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    凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵條件的優(yōu)化

    2010-09-04 03:00:42高書鋒張德元許麗娟魏小武
    湖南農(nóng)業(yè)科學(xué) 2010年23期
    關(guān)鍵詞:裝液活菌氮源

    高書鋒,任 杰,張德元,陳 薇,許麗娟,魏小武

    (湖南省微生物研究所,湖南 長沙 410009)

    近年研究表明,益生菌可改善動物腸道菌群的平衡,增強(qiáng)動物機(jī)體免疫力,提高動物消化功能,促進(jìn)動物生長發(fā)育和提高動物生產(chǎn)性能等益生作用,其作為綠色飼料添加劑取代抗生素已得到廣泛應(yīng)用[1]。

    凝結(jié)芽孢桿菌既產(chǎn)乳酸又產(chǎn)芽孢,具有一般乳酸菌維持腸道微生態(tài)平衡,刺激免疫,提高動物消化功能等益生作用,還具有芽孢菌抗胃酸、抗膽堿、抗熱和抗干燥等抗逆能力[2]。李國建[3]研究證實(shí)生長肥育豬飼料中添加凝結(jié)芽孢桿菌制劑可顯著提高豬的平均日增重,降低飼料成本;Adami and Cavazzoni[4]發(fā)現(xiàn)凝結(jié)芽孢桿菌對仔豬糞中的微生物區(qū)系有明顯的影響,且這種益生菌有利于改善動物的生產(chǎn)性能。凝結(jié)芽孢桿菌突出的飼喂功能和良好的加工性能,使其必將成為飼料添加劑行業(yè)中不可替代的重要成員。影響益生菌效果的因素有:菌種、活菌含量、使用階段、制劑的穩(wěn)定性等,其中提高活菌數(shù)是發(fā)酵生產(chǎn)微生態(tài)制劑的關(guān)鍵技術(shù),也是微生態(tài)制劑發(fā)揮生物學(xué)作用的重要因素[5]。筆者實(shí)驗(yàn)室篩選出一株畜禽用益生菌,經(jīng)鑒定為凝結(jié)芽孢桿菌,本研究以提高活菌數(shù)為目標(biāo),初步探討凝結(jié)芽孢桿菌搖瓶液體發(fā)酵條件,優(yōu)化發(fā)酵工藝,為進(jìn)一步的發(fā)酵罐生產(chǎn)提供依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌種凝結(jié)芽孢桿菌(Bacillus coagulans)菌種,由湖南省微生物研究所實(shí)驗(yàn)室篩選保藏。

    1.1.2 培養(yǎng)基 斜面培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L,酵母浸出物5 g/L,氯化鈉5 g/L,瓊脂20 g/L,pH=7.0~7.2;種子培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L,酵母浸出物5 g/L,氯化鈉5 g/L,pH=7.0~7.2;基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖 10 g/L,蛋白胨 10 g/L,KH2PO41.0 g/L、MgSO4·7H2O 0.5 g/L,NaCl 5 g/L、蒸餾水 1 000 mL,pH 值7.0~7.2。

    1.2 方法

    1.2.1 菌液制備 (1)菌種活化:將凝結(jié)芽孢桿菌菌種活化后轉(zhuǎn)接到斜面培養(yǎng)基,35℃培養(yǎng)24 h,備用。(2)種子液制備:取3環(huán)活化菌種,接入裝有100 mL種子培養(yǎng)基的500 mL三角瓶中,35℃、220 r/min培養(yǎng)24 h。

    1.2.2 活菌計數(shù)方法 活菌總數(shù)測定:采用梯度稀釋后,傾注平板菌落計數(shù)法。

    1.2.3 培養(yǎng)條件優(yōu)化 (1)培養(yǎng)溫度選擇 :按1%的接種量將種齡為24 h的凝結(jié)芽孢桿菌種子液分別轉(zhuǎn)接到裝液量為20%、pH=7.0的發(fā)酵培養(yǎng)基,分別置 30、35、40、45℃搖床發(fā)酵,轉(zhuǎn)速為 200 r/min,培養(yǎng)48 h,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳發(fā)酵溫度。

