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    Snail基因在不同分化程度胃癌細胞中的表達及其意義

    2010-01-26 01:05:53陸洪炳殷飛燕
    實用癌癥雜志 2010年5期
    關鍵詞:細胞株細胞系培養(yǎng)液

    陸洪炳 殷飛燕

    胃癌是世界范圍內最常見的惡性腫瘤之一,5年生存率只有約20%。胃癌的侵襲和轉移是影響胃癌預后的主要因素之一。Snail是具有鋅指結構的轉錄因子,近年來其在腫瘤的轉移中越來越受到人們的關注。研究表明,Snail高表達于乳腺癌[1]、結腸癌[2]、肝癌[3]等中,并與乳腺癌組織學分級、淋巴結轉移及遠處轉移密切相關[1]。鄭振波等[4]通過原位分子雜交技術分析發(fā)現,Snail mRNA在不同分化程度胃癌細胞中呈差異性表達。Kurrey等[5]研究表明,卵巢癌細胞轉入外源Snail后,細胞的侵襲性和運動能力都增強。TGF-β1可通過多種途徑調節(jié)Snail的表達[6~8],本實驗采用RT-PCR方法,檢測在TGF-β1調節(jié)下,不同分化程度的胃癌細胞中SnailmRNA表達是否有差異,為判斷胃癌患者預后提供理論依據。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    人胃癌細胞株SGC-7901(中分化)、BGC-823(低分化)、HGC-27(未分化)購置中國科學院上海細胞生命科學研究院,人重組TGF-β1為Peprotech公司產品,RT-PCR試劑盒為天根生化科技(北京)有限公司產品,10%新生牛血清為杭州四季清生物工程材料有限產品,1640培養(yǎng)液、DMEM培養(yǎng)液為北京索萊寶科技有限公司產品,DNAMarker為大連寶生物工程有限公司產品。

    1.2 方法

    1.2.1 細胞培養(yǎng) 胃癌SGC-7901、BGC-823細胞用含有10%新生牛血清的1640培養(yǎng)液培養(yǎng)、HGC-27細胞用含有10%新生牛血清的DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)于37℃、5%CO2的孵箱內。取生長狀態(tài)良好的細胞用于實驗。

    1.2.2 RT-PCR Snail及內參3-磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)引物,由上海生工生物工程技術服務有限公司代為設計。Snail上游引物為5’-TTACCTTCCAGCAGCCCT AC-3,下游引物為5’-GCT TCGGATGTGCATCTTG-3’,擴增片段440 bp。GAPDH上游引物為5’-AGAAGGCTGGGGCTCATTTG-3’,下游引物為5’-AGGGGCCATCCACAGTCTTC-3’,擴增片段258 bp。

    提取正常培養(yǎng)基及5、10 ng/ml TGF-β1培養(yǎng)24 h的細胞RNA。用離線柱型提取細胞RNA,RT-PCR按天根一步法步驟進行操作:①反轉錄反應,50℃ 30 min ;②PCR初始變性,94℃ 2 min ;③變性94℃ 0.5 min ;④退火,55℃ 0.5 min;⑤延伸,65℃ 45 s從3~5步進行33個循環(huán);⑥最終延伸,65℃ 10 min。

    取8 μl PCR產物,1.5%瓊脂糖凝膠電泳,紫外透視燈下觀察出現440 bp條帶即為Snailc DNA陽性,最后對凝膠進行灰度掃描并照相,以掃描所得Snail與GAPDH灰度值的比值作為Snail mRNA的相對表達量。

    1.3 統計學處理

    2 結果

    在正常培養(yǎng)基培養(yǎng)下,三株細胞系Snail mRNA表達有顯著性差異(P<0.05),隨著腫瘤分化程度的降低,Snail mRNA表達含量增加;5 ng/ml TGF-β1調節(jié)下,三株細胞系Snailm RNA表達有差異(P<0.05),隨著腫瘤分化程度的降低,Snailm RNA表達含量增加;10 ng/ml TGF-β1調節(jié)下,三株細胞系Snail mRNA表達有顯著性差異(P<0.05),隨著腫瘤分化程度的降低,Snail mRNA表達量增加,見圖1~2。

    圖1 不同濃度TGF-β1對三株細胞系表達的影響

    A 為SGC-7901細胞株 ;B 為BGC-823細胞株;C為HGC-27細胞株;1為0 ng/ml TGF-β1作用;2為5 ng/ml TGF-β1作用;3為10 ng/ml TGF-β1作用

