中;而應(yīng)用在活細(xì)胞轉(zhuǎn)化過程中,兩者則差異較大。表1是生物轉(zhuǎn)化過程中酵母產(chǎn)2-苯乙醇含量的高效液相色譜測定結(jié)果。試驗(yàn)中,培養(yǎng)體系為500mL搖瓶中分別裝發(fā)酵液100mL(單相)、發(fā)酵液/油酸各 50mL,以及發(fā)酵液/PPG1500各50mL。
表1 兩相體系中有機(jī)溶劑對酵母CWY132生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)2-苯乙醇的影響
結(jié)果顯示,水/PPG1500兩相體系的產(chǎn)量最高,且由于分配系數(shù)較大,通過產(chǎn)物原位轉(zhuǎn)移(ISPR)使殘留在水相中的2-苯乙醇降低到了0.12g/L,可有效解除水相中的產(chǎn)物抑制作用。另一方面,油酸與水易形成乳化狀態(tài),而且從高效液相色譜結(jié)果可見油酸萃取到的2-苯乙醇中雜質(zhì)明顯偏多(結(jié)果待發(fā)表),也為后續(xù)的分離純化帶來不便。因此,我們認(rèn)為PPG1500是更為有利的萃取劑。此處兩相體系的產(chǎn)量并不比單水相高出很多,分析其原因主要是在培養(yǎng)體系中由于底物L(fēng)-Phe量不多(5.8g/L),產(chǎn)生的2-苯乙醇雖已達(dá)到較高的轉(zhuǎn)化率但終濃度仍不高,產(chǎn)物抑制作用不明顯。因此以下試驗(yàn)中將提高底物L(fēng)Phe的量。
在水/有機(jī)溶劑兩相體系中,相體積比不但影響界面面積,并且對通氣量也有一定程度的影響,從而影響生物轉(zhuǎn)化速率。試驗(yàn)中,培養(yǎng)體系為250mL搖瓶中裝發(fā)酵液50mL,初始底物L(fēng)-Phe濃度10g/L,糖蜜60g/L,于12 h時向50mL發(fā)酵液中分別添加10、20、30、40、50mL 的 PPG1500,200 r/min 條件下振蕩培養(yǎng)48 h測定2-苯乙醇含量。結(jié)果如圖1所示。向50mL發(fā)酵培養(yǎng)基中加入20mL PPG1500所得的2-苯乙醇產(chǎn)量最高(4.82g/L)。隨著加入的PPG1500量進(jìn)一步增大,2-苯乙醇產(chǎn)量逐級遞減,其原因可能是PPG1500密度小,在振蕩培養(yǎng)的過程中覆蓋在水相上,影響了通氣量從而抑制菌體的生長,導(dǎo)致了2-苯乙醇的產(chǎn)量減少。而當(dāng)PPG1500的量降低到10mL時,由于分配系數(shù)的限制,殘留在水相中的2-苯乙醇明顯增多,從而影響了菌體的生長代謝。
圖1 液-液兩相體系中PPG1500加入量的優(yōu)化
以PPG1500為抽提相的液-液兩相ISPR單批培養(yǎng)過程如圖2所示,培養(yǎng)體系為250mL搖瓶中裝發(fā)酵液50mL,初始底物L(fēng)-Phe濃度10g/L,糖蜜60g/L,于12 h時加入20mL PPG1500,定時取樣分析后繪制曲線。
菌種轉(zhuǎn)接后延滯期非常短,培養(yǎng)前期生物量迅速增長,12 h后生長才逐漸平穩(wěn),48 h時生物量(細(xì)胞干重)接近10g/L。與此相應(yīng)的,在接種12 h時殘?zhí)且呀抵脸跏剂康?%左右,L-Phe也降至初始量的30%左右,隨后才逐漸平穩(wěn)。產(chǎn)物2-苯乙醇則隨著培養(yǎng)時間逐漸積累,在菌體的對數(shù)生長后期(48 h)時產(chǎn)量達(dá)到最高。Wittmann等曾報道Kluyveromyces marxianus產(chǎn)2-苯乙醇主要是在對數(shù)生長期[7]。因此,采用補(bǔ)料分批培養(yǎng)體系,延長酵母菌株CWY 132的對數(shù)生長后期時間以及添加底物L(fēng)-Phe,是進(jìn)一步提高2-苯乙醇產(chǎn)量的可行途徑。
圖2 液-液兩相單批培養(yǎng)過程
在分批補(bǔ)料培養(yǎng)中,分別在 0、4、8、12、24 h 補(bǔ)加一定量的糖蜜,L-Phe初始量增加到15g/L,12 h時加入20mL的PPG1500,結(jié)果如表2所示。
表2 糖蜜的分批補(bǔ)料
表2結(jié)果表明,糖蜜分批補(bǔ)加對2-苯乙醇產(chǎn)量的促進(jìn)作用十分顯著,隨著總糖量的增加,體系的2-苯乙醇產(chǎn)量隨之增長,總糖蜜為200g/L時產(chǎn)量最高達(dá)到了6.86g/L。而當(dāng)總糖蜜進(jìn)一步增加時產(chǎn)量反而開始下降,由此可見,高糖濃度對2-苯乙醇產(chǎn)量也有抑制作用。因此,將碳源分批補(bǔ)加,使體系中的糖濃度控制在一定的水平,有利于2-苯乙醇生產(chǎn)。
在上述總糖蜜為200g/L的分批補(bǔ)料培養(yǎng)(Ⅳ)中,將L-Phe分批次于不同時間添加,結(jié)果如表3所示。L-Phe的添加時間及方式對2-苯乙醇產(chǎn)量有顯著的影響。在發(fā)酵初期(0 h)一次性加入15g/L L-Phe,2-苯乙醇產(chǎn)量最低;而接種4、8 h后分別加入12、3g/L的L-Phe的分批補(bǔ)料培養(yǎng)中,2-苯乙醇產(chǎn)量最高為9.03g/L,摩爾轉(zhuǎn)化率達(dá)到0.82 mol/mol,其中抽提相中2-苯乙醇濃度高達(dá)22.5g/L。