    (2)培養(yǎng)轉(zhuǎn)速選擇:按1%的接種量將種齡為24 h的凝結(jié)芽孢桿菌種子液分別轉(zhuǎn)接到裝液量為20%、pH=7.0 的發(fā)酵培養(yǎng)基,分別置 140、180、220、260 r/min搖床發(fā)酵,溫度35℃,發(fā)酵48 h,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳發(fā)酵轉(zhuǎn)速。

    (3)裝液量選擇:按1%的接種量將種齡為24 h的凝結(jié)芽孢桿菌種子液分別轉(zhuǎn)接到裝液量分別為5%、10%、15%、20%,初始pH=7.0的發(fā)酵培養(yǎng)基,置35℃、220 r/min搖床發(fā)酵,發(fā)酵48 h,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳裝液量。

    (4)接種量選擇:分別以1%、3%、5%、7%和10%的接種量將種齡為24 h的凝結(jié)芽孢桿菌種子液接入初始裝液量為10%、pH值為7.0的發(fā)酵培養(yǎng)基,置35℃、220 r/min搖床發(fā)酵,發(fā)酵48 h,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳接種量。

    (5)初始pH值選擇:分別以3%的接種量將種齡為24h的凝結(jié)芽孢桿菌種子液接入初始pH分別為 5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0 和 8.5,裝液量為10%的發(fā)酵培養(yǎng)基,置35℃、220 r/min搖床發(fā)酵,發(fā)酵48 h,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳初始pH。

    (6)發(fā)酵時間選擇:分別以3%的接種量將種齡為24h的凝結(jié)芽孢桿菌種子液接入初始pH為7.0、裝液量為10%的發(fā)酵培養(yǎng)基,置35℃、220 r/min 搖床發(fā)酵,發(fā)酵 18、24、30、36、42、48 h 后,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳發(fā)酵時間。

    1.2.4 培養(yǎng)基單因素篩選 (1)碳源篩選:以基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中葡萄糖的碳含量計算碳濃度,將基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中的碳源分別用其他碳源替換,接種量為3%,裝液量為10%,置35℃、220 r/min搖床發(fā)酵,發(fā)酵42 h,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳碳源。

    (2)氮源篩選:以基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中蛋白胨的氮含量計算氮濃度,將基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中的氮源分別用其他氮源替換,接種量為3%,裝液量為10%,置35℃、220 r/min搖床發(fā)酵,發(fā)酵42 h,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳氮源。

    (3)磷源篩選:以基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中磷酸鹽的磷含量計算磷濃度,將基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中的磷源分別用 KH2PO4、1/2 KH2PO4+1/2 K2HPO4和 K2HPO4替換,接種量為3%,裝液量為10%,置35℃、220 r/min搖床發(fā)酵,發(fā)酵42 h,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳磷源。

    (4)無機(jī)鹽篩選:去掉基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中的無機(jī)鹽,添加0.002 mol/L的不同種類的無機(jī)鹽,以不加任何無機(jī)鹽的發(fā)酵培養(yǎng)基作為對照,接種量為3%,裝液量為10%,置35℃、220 r/min搖床發(fā)酵,發(fā)酵42 h,分別對發(fā)酵液活菌數(shù)進(jìn)行測定,確定最佳無機(jī)鹽類。

    1.2.5 正交實(shí)驗(yàn) 根據(jù)凝結(jié)芽孢子桿菌發(fā)酵條件單因素優(yōu)化實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選出最佳的碳源、氮源、磷源(葡萄糖、酵母膏和磷酸二氫鉀)及2種對發(fā)酵水平影響較大的無機(jī)鹽類(MnSO4·H2O和 MgSO4·7H2O),設(shè)計五因素四水平正交試驗(yàn),選用L16(45)正交表進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)(表1)。并對結(jié)果進(jìn)行直觀分析和方差分析,優(yōu)化培養(yǎng)基組成。

    表1 發(fā)酵培養(yǎng)基正交實(shí)驗(yàn)的因素和水平設(shè)計 (g/L)

