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    展示犬瘟熱病毒抗原表位的犬細小病毒樣顆粒構建

    2021-06-24 04:27:12竇小龍馬文戈苗書魁米曉云盛肖剛魏玉榮
    塔里木大學學報 2021年2期
    關鍵詞:表位疫苗抗體

    竇小龍,馬文戈,苗書魁,米曉云 ,盛肖剛 ,魏玉榮 *

    (1青島拜特爾生物科技有限公司,山東 青島 266114)

    (2新疆畜牧科學院獸醫(yī)研究所,新疆 烏魯木齊 830013)

    (3新疆動物疫病研究重點實驗室,新疆 烏魯木齊 830013)

    (4新疆維吾爾自治區(qū)動物衛(wèi)生監(jiān)督所,新疆 烏魯木齊 830011)

    犬瘟熱病毒(canine distemper virus,CDV)感染引起的犬瘟熱是一種急性、亞急性、高度接觸性傳染病,犬和肉食目中許多動物都可感染。犬細小病毒(canine parvovirus,CPV)是引起犬急性出血性胃腸炎和幼犬非化膿性心肌炎的重要病原,可促進腸道細菌易位,并引起嚴重的免疫抑制[1]。臨床上兩種病常常并發(fā)或繼發(fā)感染,危害嚴重[2]。目前,對CDV及CPV防控主要是以弱毒疫苗免疫預防為主,雖然廣泛應用的弱毒聯(lián)苗具有保護力強等優(yōu)點,但弱毒苗在使用過程中也存在弱毒株毒力返祖、與野毒基因重組加速病毒變異、對某些敏感性動物依然致病等諸多問題,需要開發(fā)新型疫苗來彌補這些不足。病毒樣顆粒(virus-like particles,VLPs)可模擬病毒自身特有的結構但不能自我復制,確保了免疫原的安全性及免疫原性,具有良好開發(fā)前景[3-5]。

    核衣殼蛋白VP2是CPV的主要保護性抗原[6],在體外表達后可以自我裝配成VLPs[7]。已有研究證明VP2蛋白上某些氨基酸片段缺失或替代并不影響其在體外組裝成VLPs[8],這使得VP2蛋白可作為外源抗原的載體形成VLPs制備多價抗原。CDV融合蛋白(F)是構成病毒囊膜的主要成分,在病毒感染和致病性方面起著重要作用。麻疹病毒屬成員中CDV、麻疹病毒(measles virus,MV)和牛瘟病毒(rinderpest virus,PRV)群特異性表位主要在F蛋白上,是異型免疫的主要交叉抗原[9]。F蛋白的400-LSEVKGVIVHRLEAVS-415基序是重要的T細胞表位,能誘導CTL活性,516-INQSPDKLLTF-526基序是B細胞抗原表位?;赥細胞表位和B細胞表位的合成肽免疫小鼠后能對MV、CDV的攻擊產(chǎn)生明顯的保護反應[10]。本實驗將CDV F蛋白的B細胞表位插入CPV VP2的氨基端,并用CDV F蛋白的T細胞表位替換CPV VP2蛋白loop 2區(qū)域的218-LIPSHTGTS?GTPTNIY-233氨基酸序列,人工合成編碼該融合蛋白的核苷酸序列,并克隆到pET-28a(+)載體上,轉化BL21(DE3),表達的重組蛋白能組裝成VLPs,且具有良好的免疫原性。本實驗為重組CDV和CPV新型亞單位疫苗的研究提供了新的探索途徑。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株、細胞、表達載體及實驗動物

    感受態(tài)JM109、BL21(DE3)及表達載體pET-28a(+)均由新疆畜牧科學院獸醫(yī)研究所病毒研究室保存。BALB/c小鼠購自新疆醫(yī)科大學實驗動物中心。

    1.1.2 主要試劑

    限制性內(nèi)切酶BamH I、XhoI,T4 DNA Poly?merase,Prestained Protein Ladder購自 Thermo Fisher Scientific;DL15 000DNA Marker購自TakaRa;質粒小提試劑盒(Plasmid Miniprep Kit)購自愛思進生物技術(杭州有限公司);兔抗犬IgG(Anti-Dog IgG-Perox?idase antibody produced in rabbit)購自SIGMA。206佐劑由新疆畜牧科學院獸醫(yī)研究所病毒研究室保存。

    1.2 方法

    1.2.1 FB-FT-VP2基因合成及表達質粒的構建

    參考CPV VP2蛋白(GenBank ID:ACS50333.1)和CDV F蛋白(GenBank ID:AAK54668.1)序列,選擇CDV F蛋白的B細胞表位516-INQSPDKLLTF-526氨基酸序列融合到CPV VP2蛋白的氨基端,并用CDV F蛋白上的T細胞表位400-LSEVKGVIVHRLEAVS-415氨基酸序列替換CPV VP2蛋白loop 2區(qū)域的218-LIPSHTGTS GTPTNIY-233氨基酸序列,融合蛋白氨基酸序列如圖1。委托生工生物工程(上海)股份有限公司合成編碼該融合蛋白的核苷酸序列,并克隆到pET-28a(+)載體上,命名為pET-28a-FBFT-VP2。