    圖2 不同濃度TGF-β1對不同分化程度人胃癌細胞Snail mRNA表達的作用

    3 討論

    惡性腫瘤是危害人類健康最為嚴重的一類疾病,在我國胃癌約占1/3,其死亡率較高。影響胃癌生存的因素比較復雜,與胃癌的分化程度、浸潤深度、是否有轉移等因素有密切的關系,而胃癌的浸潤轉移是1個復雜的多環(huán)節(jié)過程,也是胃癌致死性的關鍵因素。腫瘤浸潤轉移過程其分子機制涉及眾多相關基因的改變,其中Snail也是研究較多的與腫瘤密切相關的基因之一。轉錄因子Snail 1984年Nusslein-Volhard等[9]首先是在果蠅中發(fā)現的。隨后發(fā)現,Snail的同源分子在許多種屬的動物中均存在。其家族成員有:Snail、E12/E47、ZEBl、SIPl、Slug。在結構特征上,Snail家族具有相似的結構,由1個高度保守的羧基末端以及1個高度可變的氨基末端構成,各成員間結構上的不同主要表現在中間P-S富集區(qū)域。張莉麗等[10]研究發(fā)現,正常胃黏膜組織中Snail mRNA表達水平較低,隨著胃癌的發(fā)生、侵襲及浸潤性的增強而表達增強,特別是在TNMⅢ~Ⅳ期、分化程度減低及伴有淋巴結轉移和血脈管侵犯的胃癌中Snail mRNA過表達。

    E-cadherinherin,1種鈣離子依賴的黏附分子,被認為是Snail直接作用的靶基因。在對E-cadherinherin啟動子的研究中發(fā)現,在啟動子5,端序列存在調節(jié)元件,這個調節(jié)元件包含有2個E-box(E-盒)結構,其內含一致的5,-CAGGTG序列,Snail可與E-box結合,在轉錄水平上抑制E-cadherinherin的表達[11]。這一過程能使基因發(fā)生變異的細胞更加容易發(fā)生浸潤和轉移。卓文磊等[12]發(fā)現,正常人肺腺癌A549細胞能表達較高水平的Snail和α-SMA,而E-cadherin呈低表達。用RNA干擾技術阻滯其Snail表達后,A549細胞α-SMA表達降低,E-cadherin表達則升高,他們發(fā)現在阻滯其Snail表達后,穿過屏障的A549細胞明顯減少,證明A549細胞侵襲能力受到抑制。

    本實驗結果顯示:SnailmRNA在不同胃癌細胞系中差異表達,Snail在分化程度越低的胃癌細胞中表達越高,與[4][10]的結果相吻合。提示snail在胃癌中發(fā)揮癌基因的作用,其mRNA過表達可促進胃癌的發(fā)生、浸潤和轉移。因此通過RNAi干擾或反義RNA技術抑制Snail的表達,或者競爭性抑制Snail和E-cadherin的結合,均可切斷這一途徑對胃癌進展的促進作用。

    綜上所述,Snail的表達水平與胃癌的分化程度有關,而腫瘤分化程度越差,惡性程度越高,預后越差。將來Sanil可能會成為新的抗腫瘤治療的靶點,也可作為判斷腫瘤患者預后的指標。

    [1] Come C,Arnoux V,Bibeau F,et al.Roles of the transcription factors snail and slug during mammary morphogenesis and breastcarci-noma progression 〔J〕.J Mammay Gland BiolNeoplasia,2004,9(2):183.

    [2] Batlle E,Sancho E,Franci C,et al.The transcription factor Snail is a repressorofE-cadherinherin gene expression in epithelial tumor cells〔J〕.Nat Cell Bio,2000,2(2):84.

    [3] Palmer HG,Larriba MJ,Garcia JM.The transcription factorSNAIL represses vitamin D receptor expression and responsiveness in human colon cancer 〔J〕.Nat Med,2004,10(9):917.

    [4] 鄭振波,張布衣,姚根有.通過組織芯片分析Snail、claudin-1 mRNA表達與胃癌的關系〔J〕.醫(yī)學研究雜志,2006,35 (12):29.

    [5] Kurrey NK,KA,Bapat SA.Snail and Slug are major determinants of ovarian cancer invasiveness at the transcription level〔J〕.Gynecol Oncol,2005,97(1):155.

    [6] Zavadil J,Cermak L,Soto-Nieves N,et al.Integration ofTGF-beta/Smad and Jagged1/Notch signalling in epithelial-to-mesenchymal transition 〔J〕.EMBO J,2004,23(5):1155.

    [7] Yang YC,Piek E,Zavadil J,et al.Hierarchical model of gene regulation by transforming growth factor beta〔J〕.Proc Natl Acadherin Sci USA,2003,100(18):10269.

    [8] Zhou BP,Deng J,Xia W,et al.Dual regulation of Snail by GSK-3beta- mediated phosphorylation in control of epithelial-mesenchymal transition 〔J〕.Nat Cell Biol,2004,6(10):931.

    [9] Nusslein-Volhard C,Wieschaus E,Kluding H.Mutations affecting the pattern of the larval cruticle in Drosophila melanogaster.I.Zy-gotic loci on the second chromosome〔J〕.Wilhelm Roux’s Arch DevBiol,1984,193(2):267.

    [10] 張莉麗,張布衣,姚根有.組織芯片檢測snail mRNA的表達及其與胃癌的關系〔J〕.浙江臨床醫(yī)學,2008,10(8):1014.

    [11] Rodrigo I,Cato AC,Cano A.Regulation of E-cadherinherin gene expression during tumor progression:the role of a new Ets-binding site and the E-pal element〔J〕.Exp Cell Res,1999,248(2):358.

    [12] 卓文磊,張云嵩,王 彥,等.RNA干擾抑制Snail表達對A549細胞上皮-間充質轉分化及體外侵襲的影響〔J〕.現代腫瘤學,2008,16(6):889.

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