    2 結(jié)果與分析

    2.1 培養(yǎng)條件優(yōu)化

    2.1.1 不同溫度對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響由圖1可知:不同溫度對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平有一定影響,發(fā)酵溫度為30℃和35℃時,發(fā)酵液的活菌數(shù)較高,分別為 7.8×108cfu/mL 和 8.6×108cfu/mL,40℃和45℃發(fā)酵水平較低,分別為3.7×108cfu/mL和2.7×108cfu/mL,初步確定最佳發(fā)酵溫度為35℃。

    2.1.2 不同轉(zhuǎn)速對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響由圖2可知:不同轉(zhuǎn)速對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平有一定影響,其中轉(zhuǎn)速為220 r/min時,發(fā)酵液的活菌數(shù)最高,為 12.4×108cfu/mL,轉(zhuǎn)速為 140、180、260 r/min時,發(fā)酵液活菌數(shù)較低,分別為7.8×108、8.3×108、6.5×108cfu/mL,初步確定最佳發(fā)酵轉(zhuǎn)速為220 r/min。

    圖1 不同溫度對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響

    圖2 不同轉(zhuǎn)速對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響

    2.1.3 不同裝液量對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響 由圖3可知:不同裝液量對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平有一定的影響,裝液量為5%和10%時,發(fā)酵液活菌數(shù)相當(dāng),分別為8.8×108cfu/mL和8.5×108cfu/mL;裝液量為15%和20%時,發(fā)酵液活菌數(shù)分別為6×108cfu/mL和5.8×108cfu/mL。從一定程度上說明,溶氧量越高,發(fā)酵水平越高。鑒于裝液量太少,發(fā)酵液有一定蒸發(fā)量,易造成實(shí)驗(yàn)結(jié)果偏差,因此確定最佳裝液量為10%。

    圖3 不同裝液量對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響

    2.1.4 不同接種量對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響 由圖4可知:不同接種量對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平影響較大,接種量為1%、3%、5%、7%、10%時,發(fā)酵液活菌數(shù)分別為 12×108,23×108,18×108,8×108、10×108cfu/mL,接種量對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平起著關(guān)鍵作用,過高或過低的接種量均不利于菌體的生長,因此,初步確定凝結(jié)芽孢桿菌最佳接種量為3%。

    圖4 凝結(jié)芽孢桿菌液體發(fā)酵不同接種量篩選結(jié)果

    2.1.5 不同初始pH對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響 由圖5可知:不同初始pH對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平影響較大,發(fā)酵液初始pH=7.0時,發(fā)酵液的活菌數(shù)最高,為20.2×108cfu/mL,其次為pH=6.5和pH=7.5時,活菌數(shù)分別為15.1×108cfu/mL和12.7×108cfu/mL,pH=5.0和 pH=8.5時,活菌數(shù)最低,分別為 1.3×108cfu/mL 和 2.0×108cfu/mL。因此,初步確定發(fā)酵培養(yǎng)基最佳初始pH值為:pH=7.0。

    圖5 凝結(jié)芽孢桿菌搖瓶發(fā)酵不同初始pH篩選結(jié)果

    2.1.6 不同發(fā)酵時間對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響 由圖6可知:不同發(fā)酵時間對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平也影響較大,發(fā)酵時間為42 h時,發(fā)酵液活菌數(shù)最高,為22.1×108cfu/mL,發(fā)酵時間為36 h和48 h時,發(fā)酵液活菌數(shù)較高,為15.0×108cfu/mL和16.3×108cfu/mL,其他發(fā)酵時間的活菌數(shù)較低,初步確定最佳發(fā)酵時間為42 h。

    圖6 不同發(fā)酵時間對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響

    2.2 培養(yǎng)基組分優(yōu)化

    2.2.1 不同碳源對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響由圖7可知,葡萄糖作為碳源時,發(fā)酵液活菌數(shù)最高,為26.4×108cfu/mL,淀粉作為碳源時,活菌數(shù)較高,為21.2×108cfu/mL,其他碳源發(fā)酵水平較低。

