楊 斌 戴玉田 孫則禹
組織工程膀胱的血管化及其策略
楊 斌 戴玉田 孫則禹
一些先天性的疾?。ㄈ绨螂淄夥┗蜓装Y、感染、腫瘤以及創(chuàng)傷等可引起膀胱結(jié)構(gòu)和功能的缺失或損害,常常需要一定的組織或材料進(jìn)行膀胱的修復(fù)和重建[1]。在探索膀胱修復(fù)和重建的歷史上,筋膜、膀胱粘膜下層、大網(wǎng)膜、小腸粘膜下層、合成材料等都由于生物相容性、機(jī)械力學(xué)性能以及植入物萎縮、纖維化、結(jié)石形成等并發(fā)癥而宣告失敗。迄今為止,利用腸道進(jìn)行膀胱的修復(fù)和重建仍是進(jìn)行膀胱替代的金標(biāo)準(zhǔn)[2]。但是,由于腸道處在泌尿系的環(huán)境中,可能會(huì)引起代謝紊亂、感染、結(jié)石形成甚至惡變等一系列并發(fā)癥[3-4]。因此,探尋合理的膀胱替代物是醫(yī)學(xué)界的一項(xiàng)挑戰(zhàn),而組織工程技術(shù)提供了新的思路和方法[2,5]。
組織工程膀胱研究的基本思路是,在體外大規(guī)模擴(kuò)增膀胱種子細(xì)胞,再將其種植到支架材料上,在體外構(gòu)建組織工程膀胱壁,然后植入體內(nèi)以進(jìn)行膀胱修復(fù)和重建。組織工程膀胱構(gòu)建需要具備3個(gè)要素:支架材料,種子細(xì)胞和植入體內(nèi)后建立血液循環(huán)以供給細(xì)胞生長(zhǎng)、發(fā)育所需的物質(zhì)并帶走代謝產(chǎn)物。支架材料要求具有良好生物相容性、生物可降解性,并支持種子細(xì)胞黏附、生長(zhǎng)以及發(fā)育等[6]。種子細(xì)胞主要是尿路上皮細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞。研究顯示,尿路上皮細(xì)胞再生能力較強(qiáng),而平滑肌細(xì)胞再生能力則較差[7]。因此,組織工程膀胱構(gòu)建的關(guān)鍵在于構(gòu)建結(jié)構(gòu)和功能良好的平滑肌組織。
新生血管形成(Neovasculogenesis)包括血管發(fā)生(Vasculogenesis)和血管新生(Angiogenesis)。血管發(fā)生是指內(nèi)皮細(xì)胞的前體細(xì)胞即內(nèi)皮祖細(xì)胞(Endothelial progenitor cell)在血管生長(zhǎng)的原位增殖、遷移、分化為成熟的內(nèi)皮細(xì)胞并形成血管的過(guò)程。血管新生是指在已經(jīng)存在的血管上以出芽方式形成新的血管的過(guò)程,即通過(guò)成熟內(nèi)皮細(xì)胞遷移、增殖來(lái)形成新的血管[8]。以往認(rèn)為,血管新生是出生后血管生長(zhǎng)的唯一機(jī)制,但隨著近年來(lái)外周血中發(fā)現(xiàn)內(nèi)皮祖細(xì)胞,認(rèn)識(shí)到血管發(fā)生不僅存在于胚胎時(shí)期,也是出生后新生血管形成的機(jī)制之一[9]。新生血管形成是血管內(nèi)皮細(xì)胞、內(nèi)皮祖細(xì)胞、促血管生成的因子、細(xì)胞外基質(zhì)等相互作用,共同完成的一系列過(guò)程。
新生血管形成參與了重要的生理過(guò)程,如在創(chuàng)傷愈合和組織修復(fù)中,新生血管形成后,為病損區(qū)域供給營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),支持組織再生[10]。近年來(lái),新生血管形成在治療缺血性疾病的研究和應(yīng)用中發(fā)揮了巨大的作用。研究發(fā)現(xiàn),治療性血管新生/血管發(fā)生能夠明顯改善心肌梗死和糖尿病肢體缺血患者缺血區(qū)的血液循環(huán),改善組織和器官的功能[11-12]。利用新生血管形成的原理進(jìn)行組織工程領(lǐng)域的人工組織血管化的研究也取得了極大進(jìn)展[13]。
