易建華, 潘毛頭, 朱振寶
(陜西科技大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院, 陜西 西安 710021)
油菜是我國(guó)主要的油料作物,年均種植面積1.1~1.2億畝,產(chǎn)量居世界首位[1].油菜籽榨油后菜籽餅粕中蛋白質(zhì)含量約為35%~40%.中國(guó)每年有約600 萬噸菜籽餅粕,是僅次于豆粕的潛在大宗植物蛋白質(zhì)資源[2].菜籽蛋白是一種營(yíng)養(yǎng)價(jià)值較高的蛋白,其氨基酸組成與大豆蛋白質(zhì)以及聯(lián)合國(guó)糧農(nóng)組織(FAO)和世界衛(wèi)生組織(WHO)推薦值非常接近[3],同時(shí)菜籽蛋白與大豆蛋白相比具有原料價(jià)格優(yōu)勢(shì),因此加強(qiáng)菜籽蛋白的應(yīng)用研究,使之部分取代大豆蛋白具有重要的經(jīng)濟(jì)意義.
由于菜籽餅粕存在硫苷、植酸及多酚類等抗?fàn)I養(yǎng)因子,極大地限制了其在食品中的應(yīng)用,目前僅作為肥料使用或少量用于飼料,造成蛋白資源的極大浪費(fèi).隨著“雙低”( 低芥酸,低硫苷)油菜優(yōu)良品種的培育及大量推廣種植,為低毒性或無毒性菜籽蛋白的制備及應(yīng)用奠定了堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)[4].但迄今為止,“雙低”菜籽餅粕蛋白的相關(guān)研究多集中于以實(shí)驗(yàn)室制備的低溫菜籽餅粕為原料[3-5],而實(shí)際上,在工業(yè)化過程中工廠多數(shù)仍采用傳統(tǒng)高溫壓榨工藝制取菜籽油,但菜籽經(jīng)高溫制油工藝后因變性使蛋白質(zhì)功能性質(zhì)大大降低,影響了其在食品加工中的應(yīng)用[6].因此,通過改性提高高溫菜籽蛋白功能性質(zhì)具有十分重要的意義.
蛋白質(zhì)改性包括3種方法: 物理法、化學(xué)法和酶法[7].目前,由于技術(shù)和設(shè)備問題,蛋白質(zhì)物理改性尚未工業(yè)化生產(chǎn).化學(xué)改性由于可能造成食品安全性問題,不容易被消費(fèi)者所接受,而酶法改性是利用蛋白酶在溫和的條件下催化水解蛋白質(zhì)達(dá)到蛋白質(zhì)改性的目的,是一種不降低食品營(yíng)養(yǎng)價(jià)值, 同時(shí)又能獲得更好食品蛋白質(zhì)功能特性的簡(jiǎn)便方法.因此,本文以秦優(yōu)11號(hào)高溫“雙低”菜籽餅粕為試材,采用NaCl提取結(jié)合超濾工藝制備菜籽鹽提蛋白(RPSS),以大豆分離蛋白(SPI)作為對(duì)照,研究了RPSS的酶法改性,為高溫菜籽餅粕中蛋白質(zhì)的食用性開發(fā)提供技術(shù)指導(dǎo),同時(shí)也可以為食品工業(yè)提供新的功能性配料.
原料: “雙低”油菜籽(秦優(yōu)11號(hào)),其高溫壓榨餅粕成分如表1所示.
蛋白酶:Acalase2.4L?、Flavourzyme?:諾維信(中國(guó))有限公司;其余試劑均為分析純:西安化學(xué)試劑廠.
表1 秦優(yōu)11號(hào)菜籽高溫壓榨餅粕主要成分
PB-8型酸度計(jì)(賽多利斯公司);JA5003型電子分析天平(賽利斯科學(xué)儀器有限公司);超級(jí)恒溫水浴(上海實(shí)驗(yàn)儀器廠); LG10-2.4A離心機(jī)(北京醫(yī)用離心機(jī)廠); RE-52系列旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器(上海亞榮生化儀器廠);SH2-D型循環(huán)水式真空泵(鞏義市予華儀器有限公司);722型光柵分光光度計(jì)(上海第三分析儀器廠);微量凱氏定氮儀,上海洪紀(jì)儀器廠;Millipore超濾儀(美國(guó)Millipore 公司).