    圖1 FB-FT-VP2融合蛋白氨基酸序列

    1.2.2 融合蛋白的表達

    重組質粒pET-28a-FB-FT-VP2經(jīng)酶切、測序鑒定正確后轉化BL21(DE3)感受態(tài)細胞,涂布含50 μg/mL硫酸卡那霉素LB平板,篩選陽性克隆菌株命名為BL21-pET-28a-FB-FT-VP2。接種含50 μg/mL硫酸卡那霉素的LB培養(yǎng)液,37℃,250 r/min搖床培養(yǎng)至OD600nm為0.6~0.8。加入100 mmol/L的IPTG至終濃度為1 mmol/L,37℃再培養(yǎng)3 h。

    1.2.3 融合蛋白SDS-PAGE及Western-blot檢測

    取200 μL菌液12 000 r/min離心5 min,沉淀用10 μL PBS重懸,加入2×SDS上樣緩沖液10 μL,經(jīng)沸水浴處理10 min后取10 μL進行SDS-PAGE電泳及Western-blot檢測。Western-blot檢測時脫脂乳封閉1 h。一抗是CPV陽性血清,37℃孵育1 h。PBS洗滌后加辣根過氧化物酶標記的兔抗犬IgG為二抗,37℃孵育1 h。PBS洗滌后用DAB顯色液顯色。

    1.2.4 融合蛋白的包涵體變性、復性及內(nèi)毒素去除

    菌體超聲破碎、離心取沉淀,加入沉淀重量10倍體積含1% Triton X-114的20 mmol Tris-HCl(pH7.4)緩沖液充分懸浮,室溫靜止5 min,12 000 r/min離心5 min,收集沉淀。重復2~3次以充分去除內(nèi)毒素。按每克原菌體濕重加入6 mol/L尿素溶液2 mL重懸,室溫下作用1 h變性。將變性蛋白液緩緩加入10倍體積的20 mmol Tris-HCl緩沖液(pH8.0)中,混勻后4℃靜止過夜。12 000 r/min離心5 min收取上清即為復性的FB-FT-VP2融合蛋白。

    1.2.5 重組VLPs的透射電鏡檢測

    取 FB-FT-VP2融合蛋白液 1 mL,加入 10 μL CPV陽性血清,37℃作用30 min,迅速放置4℃平衡1 h。4℃條件下12 000 r/min離心30 min,棄上清液900 μL,留100 μL上清溶解沉淀作為電鏡樣品,4 ℃條件下送新疆大學理化測試中心電鏡室,醋酸鈾負染色,于H-600透射電鏡下觀察VLPs組裝情況。

    1.2.6 融合蛋白的血凝效價測定

    96孔微量板從第1孔至12孔,每孔加PBS 25 μL。FB-FT-VP2融合蛋白液25 μL,從第1孔起,依次做2倍系列稀釋,至最后1個孔,棄去25 μL液體。每孔加入0.5%豚鼠紅細胞懸液25 μL,并設不加樣品的紅細胞對照孔,在微量板振蕩器上搖勻,置室溫1 h,當對照孔中的紅細胞呈顯著紐扣狀時判定結果。以使紅細胞完全凝集的最高稀釋度作為判定終點。

    1.2.7 融合蛋白免疫效果檢測

    1.2.7.1 亞單位疫苗配制

    取FB-FT-VP2融合蛋白液用生理鹽水稀釋至蛋白濃度為200 μg/mL,與206佐劑1∶1混合乳化。

    1.2.7.2 BALB/c小鼠免疫

    7周齡雌性BALB/c小鼠隨機分成2組,每組10只,第一組為試驗組,腹腔注射FB-FT-VP2亞單位疫苗0.1 mL/只(10 μg FB-FT-VP2蛋白),第二組為對照組注射生理鹽水0.1 mL/只。免疫后第21天小鼠尾靜脈采血分離血清。

    1.2.7.3 CDV中和抗體檢測

    將免疫小鼠血清用不含牛血清的細胞維持液從1∶16作倍比稀釋至1∶128,取 4個稀釋度分別與200 TCID50/0.1 mL的CDV毒液等量混合,另取200 TCID50/0.1 mL的病毒液加入等體積細胞維持液作為病毒對照,置37℃作用1 h,接種Vero細胞單層96孔培養(yǎng)板,每個稀釋度8孔,每孔0.1 mL,同時設對照細胞8孔(只加維持液)。接種后,置5%二氧化碳、37℃條件下培養(yǎng)5 d,觀察CPE,病毒對照細胞孔均應出現(xiàn)CPE,細胞對照孔無CPE,按Reed-Muench法計算血清中和抗體效價。

    1.2.7.4 CPV中和抗體檢測

    小鼠免疫血清CPV中和抗體檢測方法同

    1.2.7.3,所用細胞為F81。

    2 結果

    2.1 FB-FT-VP2基因合成及表達質粒的鑒定

    合成FB-FT-VP2基因共1 788 bp,并將該片段克隆到pET-28a(+)載體上構建pET-28a-FB-FTVP2質粒,經(jīng)BamHI、XhoI雙酶切鑒定,酶切得到的目的片段為1 788 bp,見圖2。