組織工程血管化研究的模型主要有體外模型和體內(nèi)模型。體外模型主要將組織工程組織在體外進(jìn)行預(yù)血管化,研究?jī)?nèi)皮細(xì)胞參與預(yù)血管化的效應(yīng)和各種生長(zhǎng)因子的調(diào)節(jié)作用,揭示其中的分子機(jī)制[14]。體內(nèi)模型主要研究植入組織在體內(nèi)的血管化過(guò)程及其機(jī)制,主要包括植入物與宿主的相互作用、促血管化效應(yīng)和生長(zhǎng)因子的調(diào)節(jié)作用,常見(jiàn)的體內(nèi)模型有角膜小袋模型、雞胚絨毛膜尿囊模型、基質(zhì)膠體內(nèi)填塞模型、海綿基質(zhì)體內(nèi)植入模型以及腸系膜血管新生模型和小鼠背部皮下室模型[15]。2005年,Levenberg等[16]分別在體外模型和體內(nèi)模型進(jìn)行了骨骼肌組織的血管化研究。研究中將人臍帶靜脈內(nèi)皮細(xì)胞、鼠成肌細(xì)胞種植于體外合成的三維多孔支架材料上,體外培養(yǎng)后進(jìn)行組織學(xué)觀(guān)察,發(fā)現(xiàn)有微血管網(wǎng)絡(luò)形成,在培養(yǎng)基中加入VEGF、PDGF-BB及鼠成纖維細(xì)胞進(jìn)行共培養(yǎng),能增強(qiáng)體外預(yù)血管化效應(yīng)。在體內(nèi)模型中,將這種體外預(yù)血管化的肌組織種植入免疫缺失的大鼠背部皮下,發(fā)現(xiàn)體外形成的微血管網(wǎng)絡(luò)與宿主的微血管建立吻合,形成有循環(huán)功能的血管系統(tǒng),供應(yīng)肌組織的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)。
在體外,接種到支架材料上用于構(gòu)建組織工程膀胱的種子細(xì)胞能夠從培養(yǎng)基中獲取營(yíng)養(yǎng);而植入體內(nèi)早期,植入組織僅能依靠周?chē)?00-200 μm的距離范圍內(nèi))血液的擴(kuò)散效應(yīng)而獲得代謝所需的物質(zhì),另外,宿主自身血管向植入組織長(zhǎng)入的過(guò)程是極其緩慢且作用十分有限[13,17-18]。大面積的較厚的平滑肌組織,則會(huì)由于缺血、缺氧導(dǎo)致細(xì)胞凋亡或死亡,最終會(huì)影響平滑肌的發(fā)育并導(dǎo)致替代組織的功能障礙。因此,促進(jìn)體外構(gòu)建的膀胱組織植入體內(nèi)后的快速血管化是目前組織工程膀胱面臨的主要問(wèn)題[19]。近年來(lái),眾多學(xué)者在該領(lǐng)域進(jìn)行了積極探索,也取得了一定的進(jìn)展。
4.1 支架材料的優(yōu)化設(shè)計(jì):血管化的先決條件
組織工程膀胱血管化的研究和應(yīng)用首先需要選擇合適的支架材料,影響組織血管化的支架材料的參數(shù)有支架材料的成分、表面特征、孔徑、和孔隙率[6,20]。因此,對(duì)支架材料進(jìn)行優(yōu)化設(shè)計(jì),能為促進(jìn)組織工程膀胱的血管化提供先決條件。研究表明,在PGA中加入膠原成分能夠明顯促進(jìn)組織工程膀胱在擴(kuò)大成形術(shù)后的功能恢復(fù),這可能是因?yàn)橹Ъ懿牧现械哪z原成分促進(jìn)了組織工程膀胱的血管化,快速地建立了血液循環(huán)[2]。還有研究顯示,對(duì)PLGA的表面結(jié)構(gòu)進(jìn)行納米修飾后能夠明顯增加內(nèi)皮細(xì)胞和膀胱平滑肌細(xì)胞的密度[21-22];進(jìn)一步研究表明,該支架材料能夠明顯增強(qiáng)膀胱平滑肌細(xì)胞的黏附、增殖,促進(jìn)彈力蛋白、膠原等細(xì)胞外基質(zhì)的產(chǎn)生,增強(qiáng)膀胱平滑肌細(xì)胞的功能[23-24]。支架材料的孔徑越大,孔隙率越高,血管化則越充分。因此,在制備無(wú)細(xì)胞基質(zhì)作為支架材料時(shí),增大孔徑,提高孔隙率,可能會(huì)促進(jìn)組織工程膀胱的血管化[25]。