1.3.1 原料預(yù)處理
菜籽粕去皮和仁皮分離,粉碎處理后,用石油醚進(jìn)行脫脂處理,并除去溶劑,干燥后過40目篩,得實(shí)驗(yàn)樣品, 4 ℃保存?zhèn)溆?
1.3.2 成分測(cè)定
粗蛋白:GB 5009.5-2010;粗脂肪:GB 2906-82;植酸:GB5009.153-2003;硫苷:GB/T 23890-2009;灰分:參照GB/T5009.4-2010;水分:參照GB5497-85.
1.3.3 鹽提菜籽蛋白(RPSS)制備
稱取50 g脫脂菜籽餅粕,加5% NaCl溶液1 000 mL,50 ℃,提取90 min,4 000 r/min離心10 min,上清液采用MWCO50000超濾膜處理,截留液冷凍干燥,備用.
1.3.4 RPSS功能特性研究
1.3.4.1 溶解性
以大豆分離蛋白(SPI)作為對(duì)照,準(zhǔn)確稱取RPSS樣品 2.0 g,加入40 mL蒸餾水,以 0.1 mol HCl或0.1 mol NaOH調(diào)pH值,40 ℃下攪拌45 min,用中速濾紙過濾,并用少量的蒸餾水沖洗濾渣,定容至50 mL,用微量凱氏定氮法測(cè)定上清液中樣品及未處理樣品中的含氮量.按下式計(jì)算氮溶解指數(shù)(NSI):
NSI(%)=(上清液中含氮量/樣品總氮)×100%
1.3.4.2 持水性
參照文獻(xiàn)[8]方法,稱取0.5 g樣品,加入10 mL去離子水,在10 min內(nèi)攪拌6次,然后在3 000 r/min下離心10 min,離心后得到的沉淀物在50 ℃下保持25 min,稱量其質(zhì)量,持水性計(jì)算公式:
持水性(%)=(沉淀物質(zhì)量-樣品質(zhì)量)/樣品質(zhì)量×100%
1.3.4.3 吸油性
參照文獻(xiàn)[8]方法,準(zhǔn)確稱取0.5 g樣品于離心管中,加入6 mL大豆色拉油,放置30 min,然后3 000 r/min離心15 min,稱量上層大豆色拉油的質(zhì)量,吸油性計(jì)算公式為:
吸油性(%)=(大豆色拉油質(zhì)量-上層大豆色拉油質(zhì)量)/樣品質(zhì)量×100%
1.3.5 蛋白酶水解RPSS及對(duì)其功能特性的影響
配制1 L 5% RPSS溶液,置于超級(jí)恒溫反應(yīng)器,并調(diào)至其最適溫度及pH,分別加入堿性蛋白酶Aclase2.4L?及Flavourzyme?( E/S=1.5%),通過滴加0.5 mol/L NaOH保持體系pH恒定.pH-stat法測(cè)定水解度(DH),研究RPSS的酶解進(jìn)程.酶解液達(dá)到相應(yīng)水解度后,取出酶解液,沸水浴10 min,終止酶解過程,冷卻至室溫后調(diào)pH至7.0,冷凍干燥即得不同DH酶解產(chǎn)物,同時(shí)研究酶解對(duì)RPSS功能特性的影響.DH計(jì)算公式如下[9]:
式中:B—水解過程中消耗NaOH的體積,mL;N—NaOH的濃度,mol/L;α—在實(shí)驗(yàn)條件下的氨基解離度,α= 10pH-pK/(1+10pH-pK) (pK=7.0);MP—蛋白質(zhì)的質(zhì)量,g;htot—每克原料蛋白質(zhì)中肽鍵的毫摩爾數(shù),mmol/g蛋白質(zhì),對(duì)于菜籽蛋白,該值取8.38.