表3 L-Phe的分批補(bǔ)料培養(yǎng)
產(chǎn)物抑制是酵母生物轉(zhuǎn)化生產(chǎn)2-苯乙醇中的主要限制因素,而產(chǎn)物原位轉(zhuǎn)移技術(shù)是最有效的解決方法之一。Stark等在研究Saccharomyces cerevisiae Giv 2009產(chǎn)2-苯乙醇中,利用油酸/水兩相生物轉(zhuǎn)化體系,166 h后使2-苯乙醇最終總濃度達(dá)到了12.6g/L,摩爾轉(zhuǎn)化率為 0.91 mol/mol[8]。梅建鳳等[9]利用油酸/水兩相體系(3∶1)轉(zhuǎn)化培養(yǎng)18 h后,14g/L L-Phe生物轉(zhuǎn)化合成2-苯乙醇的總濃度為5.03g/L,摩爾轉(zhuǎn)化率為0.49 mol/mol。除了液-液兩相培養(yǎng)方式外,Stark[10]等報道了采用癸二酸二丁酯微膠囊,關(guān)昂[11]等報道了使用大孔樹脂固體吸附的原位產(chǎn)物分離技術(shù)生產(chǎn)2-苯乙醇,也都取得了良好的效果。但是在上述研究中,碳源都是葡萄糖而不是糖蜜。
糖蜜的主成分為蔗糖是制糖工業(yè)的副產(chǎn)物,以糖蜜為碳源生產(chǎn)2-苯乙醇可以大幅度降低生產(chǎn)成本,但是相關(guān)的研究報道還較少。Etschmann等以糖蜜為碳源對Kluyveromyces marxianus CBS 600在油醇(oleyl alcohol)/水兩相體系的生物轉(zhuǎn)化條件進(jìn)行了優(yōu)化,使2-苯乙醇產(chǎn)量提高了87%,達(dá)到5.6g/L,摩爾轉(zhuǎn)化率為 0.83 mol/mol[2]。隨后,Etschmann 等人又利用PPG1200/水兩相體系,得到2-苯乙醇產(chǎn)量為10.2g/L,摩爾轉(zhuǎn)化率為 0.82 mol/mol[12]。
本文選用國產(chǎn)的PPG1500作為ISPR技術(shù)中的抽提劑,對釀酒酵母CWY132以糖蜜為碳源生產(chǎn)2-苯乙醇的液-液兩相培養(yǎng)進(jìn)行了研究。結(jié)果發(fā)現(xiàn)液-液兩相培養(yǎng)并結(jié)合分批補(bǔ)料工藝可以大幅度提高2-苯乙醇的產(chǎn)量,在PPG1500的添加量與培養(yǎng)基的體積比為2∶5的液-液兩相單批培養(yǎng)中,2-苯乙醇的產(chǎn)量為4.82g/L(表2);但在0、4、8、12、24 h 分別添加40g/L糖蜜,并且在4、8 h分別添加12、3g/L L-Phe的液-液兩相分批補(bǔ)料培養(yǎng)中,2-苯乙醇的產(chǎn)量提高了87%,達(dá)到9.03g/L,底物的摩爾轉(zhuǎn)化率為0.82 mol/mol(表3)。這一產(chǎn)量已達(dá)到Etschmann等報道的產(chǎn)量水平[12]。據(jù)推測,延長對數(shù)生長后期時間以及提高底物L(fēng)-Phe的利用率可能是提高釀酒酵母CWY132以糖蜜為碳源生產(chǎn)2-苯乙醇效率的重要原因。
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Studies on the Fermentation Conditions for Production of 2-phenylethanol by Saccharomyces cerevisiae CWY132 in a Molasses-based Medium
Cui Zhi-feng,Shen Qing-jia,Wang Kun,Zhu Ting-heng
(College of Biology and Environmental Engineering,Zhejiang University of Technology,Hangzhou 310032,China)
Two-phase fed-batch fermentation conditions for the production of 2-phenylethanol by Saccharomyces cerevisiae CWY132 in a molasses-based medium were studied.The 2-phenylethanol was obviously increased by fedbatch for molasses and L-phenylalanine in the Aqueous-polypropylene glycol two-phase culture.Under the optimized two-phase fed-batch conditions,the yield of 2-phenylethanol reached up to 9.03g/L,increased by 87%compared with the original 4.82g/L.The molar conversion rate of L-phenylalanine to 2-phenylethanol rises to 0.82 mol/mol.
Saccharomyces cerevisiae,2-phenylethanol,molasses,fed-batch culture
博士,副教授。
*浙江省教育廳項(xiàng)目(20070188)
2010-03-08,改回日期:2010-09-15