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    豬體細(xì)胞核移植電融合參數(shù)的研究

    2010-09-05 10:11:12聞福安羅光斌任建成
    飼料博覽 2010年2期
    關(guān)鍵詞:時程卵裂體細(xì)胞

    聞福安,羅光斌,任建成

    (沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)畜牧獸醫(yī)學(xué)院,沈陽 110161)

    豬體細(xì)胞核移植中,去核卵母細(xì)胞經(jīng)顯微操作注入顆粒細(xì)胞后,經(jīng)過電融合才能繼續(xù)發(fā)育。影響豬體細(xì)胞核移植的一個重要環(huán)節(jié)就是卵母細(xì)胞供體核的融合,提高融合效率可以提高重構(gòu)胚基因組編程和發(fā)育效率。電融合是核移植操作中廣為使用的一種無損傷性的細(xì)胞融合方法,電刺激不僅能使細(xì)胞間發(fā)生融合,而且還能激活卵母細(xì)胞,因此對核移植后重組胚的形成和激活起著非常關(guān)鍵的作用[1]。電融合操作中有多個參數(shù),各個參數(shù)的變化以及不同參數(shù)的組合直接影響到重組胚的形成、激活以及后續(xù)發(fā)育的效率[2]。本研究主要對比了幾種不同電融合參數(shù)的核融合率以及不同融合參數(shù)對核移植卵母細(xì)胞卵裂率的影響,旨在尋找最佳融合參數(shù)組合,為提高豬體細(xì)胞核移植效率提供技術(shù)參考。

    1 材料與方法

    1.1 試劑

    PMSG、HCG購自寧波第二激素廠,其他試劑均購于Sigma公司。

    1.2 卵巢的采集

    本試驗(yàn)所用卵巢均采集于東生屠宰場,采集到的卵巢放入31~37℃含雙抗生理鹽水中,2 h內(nèi)運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室[3]。

    1.3 卵母細(xì)胞的采集與成熟培養(yǎng)

    采用抽吸法采集卵母細(xì)胞。將運(yùn)送回實(shí)驗(yàn)室的卵巢用含有雙抗的生理鹽水沖洗幾遍,然后用帶有12號針頭的10 mL無菌注射器抽吸卵泡液。抽吸前先用注射器抽取少量PBS緩沖液,然后選取直徑 2~6 mm、卵泡液清亮的卵泡抽吸卵泡液[4]。將卵泡液移入試管中保溫沉淀,在體視顯微鏡(MOT IC SMZ-168)下挑選質(zhì)量好的卵丘-卵母細(xì)胞復(fù)合體(COCs)。用體外成熟液清洗COCs 3次后進(jìn)行體外成熟培養(yǎng)。所用的體外成熟培養(yǎng)液為NCSU-23+10 IU·mL-1PMSG+10 IU·mL-1HCG+10%FBS。

    本試驗(yàn)采用微滴法培養(yǎng)卵母細(xì)胞,以礦物油覆蓋,每個微滴50 μL,放入10~15枚卵,39℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)44~48 h。

    1.4 卵母細(xì)胞成熟率檢查

    卵母細(xì)胞成熟培養(yǎng)后,用0.1%透明質(zhì)酸酶脫去顆粒細(xì)胞,在實(shí)體顯微鏡下觀察。以排出第一極體作為卵母細(xì)胞成熟標(biāo)準(zhǔn)。脫去的顆粒細(xì)胞用操作液(NCSU-23 含 FBS 10%,CB 7.5 μg·mL-1)清洗 3次后作為供體細(xì)胞待用。

    1.5 去核

    將成熟檢查后排出極體的卵母細(xì)胞移入操作液中,37℃平衡15 min,再移至覆蓋礦物油的操作液滴中顯微操作。去核方法采用二步擠壓法,先用固定針固定卵母細(xì)胞使第一極體位于12點(diǎn)方向。將玻璃針在第一極體兩側(cè)1/5~1/4卵周長處,沿第一極體(或卵周隙擴(kuò)大的部分)刺穿透明帶后,挑開透明帶或在固定管上摩擦幾下,在透明帶上會形成1/5~1/4卵周長的切口。將玻璃針換成鈍端去核管后,調(diào)整卵母細(xì)胞的透明帶切口方向,使其位于固定管的上方或下方,直接用鈍端去核管在透明帶切口的斜下方推擠卵母細(xì)胞,使第一極體連同其附近的1/4~1/3胞質(zhì)溢出透明帶,然后用鈍端去核管吸除溢出透明帶的第一極體及其附近的胞質(zhì)。