圖1 兩種蛋白酶水解菜籽蛋白水解進(jìn)程曲線
由圖1可知,兩種蛋白酶水解特性有明顯差異.堿性蛋白酶Aclase2.4L?的水解能力較強(qiáng),且在50 min以內(nèi)水解度上升較快,可達(dá)到8.8%;60~350 min,水解速度趨于緩和,水解度變化幅度只有4.2%.而風(fēng)味蛋白酶Flavourzyme?的水解速度一直比較平緩,水解度變化幅度很小,水解350 min,水解度僅為3.4%.結(jié)果說明,不同的蛋白酶對(duì)菜籽蛋白的水解度存在顯著區(qū)別,其原因可能在于酶對(duì)底物的作用不同.
以SPI為對(duì)照,研究了不同水解度(DH 2.0%、5.0%、8.0%、11.0%)Aclase2.4L?菜籽蛋白酶解物與不同水解度(DH 0.6%、1.8%、3.0%)Flavourzyme?菜籽蛋白酶解物的溶解性,結(jié)果如圖2、3所示.
圖2 DH對(duì)菜籽蛋白Aclase2.4L?酶解物溶解性影響 圖3 DH對(duì)菜籽蛋白Flavourzyme?酶解物溶解性影響
由圖2、3可知,蛋白酶種類及水解度對(duì)RPSS的溶解性影響較大.SPI與RPSS的pI都接近pH4.0,且與SPI相比,相同pH(等電點(diǎn)除外)未酶解處理的RPSS溶解性低于SPI,但隨著水解度的增大,RPSS溶解性有不同程度的提高,其原因可能與分子尺寸減小和可電離基團(tuán)增多以及羰基的暴露有關(guān).由圖2可以發(fā)現(xiàn),堿性蛋白酶Aclase2.4L?水解菜籽蛋白, RPSS(DH=11.0%)氮溶指數(shù)超過SPI,且在較寬的pH值范圍內(nèi)水解產(chǎn)物具有很好的溶解性,等電點(diǎn)對(duì)RPSS溶解性影響不明顯.由此可見,深度酶解(DH>10%)更利于改善RPSS溶解性.此外比較圖2、3可看出,與Aclase2.4L?相比,風(fēng)味蛋白酶Flavourzyme?對(duì)RPSS溶解性改善作用有限,且當(dāng)DH為0.6%~3.0%,RPSS的溶解性低于SPI(pI4.0除外),因此在實(shí)際應(yīng)用過程中,可以采用Aclase2.4L?水解菜籽蛋白來提高RPSS溶解性.
表2 RPSS與SPI持水性和吸油性比較
2.3.1 RPSS與SPI持水性和吸油性比較
由表2可知,RPSS持水性極顯著低于SPI(P<0.01),但其吸油性卻極顯著高于SPI(P<0.01).蛋白質(zhì)的持水性與吸油性與其分子表面的極性基團(tuán)和非極性基團(tuán)有關(guān),蛋白質(zhì)分子表面的極性基團(tuán)越多,則吸水性越強(qiáng);相反,分子表面的非極性基團(tuán)越多,則吸油性越強(qiáng).從表2對(duì)比可以推斷,RPSS分子表面具有較多的非極性基團(tuán),因此其持水性較差,而吸油性較強(qiáng).
RPSS具有良好的持油性,可應(yīng)用于高脂食品中,并可促進(jìn)脂肪與蛋白質(zhì)結(jié)合,從而減少食品蒸煮時(shí)脂肪損失;RPSS應(yīng)用于肉制品中,在保持成品質(zhì)量的前提下,可降低瘦肉比率,提高產(chǎn)品質(zhì)地、得率和蛋白質(zhì)指標(biāo),降低成本.
2.3.2 酶解對(duì)RPSS持水性影響
蛋白酶Aclase2.4L?和Flavourzyme?,不同DH對(duì)RPSS持水性影響結(jié)果如圖4、5所示.