4.2 復(fù)合生長(zhǎng)因子:促進(jìn)組織工程膀胱血管化
利用促進(jìn)血管新生的生長(zhǎng)因子(如VEGF,bFGF,PDGF家族等)能促使宿主自身血管快速長(zhǎng)入植入組織,為組織工程膀胱體內(nèi)充分快速血管化提供了另一種選擇。生長(zhǎng)因子通過(guò)促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞遷移、增殖而促進(jìn)血管新生,還可能通過(guò)動(dòng)員宿主內(nèi)皮祖細(xì)胞而發(fā)揮作用[26]。
有兩種方法可以將生長(zhǎng)因子復(fù)合到組織工程膀胱,生長(zhǎng)因子基因轉(zhuǎn)染技術(shù)是促使植入組織局部生長(zhǎng)因子高濃度表達(dá)的手段之一,利用基因轉(zhuǎn)染技術(shù)可以實(shí)現(xiàn)植入部位VEGF、PDGF-BB等生長(zhǎng)因子的高表達(dá),并促進(jìn)血管新生和組織再生[27-28]。國(guó)內(nèi)也有學(xué)者利用VEGF基因轉(zhuǎn)染膀胱平滑肌細(xì)胞,使VEGF在局部高效表達(dá)而促進(jìn)組織工程膀胱快速血管化;還有學(xué)者利用VEGF基因轉(zhuǎn)染膀胱尿路上皮細(xì)胞,以促進(jìn)組織工程尿道的血管化[29]。然而,基因水平上對(duì)蛋白表達(dá)的調(diào)控難以掌控,生長(zhǎng)因子持續(xù)的過(guò)量表達(dá)可能會(huì)導(dǎo)致嚴(yán)重的不良反應(yīng)。組織工程膀胱植入體內(nèi)后,只需要生長(zhǎng)因子在短期內(nèi)的局部高表達(dá),在血液循環(huán)建立后,則不再需要生長(zhǎng)因子持續(xù)的高表達(dá)。因此,在植入組織局部直接包埋生長(zhǎng)因子蛋白并使其持續(xù)釋放,是促進(jìn)組織工程膀胱快速血管化的最佳選擇,這種方案給予宿主的是生長(zhǎng)因子蛋白,比轉(zhuǎn)染生長(zhǎng)因子基因更安全[18]。近年的研究發(fā)現(xiàn),將膀胱無(wú)細(xì)胞基質(zhì)(BAM)在體外與bFGF、PDGF-BB、VEGF等生長(zhǎng)因子孵育后,生長(zhǎng)因子能夠復(fù)合到脫細(xì)胞基質(zhì)支架中,再將該支架材料植入小鼠體內(nèi),脫細(xì)胞基質(zhì)中的膠原成分能保護(hù)生長(zhǎng)因子免受體內(nèi)蛋白水解酶的降解。隨著支架材料的降解,生長(zhǎng)因子能持續(xù)釋放達(dá)2周[30]。研究發(fā)現(xiàn),利用BAM體外復(fù)合VEGF、bFGF后再行膀胱替代,能促進(jìn)替代組織的血管新生,并促進(jìn)平滑肌組織的生長(zhǎng)和發(fā)育,改善膀胱功能[31-32]。
4.3 接種血管內(nèi)皮細(xì)胞:提供血管壁細(xì)胞成分
促進(jìn)組織工程膀胱快速血管化的另一方法,就是利用內(nèi)皮細(xì)胞將構(gòu)建的組織工程膀胱進(jìn)行預(yù)血管化,在植入體內(nèi)后使其與宿主本身血管吻合,從而迅速建立血液循環(huán)[17]。利用內(nèi)皮細(xì)胞進(jìn)行組織工程膀胱預(yù)血管化涉及到內(nèi)皮細(xì)胞的來(lái)源、內(nèi)皮細(xì)胞和支架材料的相互作用、內(nèi)皮細(xì)胞和種子細(xì)胞的聯(lián)合培養(yǎng)、血管的發(fā)育成熟以及預(yù)血管化中的各種調(diào)節(jié)因素等復(fù)雜問(wèn)題。