    圖2 pET-28a-FB-FT-VP2的酶切鑒定

    2.2 融合蛋白的表達

    以BL21(DE3)未轉化菌體蛋白做陰性對照,SDS-PAGE電泳,Western-blot檢測pET-28a-FBFT-VP2轉化菌表達融合蛋白情況。考馬斯亮藍染色,在66 KDa左右出現(xiàn)特異性條帶,見圖3。用CPV陽性血清作一抗,用辣根過氧化物酶標記的兔抗犬抗體作二抗對表達產(chǎn)物進行Western-blot,經(jīng)DAB顯色液顯色,在66 KDa左右出現(xiàn)特異性條帶,見圖4。結果表明FB-FT-VP2融合蛋白與CPV陽性血清可特異性結合。

    圖3 FB-FT-VP2融合蛋白的SDS-PAGE檢測

    圖4 FB-FT-VP2融合蛋白的Western-blot檢測

    2.3 VLP的透射電鏡檢測

    透射電鏡檢測顯示,能觀察到直徑約22 nm大小的VLPs,見圖5。

    2.4 融合蛋白的血凝效價測定

    FB-FT-VP2融合蛋白液對0.5%豚鼠紅細胞懸液的凝集價為1∶1 024,對照孔中的紅細胞無血凝,呈顯著紐扣狀,見圖6。

    圖6 FB-FT-VP2融合蛋白的血凝效價測定

    2.5 融合蛋白免疫效果檢測

    7周齡雌性BALB/c小鼠腹腔注射FB-FT-VP2亞單位疫苗0.1 mL/只(10 μg FB-FT-VP2蛋白),免疫后第21天尾靜脈采血分離血清。免疫組CDV中和抗體 1∶32(4/10)至 1∶64(6/10);CPV 中和抗體 1∶64(10/10)。對照組均未檢測到中和抗體。免疫小鼠血清中和后病毒接種細胞與細胞對照相比,細胞無明顯變化,形態(tài)基本完整;接種病毒的細胞病變明顯,成團、聚集或脫落。可見免疫小鼠血清中含有效中和抗體,見圖7。

    圖7 免疫小鼠血清病毒中和實驗

    3 討論

    利用VLPs展示外源病原的抗原表位,將外源表位正確折疊且充分暴露于VLPs表面更易于表位與B細胞受體結合,從而誘導高滴度的抗體水平。由于組裝的VLPs能模擬病毒結構,可使VLPs疫苗達到與全病毒相近的免疫效果。CPV疫苗能刺激有效的免疫保護[11-12]。隨著CPV衣殼結構的解析,基于VP2蛋白亞單位疫苗的研究不斷深入。研究者在CPV VLPs制備方面進行了大量研究,借助原核、真核、桿狀病毒及家蠶表達系統(tǒng)表達的CPV的VP2蛋白均可以自組裝成VLPs,重組的VP2 VLPs疫苗,能夠刺激較高的抗體滴度從而保護試驗動物抵抗CPV病毒攻擊[13-16]。CPV VP2蛋白組裝成的VLPs能模擬完整蛋白結構,比單獨的表位疫苗免疫原性好,能夠誘導高水平的體液免疫和細胞免疫。探索在不破壞VP2上自身抗原表位的同時將外源表位正確展示在VLPs表面的多價抗原,免疫動物可以獲得同時抵御CPV及外源病原攻擊的保護,可達到一針多防的效果。

    本實驗將CDV F蛋白的B細胞表位插入CPV VP2的氨基端,用CDV F蛋白的T細胞表位替換CPV VP2蛋白loop 2區(qū)域的218-LIPSHTGTSGTPTNIY-233氨基酸序列,人工合成編碼該融合蛋白的核苷酸序列,并克隆到pET-28a(+)載體上,轉化BL21(DE3)感受態(tài),成功表達了FB-FT-VP2融合蛋白。表達的重組蛋白純化后能體外組裝成VLPs,透射電鏡可以觀測到約22 nm大小VLPs結構,與天然的CPV粒子大小接近。FB-FT-VP2融合蛋白組成的VLPs具有與天然CPV粒子相似的血凝特性。Western-blot結果證實,該重組融合蛋白具有良好的反應原性。免疫BALB/c小鼠能刺激產(chǎn)生針對于CPV和CDV的中和抗體。本實驗為重組CDV和CPV新型亞單位疫苗的研究提供了新的探索途徑,為犬的多價亞單位疫苗研究奠定了一定的基礎。

    4 結論

    大腸桿菌表達系統(tǒng)表達的含CDVF基因B、T細胞抗原表位重組CPV VP2蛋白可自我組裝成VLPs,并具有血凝活性,可產(chǎn)生刺激機體中和抗體?;隗w外中和實驗,構建的雙價疫苗有望可同時預防犬細小病毒病和犬瘟熱。

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