圖4 堿性蛋白酶Aclase2.4L?對(duì)RPSS持水性的影響 圖5 Flavourzyme?對(duì)RPSS持水性的影響
由圖4、5可知,經(jīng)蛋白酶水解后,RPSS持水性表現(xiàn)出降低趨勢(shì),且水解度越大,蛋白質(zhì)的持水性越??;由q檢驗(yàn)可知,Aclase2.4L?水解RPSS,除DH5.0 RPSS與DH 8.0 RPSS持水性無顯著性差異外,其余都表現(xiàn)出極顯著差異(P<0.01);而Flavourzyme?作用RPSS,水解度為0.6%和 1.8%時(shí),RPSS持水性差異不顯著,其余RPSS持水性差異達(dá)到極顯著.
2.3.3 酶解對(duì)RPSS吸油性的影響
圖6、7分別為堿性蛋白酶Aclase2.4L?與Flavourzyme?對(duì)RPSS吸油性的影響.由圖6、7比較可知,兩種蛋白酶對(duì)RPSS吸油性的影響表現(xiàn)出較大差異.堿性蛋白酶Aclase24L?水解RPSS ,隨水解進(jìn)行,RPSS吸油性顯著降低,后有所提高,當(dāng)水解度繼續(xù)提高,RPSS吸油性又呈現(xiàn)降低趨勢(shì);而利用Flavourzyme?作用RPSS,RPSS吸油性卻表現(xiàn)為先顯著增大后降低的趨勢(shì),因此,采用Flavourzyme?并進(jìn)行輕度水解(DH<1%)有利于提高RPSS吸油性.
圖6 堿性蛋白酶Aclase2.4L?對(duì)RPSS吸油性的影響 圖7 Flavourzyme?對(duì)RPSS吸油性的影響
蛋白酶水解可不同程度提高RPSS溶解性,其中,堿性蛋白酶Aclase2.4L?對(duì)菜籽蛋白溶解性影響較大,當(dāng)DH>10%,菜籽蛋白溶解性大于SPI,且不受等電點(diǎn)影響;與SPI相比,RPSS吸油性較強(qiáng),持水性較差;酶法水解不同程度降低RPSS持水性,而采用Flavourzyme?,適度水解(DH<1%)可顯著提高RPSS吸油性.
參考文獻(xiàn)
[1] 姜紹通,潘 牧,鄭 志.菜籽粕貯藏蛋白制備及功能性質(zhì)研究[J].食品科學(xué),2009,30(8):29-32.
[2] 鄭美瑜,陳劍兵,陸勝民,等.菜籽蛋白的提取和純化[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2008, 24(8):267-270.
[3] 劉大川,周俊梅,張寒俊,等.低植酸、低單寧“雙低”菜籽分離蛋白制備工藝的研究[J].中國(guó)油脂,2005,30(8):38-41.
[4] 嚴(yán)梅榮,鞠興榮,王丹丹.堿提酸沉淀方法制取菜籽蛋白質(zhì)的研究[J].中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2009,24(6):72-75.
[5] 張寒俊,劉大川,王興國(guó),等. 雙低油菜籽蛋白質(zhì)及其他成分溶解曲線研究[J].中國(guó)油脂,2003,28(1): 27-29.
[6] 何 江,鈕琰星,黃鳳洪,等.菜籽濃縮蛋白研究進(jìn)展[J].中國(guó)油脂,2009,34(10):20-23.
[7] 蔡麗麗,陸啟玉,錢 林.酶法改性食品蛋白質(zhì)的研究進(jìn)展[J].糧油加工與食品機(jī)械,2006,(6):85-87.
[8] Lqari H.,Vioque J.,Pedroche J.,etal.. Lupinus angustifolius protein isolates chemical composition functional properties and protein characterization[J]. Food Chemistry,2002, 76:349-356.
[9] Adler-Nissen J. Enzymatic hydrolysis of food proteins[M].New York: Elsevier Applied Science Publishers,1986:9-56.