    圖7 不同碳源對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響

    2.2.2 不同氮源對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響由圖8可知,有機(jī)氮源對凝結(jié)芽孢桿菌的發(fā)酵水平起關(guān)鍵作用。以酵母膏作為氮源時,發(fā)酵液活菌數(shù)最高,為20.0×108cfu/mL,其他有機(jī)氮源,發(fā)酵水平較高,而硝酸鉀和硫酸銨兩種無機(jī)氮源,發(fā)酵水平最低,活菌數(shù)分別為1.0×108cfu/mL 和0.4×108cfu/mL。

    圖8 不同氮源對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響

    2.2.3 不同磷源對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響由圖9可知,以KH2PO4作為磷源時,發(fā)酵液活菌數(shù)最高,為 22.0×108cfu/mL;K2HPO4作為磷源時,發(fā)酵液活菌數(shù)為12.0×108cfu/mL;二者合用時,發(fā)酵液活菌數(shù)最低,為7.0×108cfu/mL。

    圖9 不同磷源對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響

    2.2.4 不同無機(jī)鹽對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響 由圖10可知,分別添加硫酸鎂、硫酸錳、硫酸亞鐵和硝酸鉀4種無機(jī)鹽的發(fā)酵水平優(yōu)于CK,發(fā)酵液活菌數(shù)分別為 12.1×108、10.6×108、9.4×108、8.6×108cfu/mL,而其他無機(jī)鹽發(fā)酵水平低于CK。

    圖10 不同無機(jī)鹽對凝結(jié)芽孢桿菌發(fā)酵水平的影響

    2.3 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計及結(jié)果見表2,從表2的極差分析可以看出影響凝結(jié)芽孢子桿菌發(fā)酵水平主次因素關(guān)系為:B>E>C>A>D (酵母膏>MgSO4·7H2O>KH2PO4>葡萄糖>MnSO4·H2O),因素間最佳水平組合為A2B4C3D2E1,凝結(jié)芽孢桿菌的最佳發(fā)酵工藝條件為:葡萄糖8.0 g/L,酵母膏12.5 g/L,KH2PO43.0 g/L,MnSO4·H2O 0.18 g/L,MgSO4·7H2O 0.125 g/L。正交試驗(yàn)方差分析結(jié)果見表3,從表3可以看出,F(xiàn)酵母膏=13.554>3,3 )=9.28,說明酵母膏的作用達(dá)到顯著水平,因此,在發(fā)酵過程中要嚴(yán)格控制酵母膏的用量,其他因素的作用沒有達(dá)到顯著水平。

    表2 培養(yǎng)基優(yōu)化采用的L16(45)正交表的安排以及直觀分析結(jié)果

    表3 正交實(shí)驗(yàn)方差分析表

    3 結(jié)論與討論

    本實(shí)驗(yàn)采用漸進(jìn)法優(yōu)化發(fā)酵條件,每確定一項(xiàng),就在下一目標(biāo)篩選中應(yīng)用,這樣使得實(shí)驗(yàn)結(jié)果更加準(zhǔn)確[6]。在優(yōu)化磷源實(shí)驗(yàn)時,發(fā)酵水平有所下降,原因可能與斜面菌種活化生長狀況,種子液非同批次培養(yǎng)等情況有關(guān)。鑒于這些原因,對實(shí)驗(yàn)進(jìn)行了改進(jìn),建立了種子液和菌體濃度的線性關(guān)系[7],接種前測定種子液,轉(zhuǎn)換成菌體濃度后,再確定接種量。

    通過對凝結(jié)芽孢桿菌培養(yǎng)條件和培養(yǎng)基組成的優(yōu)化,初步確定了最佳發(fā)酵條件及培養(yǎng)基組成,最佳發(fā)酵條件:溫度35℃、轉(zhuǎn)速220 r/min、裝液量10%、接種量3%、初始pH=7.0、發(fā)酵時間42 h;最佳培養(yǎng)基組成:葡萄糖8.0 g/L,酵母膏12.5 g/L,KH2PO43.0 g/L,MnSO4·H2O 0.18 g/L,MgSO4·7H2O 0.125 g/L。在此最佳發(fā)酵培養(yǎng)基組成和發(fā)酵條件下進(jìn)行發(fā)酵,發(fā)酵液活菌數(shù)可達(dá)38×108cfu/mL。

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