研究證實(shí),將內(nèi)皮細(xì)胞與平滑肌細(xì)胞體外共培養(yǎng)時(shí),平滑肌細(xì)胞的VEGF、PDGF-AA、PDGF-BB和TGF-β的mRNA表達(dá)水平明顯升高,bFGF及其受體的mRNA表達(dá)水平降低;PDGF-BB和TGF-β蛋白水平明顯升高;內(nèi)皮細(xì)胞VEGF mRNA和蛋白表達(dá)水平也升高。該研究提示我們,將內(nèi)皮細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞進(jìn)行共培養(yǎng)時(shí)能促進(jìn)相關(guān)生長(zhǎng)因子的表達(dá)[33]。內(nèi)皮細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞共培養(yǎng)時(shí)所表達(dá)的PDGF-BB、TGF-β等生長(zhǎng)因子還通過(guò)介導(dǎo)平滑肌細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞的相互作用,促進(jìn)新生血管穩(wěn)定,發(fā)育成熟[10,34]。因此,利用內(nèi)皮細(xì)胞和膀胱平滑肌細(xì)胞共培養(yǎng),不僅可以對(duì)肌組織進(jìn)行預(yù)血管化,而且還能夠促進(jìn)新生血管的發(fā)育與成熟[35]。
內(nèi)皮細(xì)胞的來(lái)源大致可以分為兩類(lèi),一類(lèi)是成熟的內(nèi)皮細(xì)胞,如臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞、成人外周血管內(nèi)皮細(xì)胞。臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞來(lái)源廣、易培養(yǎng)、增殖能力強(qiáng)。Levenberg等[16]利用臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞對(duì)組織工程構(gòu)建的肌組織進(jìn)行預(yù)血管化。但是,成熟內(nèi)皮細(xì)胞也存在不足之處,臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞還存在異種或同種異體移植時(shí)的免疫排斥反應(yīng),成人外周血管的內(nèi)皮細(xì)胞取材較困難,增殖能力欠佳[36]。
另一類(lèi)是內(nèi)皮細(xì)胞的前體細(xì)胞,即內(nèi)皮祖細(xì)胞。血管內(nèi)皮祖細(xì)胞被認(rèn)為是血管內(nèi)皮細(xì)胞的前體細(xì)胞,在功能和形態(tài)方面不同于成熟內(nèi)皮細(xì)胞。體內(nèi)和體外實(shí)驗(yàn)證實(shí):內(nèi)皮祖細(xì)胞能夠分化為內(nèi)皮細(xì)胞,并具有很強(qiáng)的增殖潛能,同時(shí)還分泌促進(jìn)血管新生的生長(zhǎng)因子,能夠促進(jìn)新生血管的形成,這被認(rèn)為是出生后“從無(wú)到有”的新生血管形成過(guò)程。內(nèi)皮祖細(xì)胞在治療性血管新生領(lǐng)域已經(jīng)顯示出極大的研究和臨床應(yīng)用價(jià)值,能夠明顯促進(jìn)糖尿病所致的肢體缺血區(qū)和心肌梗死區(qū)的新生血管形成,改善缺血區(qū)的血液供應(yīng)和組織、器官的功能[9,11,36]。國(guó)內(nèi)已有學(xué)者將內(nèi)皮祖細(xì)胞用于組織工程皮膚血管化的研究[37]。另外,內(nèi)皮祖細(xì)胞不僅存在于臍帶血,還存在于骨髓和外周血,這為利用自體的內(nèi)皮祖細(xì)胞進(jìn)行組織工程膀胱的血管化提供了可能,并且能夠避免免疫排斥反應(yīng)。
4.4 制備帶血管蒂的無(wú)細(xì)胞基質(zhì)支架