    1.6 注核

    挑選直徑為15~20 μm、折光性強(qiáng)、圓形、光滑的顆粒細(xì)胞(成熟培養(yǎng)卵母細(xì)胞用0.1%透明質(zhì)酸酶處理后脫離的顆粒細(xì)胞),從去核切口放入卵周隙,用注射針點(diǎn)壓透明帶,使供體細(xì)胞與受體卵的胞膜接觸緊密,每批操作30個卵母細(xì)胞,結(jié)束后將供體細(xì)胞-卵胞質(zhì)構(gòu)成的重構(gòu)卵轉(zhuǎn)移到NCSU-23+10%FBS中,在38.5℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱中恢復(fù)1.5 h。

    1.7 細(xì)胞融合及培養(yǎng)

    本試驗(yàn)所采用的細(xì)胞融合儀為富士平公司ET-3型細(xì)胞融合儀,采用針式電極。將已注入卵丘的去核卵母細(xì)胞在融合液(0.3 mol·L-1甘露醇+0.1 mmol·L-1MgCl2+0.05 mmol·L-1CaCl2)中平衡 2 min,在顯微上用電極輕輕轉(zhuǎn)動重組胚,使供核細(xì)胞與去核卵母細(xì)胞的接觸面與電場方向垂直,然后設(shè)定不同的場強(qiáng)(0.4、0.8、1.2、1.6 kV·cm-1)和不同脈沖時程(20、30、40、50 μs)進(jìn)行融合。為簡化試驗(yàn),本試驗(yàn)只研究1次脈沖刺激的最佳融合條件。

    根據(jù)李日聰?shù)仍囼?yàn),選擇20 μs脈沖時程作為初始條件[5]。融合后用NCSU 23+10%FBS胚胎培養(yǎng)液清洗3次,放入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)約30 min,在顯微鏡下觀察,以卵母細(xì)胞和卵丘細(xì)胞膜的連接是否消失來判斷卵丘細(xì)胞是否進(jìn)入卵母細(xì)胞中。將卵母細(xì)胞轉(zhuǎn)入NCSU 23+10%FBS的胚胎培養(yǎng)液中進(jìn)行微滴培養(yǎng),每50 μL 10~15枚,上蓋礦物油,在 38.5℃、飽和濕度的 5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每24 h進(jìn)行半量換液。44~48 h后觀察卵裂情況,記錄卵裂率。

    1.8 數(shù)據(jù)處理

    采用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件對試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行單因素方差分析,采用Ducan′s法進(jìn)行多重比較。

    2 試驗(yàn)結(jié)果

    2.1 不同電場強(qiáng)度對重構(gòu)胚融合率及卵裂率的影響

    20 μs脈沖過程時,不同電場強(qiáng)度對重構(gòu)胚融合率及卵裂率的影響見表1。

    由表1可知,當(dāng)場強(qiáng)為0.8 kV·cm-1時,融合率為 57.5%,顯著高于 0.4、1.2、1.6 kV·cm-1組(P<0.05)。0.4 kV·cm-1組融合率與 1.2、1.6 kV·cm-1組相比差異顯著(P<0.05)。1.2、1.6 kV·cm-1組間融合率差異不顯著(P>0.05)。

    表1 不同場強(qiáng)對重構(gòu)胚融合率及發(fā)育率的影響

    融合后再培養(yǎng)44~48 h,發(fā)現(xiàn)0.8 kV·cm-1組卵裂率與 1.2 kV·cm-1組相比差異不顯著(P>0.05),0.4 kV·cm-1組卵裂率與 1.6 kV·cm-1組差異不顯著(P>0.05),其余各組差異顯著(P>0.05)。

    2.2 不同脈沖時程對重構(gòu)胚融合率及卵裂率的影響

    0.8 kV·cm-1場強(qiáng)時,不同脈沖時程對重構(gòu)胚融合率及卵裂率的影響見表2。

    表2 不同脈沖時程對重構(gòu)胚融合率及發(fā)育率的影響

    由表2可知,脈沖時程為20 μs時融合率與30、40、50 μs組差異顯著(P<0.05),其余各組融合率差異均不顯著。融合后培養(yǎng)44~48 h,觀察卵裂情況發(fā)現(xiàn),20 μs組與 30 μs組差異不顯著(P>0.05),40 與 50 μs組差異不顯著(P>0.05),其余各組均差異顯著(P<0.05)。