帶血管蒂的移植物在修復(fù)重建的治療中已經(jīng)被廣泛應(yīng)用。Schultheiss等[38]將帶血管蒂的腸管進(jìn)行脫細(xì)胞處理,在脫細(xì)胞腸管上種植平滑肌細(xì)胞和尿路上皮細(xì)胞構(gòu)建組織工程膀胱壁,再利用內(nèi)皮祖細(xì)胞將脫細(xì)胞的動(dòng)靜脈蒂進(jìn)行內(nèi)皮化,成功構(gòu)建帶有血管蒂的膀胱組織并將血管蒂的動(dòng)靜脈分別與髂外動(dòng)靜脈進(jìn)行端側(cè)吻合。術(shù)后1~3 h,植入組織血流通暢,無(wú)血栓形成;而未種植內(nèi)皮祖細(xì)胞的膀胱組織則在30 min內(nèi)觀(guān)察到血栓形成,血流停滯。
4.5 利用體內(nèi)富含血管網(wǎng)的組織
將體外構(gòu)建的組織植入體內(nèi)時(shí),用富含血管網(wǎng)的組織包裹,啟動(dòng)炎癥性的創(chuàng)傷-愈合應(yīng)答,同時(shí)由于缺氧而導(dǎo)致內(nèi)源性生長(zhǎng)因子的釋放,可促進(jìn)植入物周?chē)乃拗餮軆?nèi)皮細(xì)胞的遷移、增殖,長(zhǎng)入植入組織而使植入組織血管化[18]。大網(wǎng)膜是富含血管網(wǎng)的組織,以往的研究表明,預(yù)先將膠原海綿包裹在豬的大網(wǎng)膜內(nèi)一周,使其預(yù)血管化,然后用于膀胱替代,能促進(jìn)膀胱再生[39]。臨床實(shí)驗(yàn)也表明,在行膀胱擴(kuò)大成形術(shù)時(shí),利用大網(wǎng)膜包裹組織工程膀胱,術(shù)后能夠明顯改善膀胱功能,膀胱容量、膀胱充盈最大壓力、膀胱順應(yīng)性比不用大網(wǎng)膜包裹改善明顯[2]。但是這種依靠刺激宿主血管長(zhǎng)入的過(guò)程較漫長(zhǎng),其血管化效應(yīng)還需進(jìn)一步研究。
實(shí)驗(yàn)研究中,體外觀(guān)察血管化效應(yīng)往往是取出植入物進(jìn)行實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)來(lái)完成的;而如何進(jìn)行組織工程膀胱血管化的體內(nèi)監(jiān)測(cè),是組織工程膀胱研究和應(yīng)用中亟待解決的問(wèn)題。
組織工程膀胱血管化的監(jiān)測(cè)應(yīng)遵循監(jiān)測(cè)靈敏、無(wú)創(chuàng)、無(wú)輻射、可定量、低成本、操作方便等原則。激光多普勒具有實(shí)時(shí)動(dòng)態(tài)、靈敏度高、易操作、無(wú)特殊禁忌癥、可重復(fù)性強(qiáng)和無(wú)放射性損傷等優(yōu)點(diǎn)。因此,在組織工程血管化研究中,激光多普勒技術(shù)在體進(jìn)行植入組織的血流動(dòng)力學(xué)監(jiān)測(cè)具有較強(qiáng)實(shí)用性[40]。動(dòng)態(tài)對(duì)比增強(qiáng)磁共振技術(shù),因其具有獨(dú)體的捕捉組織及其新陳代謝能力,可反應(yīng)微血管情況及毛細(xì)血管灌流情況,用以評(píng)估局部組織活力和功能,可以對(duì)組織工程膀胱血管化的微血管密度,平均微血管面積進(jìn)行監(jiān)測(cè)[41-42]。此技術(shù)無(wú)離子放射,具有較高的空間分辨率,且能進(jìn)行結(jié)構(gòu)和功能評(píng)價(jià),具有很高的應(yīng)用價(jià)值。
組織工程膀胱可預(yù)制成形,克服處于泌尿系而引起的不利,極具應(yīng)用前景。但是組織工程膀胱的血管化仍是亟待解決的問(wèn)題,需要進(jìn)一步明確新生血管形成機(jī)制。進(jìn)一步發(fā)展組織工程膀胱血管化策略,聯(lián)合應(yīng)用多種促血管化方法,以協(xié)同促進(jìn)組織工程膀胱血管化的實(shí)現(xiàn)。
[1]Staack A,Hayward SW,Baskin LS,et al.Molecular,cellular and developmental biology of urothelium as a basis of bladder regeneration [J].Differentiation,2005,73(4):121-133.