    3 討論

    電場強(qiáng)度和脈沖時程要保持一定比例,脈沖時程和次數(shù)一定時,場強(qiáng)增大可以使微孔直接和數(shù)目增加,但增大到一定限度時,則造成不可逆損傷,細(xì)胞裂解[6]。場強(qiáng)一定時,脈沖時程的增加同樣會使顆粒細(xì)胞(供體細(xì)胞)與卵母細(xì)胞(受體細(xì)胞)質(zhì)膜間接觸面的微孔數(shù)增多,有益于細(xì)胞融合,但超過一定限度同樣會造成不可逆損傷,造成細(xì)胞死亡,過度的電刺激還會使細(xì)胞染色體解離,出現(xiàn)染色體不正常構(gòu)建,影響核移植胚的發(fā)育。Ozil等研究結(jié)果顯示,電脈沖時間為35和100 μs時,胚胎融合和發(fā)育率無差異;超過100 μs時,融合率顯著降低,卵裂球裂解顯著增多,胚胎發(fā)育率降低[7]。這與本試驗(yàn) 30、40、50 μs組差異不顯著的結(jié)果相一致。

    本試驗(yàn)表明,場強(qiáng)為0.8 kV·cm-1時細(xì)胞融合率最高,與 0.4、1.2、1.6 kV·cm-1組差異均顯著(P<0.05)。0.4 kV·cm-1組由于場強(qiáng)過低,在 20 μs時程搭配下,細(xì)胞膜不能有效穿孔或穿孔面積數(shù)量不夠,不能誘導(dǎo)有效地融合。當(dāng)場強(qiáng)由0.80 kV·cm-1上升到1.6 kV·cm-1時,場強(qiáng)過強(qiáng),形成較多不可以擊穿,融合率下降,胚胎發(fā)育能力受損,細(xì)胞率降低。本試驗(yàn)0.8 kV·cm-1組與1.2 kV·cm-1組細(xì)胞率差異不顯著(P>0.05),可能是電刺激造成細(xì)胞發(fā)育不良的場強(qiáng)要比造成融合率下降的場強(qiáng)高。

    本試驗(yàn)還表明,在場強(qiáng)固定為0.8 kV·cm-1情況下,20 μs的脈沖時程細(xì)胞融合率最佳,顯著高于其他 3組(P<0.05)。說明 80 kV·cm-1場強(qiáng)、1次脈沖、20 μs脈沖時程的電融合參數(shù)對豬核移植胚有良好的融合效果。20 μs組與 30 μs組細(xì)胞率差異不顯著(P>0.05),融合率差異顯著(P<0.05)又一次說明了對核移植胚發(fā)育造成不良影響的電刺激比對融合造成不良影響的電刺激強(qiáng)度高。

    4 結(jié)論

    在本實(shí)驗(yàn)室條件下,豬體細(xì)胞核移植電融合最佳參數(shù)為 0.8 kV·cm-1、20 μs、1 次脈沖。

    [1]陳大元.受精生物學(xué)[M].北京:科學(xué)出版社,2000.

    [2]江培洲,沈新明,喬貴林,等.不同電融合條件對小鼠卵丘細(xì)胞核移植重組胚融合和早期發(fā)育的影響[J].第一軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2005,25(2):156-159.

    [3]文國藝.卵巢保存溫度對豬體外受精的影響[J].廣西農(nóng)學(xué)報(bào),2000(1):22-24.

    [4]張莉,馮書堂.影響豬卵母細(xì)胞體外成熟的相關(guān)因素[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,39(9):1 891-1 896.

    [5]李日聰,王錦,薛林濤,等.豬體細(xì)胞核移植電融合參數(shù)的研究[J].廣西農(nóng)業(yè)生物科學(xué),2008,27(4):304-308.

    [6]周琪,譚景和.哺乳動物細(xì)胞電融合技術(shù)及其影響因素的研究進(jìn)展[J].生物技術(shù),1993,3(6):4-8.

    [7]Ozil J P,Modlinski J A.Effects of electrical field on the fusion ratio and development of towcell rabbit embryos[J].Embryol Exp Morphol,1986,96:211-228.

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