[2]Atala A,Bauer SB,Soker S,et al.Tissue-engineered autologous bladders for patients needing cystoplasty[J].Lancet,2006,367 (9518):1241-1246.
[3]Hensle TW,Gilbert SM.A review of metabolic consequences and long-term complications of enterocystoplasty in children[J].Curr Urol Rep,2007,8(2):157-162.
[4]Gilbert SM,Hensle TW.Metabolic consequences and long-term complications of enterocystoplasty in children:a review[J].J Urol, 2005,173(4):1080-1086.
[5]Atala A.Tissue engineering for the replacement of organ function in the genitourinary system[J].Am J Transplant,2004,4(6):58-73.
[6]Kim BS,Baez CE,Atala A.Biomaterials for tissue engineering[J]. World J Urol,2000,18(1):2-9.
[7]Sutherland RS,Baskin LS,Hayward SW,et al.Regeneration of bladder urothelium,smooth muscle,blood vessels and nerves into an acellular tissue matrix[J].J Urol,1996,156:571-577.
[8]Madeddu P.Therapeutic angiogenesis and vasculogenesis for tissue regeneration[J].Exp Physiol,2005,90(3):315-326.
[9]Masuda H,Asahara T.Post-natal endothelial progenitor cells for neovascularization in tissue regeneration[J].Cardiovasc Res,2003, 58(2):390-398.
[10]Carmeliet P.Angiogenesis in health and disease[J].Nat Med,2003,9 (6):653-60.
[11]Khakoo AY,Finkel T.Endothelial progenitor cells[J].Annu Rev Med,2005,56:79-101.
[12]Yoon CH,Hur J,Park KW,et al.Synergistic neovascularization by mixed transplantation of early endothelial progenitor cells and late outgrowth endothelial cells:the role of angiogenic cytokines and matrix metalloproteinases[J].Circulation,2005,112(11):1618-1627.
[13]馬曉榮,祁佐良.組織工程骨血管化的研究進(jìn)展[J].組織工程與重建外科,2006,2(6):344-346.
[14]Ucuzian AA,Greisler HP.In vitro models of angiogenesis[J].World J Surg,2007,31(4):654-63.
[15]Norrby K.In vivo models of angiogenesis[J].J Cell Mol Med,2006, 10(3):588-612.
[16]Levenberg S,Rouwkema J,Macdonald M,et al.Engineering vascularized skeletal muscle tissue[J].Nat Biotechnol,2005,23(7): 879-884.
[17]Jain RK,Au P,Tam J,et al.Engineering vascularized tissue[J]. Nat Biotechnol,2005,23(7):821-823.
[18]Laschke MW,Harder Y,Amon M,et al.Angiogenesis in tissue engineering:breathing life into constructed tissue substitutes[J]. Tissue Eng,2006,12(8):2093-2104.
[19]Kanematsu A,Yamamoto S,Ogawa O.Changing concepts of bladder regeneration[J].Int J Urol,2007,14(8):673-678.
[20]Karageorgiou V,Kaplan D.Porosity of 3D biomaterial scaffolds and osteogenesis[J].Biomaterials,2005,26(27):5474-5491.
[21]Miller DC,Thapa A,Haberstroh KM,et al.Enhanced functions of vascular and bladder cells on poly-lactic-co-glycolic acid polymers with nanostructured surfaces[J].IEEE Trans Nanobioscience,2002,1 (2):61-6.
[22]Miller DC,Thapa A,Haberstroh KM,et al.Endothelial and vascular smooth muscle cell function on poly(lactic-co-glycolic acid)with nano-structured surface features[J].Biomaterials,2004,25(1):53-61.
[23]Pattison MA,Wurster S,Webster TJ,et al.Three-dimensional, nano-structured PLGA scaffolds for bladder tissue replacement applications[J].Biomaterials,2005,26(15):2491-2500.
[24]Pattison MA,Webster TJ,Haberstroh KM.Select bladder smooth muscle cell functions were enhanced on three-dimensional, nano-structured poly(ether urethane)scaffolds[J].J Biomater Sci Polym Ed,2006,17(11):1317-1332.
[25]Wei HJ,Liang HC,Lee MH,et al.Construction of varying porous structures in acellular bovine pericardia as a tissue-engineering extracellular matrix[J].Biomaterials,2005,26(14):1905-1913.
[26]Asahara T,Takahashi T,Masuda H,et al.VEGF contributes to postnatal neovascularization by mobilizing bone marrow-derived endothelial progenitor cells[J].EMBO J,1999,18(14):3964-3972.
[27]Levanon K,Varda-Bloom N,Greenberger S,et al.Vascular wall maturation and prolonged angiogenic effect by endothelial-specific platelet-derived growth factor expression[J].Pathobiology,2006,73(3):149-158.
[28]De Coppi P,Delo D,Farrugia L,et al.Angiogenic gene-modified muscle cells for enhancement of tissue formation[J].Tissue Eng, 2005,11(7-8):1034-1044.
[29]Guan Y,Ou L,Hu G,et al.Tissue engineering of urethra using human vascular endothelial growth factor gene-modified bladder urothelial cells[J].Artif Organs,2008,32(2):91-99.
[30]Kanematsu A,Yamamoto S,Ozeki M,et al.Collagenous matrices as release carriers of exogenous growth factors[J].Biomaterials, 2004,25(18):4513-4520.
[31]Youssif M,Shiina H,Urakami S,et al.Effect of vascular endothelial growth factor on regeneration of bladder acellular matrix graft:histologic and functional evaluation[J].Urology,2005,66(1): 201-207.
[32]Kanematsu A,Yamamoto S,Noguchi T,et al.Bladder regeneration by bladder acellular matrix combined with sustained release of exogenous growth factor[J].J Urol,2003,170:1633-1638.
[33]Heydarkhan-Hagvall S,Helenius G,Johansson BR,et al.Co-culture of endothelial cells and smooth muscle cells affects gene expression of angiogenic factors[J].J Cell Biochem,2003,89(6):1250-1259.
[34]Chen RR,Silva EA,Yuen WW,et al.Spatio-temporal VEGF and PDGF delivery patterns blood vessel formation and maturation[J]. Pharm Res,2007,24(2):258-264.
[35]Armulik A,Abramsson A,Betsholtz C.Endothelial/pericyte interactions[J].Circ Res,2005,97(6):512-523.
[36]Bompais H,Chagraoui J,Canron X,et al.Human endothelial cells derived from circulating progenitors display specific functional properties compared with mature vessel wall endothelial cells[J]. Blood,2004,103(7):2577-2584.
[37]謝松濤,陳璧,陶克,等.含內(nèi)皮祖細(xì)胞的組織工程皮膚體外構(gòu)建及裸鼠移植研究[J].中華實(shí)驗(yàn)外科雜志,2006,23(12):1531-1532.
[38]Schultheiss D,Gabouev AI,Cebotari S,et al.Biological vascularized matrix for bladder tissue engineering:matrix preparation,reseeding technique and short-term implantation in a porcine model[J].J Urol, 2005,173(1):276-280.
[39]Hattori K,Joraku A,Miyagawa T,et al.Bladder reconstruction using a collagen patch prefabricated within the omentum[J].Int J Urol,2006,13(5):529-537.
[40]Zhou B,Ma FX,Liu PX,et al.Impaired therapeutic vasculogenesis by transplantation of OxLDL-treated endothelial progenitor cells [J].J Lipid Res,2007,48(3):518-527.
[41]Cheng HL,Chen J,Babyn PS,et al.Dynamic Gd-DTPA enhanced MRI as a surrogate marker of angiogenesis in tissue-engineered bladder constructs:a feasibility study in rabbits[J].J Magn Reson Imaging,2005,21(4):415-423.
[42]Cartwright L,Farhat WA,Sherman C,et al.Dynamic contrastenhanced MRI to quantify VEGF-enhanced tissue-engineered bladder graft neovascularization:pilot study[J].J Biomed Mater Res A,2006,77(2):390-395.
Q813.1+3
B
1673-0364(2009)-01-0052-04
2008年8月6日;
2008年9月11日)
10.3969/j.issn.1673-0364.2009.01.016
210008江蘇省南京市南京大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬鼓樓醫(yī)院泌尿外科。