免疫細(xì)胞在腫瘤骨轉(zhuǎn)移骨微環(huán)境調(diào)控中的作用研究進(jìn)展

唐亮 朱麗娟 呂成偉 康輝

［摘要］ ??腫瘤的發(fā)生發(fā)展與其所在的微環(huán)境密切相關(guān)，在腫瘤發(fā)生骨轉(zhuǎn)移的過程中，骨髓微環(huán)境中大量的免疫細(xì)胞對(duì)于腫瘤細(xì)胞的定植以及轉(zhuǎn)移灶的形成，發(fā)揮了重要的作用，其中較為顯著的就是協(xié)助腫瘤細(xì)胞發(fā)揮免疫逃逸作用。因此如何針對(duì)腫瘤的免疫逃逸進(jìn)行有效干預(yù)顯得尤為重要。本文就巨噬細(xì)胞、骨髓來源的抑制細(xì)胞以及淋巴細(xì)胞在腫瘤骨轉(zhuǎn)移中的作用進(jìn)行綜述，為腫瘤免疫治療的基礎(chǔ)研究和臨床治療提供參考。

［關(guān)鍵詞］ ?腫瘤轉(zhuǎn)移；骨腫瘤；骨和骨組織；腫瘤微環(huán)境；腫瘤逃逸；免疫系統(tǒng)；綜述

［中圖分類號(hào)］ ?R73-37;R392.1

［文獻(xiàn)標(biāo)志碼］ ?A

Research advances in the role of immune cells in the regulation of bone microenvironment in bone metastasis of tumor

TANG Liang， ZHU Lijuan， LYU Chengwei， KANG Hui

（Department of Orthopedics， 989 Hospital of the Joint Logistic Support Force of The Chinese Peoples Liberation Army， Luoyang 471031， China）

;［ABSTRACT］ ?The development and progression of tumor is closely associated with the microenvironment in which the tumor is located. In the process of bone metastasis， the numerous immune cells in bone marrow microenvironment play an important role in the colonization of tumor cells and the formation of metastases， and in particular， they can assist tumor cells with immune escape. Therefore， it is especially important to explore effective interventions to suppress the immune escape of tumor. This article reviews the role of macrophages， myeloid-derived suppressor cells， and lymphocytes in bone metastasis， so as to provide a refe-rence for the basic research on tumor immunotherapy and clinical treatment.

［KEY WORDS］?Neoplasm metastasis; Bone neoplasms; Bone and bones; Tumor microenvironment; Tumor escape; Immune system; Review

隨著腫瘤的發(fā)生發(fā)展，其轉(zhuǎn)移率會(huì)逐漸增高，骨組織是腫瘤轉(zhuǎn)移的常見部位。腫瘤發(fā)生骨轉(zhuǎn)移的主要過程包括腫瘤細(xì)胞在原位組織中的增殖，以及通過分泌細(xì)胞因子、外泌體等物質(zhì)改造骨微環(huán)境。隨后，腫瘤細(xì)胞從原位組織進(jìn)入循環(huán)系統(tǒng)，最終到達(dá)骨組織，并逐漸形成轉(zhuǎn)移灶。在腫瘤發(fā)生骨轉(zhuǎn)移的過程中，免疫細(xì)胞與腫瘤細(xì)胞處于一種博弈的狀態(tài)，在腫瘤發(fā)生初期，固有免疫系統(tǒng)以及適應(yīng)性免疫系統(tǒng)均被激活，部分腫瘤細(xì)胞被清除，抑制腫瘤的發(fā)生發(fā)展［1-2］。然而，免疫系統(tǒng)對(duì)腫瘤的清除作用存在局限性，腫瘤細(xì)胞通過分泌和表達(dá)多種蛋白，直接或間接地抑制免疫系統(tǒng)的殺傷功能。骨微環(huán)境中存在多種免疫細(xì)胞［3-4］，主要包括巨噬細(xì)胞、骨髓來源抑制性細(xì)胞（MDSCs）、調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞（Treg）、調(diào)節(jié)性B淋巴細(xì)胞（Breg）及輔助性T淋巴細(xì)胞17（Th17），這些免疫細(xì)胞在腫瘤細(xì)胞改造骨微環(huán)境中以及免疫逃逸發(fā)生過程中均發(fā)揮有重要作用。本文就巨噬細(xì)胞、骨髓來源的抑制細(xì)胞以及淋巴細(xì)胞在腫瘤骨轉(zhuǎn)移中的作用進(jìn)行綜述，為腫瘤骨轉(zhuǎn)移的免疫靶向治療提供參考。

1 巨噬細(xì)胞

1.1 腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞（TAMs）

機(jī)體出現(xiàn)腫瘤后，巨噬細(xì)胞隨之呈現(xiàn)趨化現(xiàn)象。大部分實(shí)體腫瘤通過分泌細(xì)胞因子招募巨噬細(xì)胞到達(dá)腫瘤微環(huán)境，如集落刺激因子、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子A、腦信號(hào)蛋白3A以及趨化因子CCL2、CXCL12等。腫瘤微環(huán)境當(dāng)中的巨噬細(xì)胞被稱為TAMs。TAMs的出現(xiàn)通常會(huì)導(dǎo)致患者不良的預(yù)后［5-6］。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)以及臨床研究均發(fā)現(xiàn)，TAMs具有促進(jìn)腫瘤細(xì)胞轉(zhuǎn)移的作用［7-8］。TAMs可以抑制CD8+T淋巴細(xì)胞在腫瘤微環(huán)境中的浸潤(rùn)［9］，其一方面是通過表達(dá)抑制性分子，如程序性死亡配體1、細(xì)胞激活抑制因子1發(fā)揮抑制作用，另一方面，還可以通過趨化因子CCL22招募Treg間接發(fā)揮作用。這樣TAMs抑制了淋巴細(xì)胞的活性，減弱其對(duì)腫瘤細(xì)胞的殺傷能力，使得循環(huán)腫瘤細(xì)胞（CTCs）的數(shù)量增多，為骨轉(zhuǎn)移的發(fā)生奠定了基礎(chǔ)。TAMs還可作用于血管生成素受體2，促進(jìn)血管新生，一方面有助于腫瘤原位播散，另一方面為腫瘤轉(zhuǎn)移灶提供了更多的養(yǎng)分，促進(jìn)轉(zhuǎn)移灶的形成［10］。在腫瘤細(xì)胞轉(zhuǎn)移發(fā)生過程中，TAMs與腫瘤細(xì)胞之間存在一種循環(huán)效應(yīng)，即腫瘤細(xì)胞分泌的集落刺激因子1（CSF1）可以招募巨噬細(xì)胞，并且促使其分泌表皮生長(zhǎng)因子（EGF），分泌的EGF又可作用于腫瘤細(xì)胞的EGF受體，增加侵襲小體的生成和基質(zhì)的降解，促進(jìn)了腫瘤發(fā)展，并產(chǎn)生更多的CSF1，從而形成了一種惡性循環(huán)［9］。巨噬細(xì)胞的極化特性也在腫瘤轉(zhuǎn)移過程中發(fā)揮重要的作用，當(dāng)腫瘤細(xì)胞中組氨酸糖蛋白表達(dá)量較高時(shí)，TAMs的極性會(huì)發(fā)生變化，從促進(jìn)腫瘤轉(zhuǎn)移轉(zhuǎn)變?yōu)橐种颇[瘤轉(zhuǎn)移，使血管通透性趨于正常，從而抑制了腫瘤播散和轉(zhuǎn)移。因此可以設(shè)想，是否可以通過干預(yù)TAMs的極化達(dá)到抑制腫瘤轉(zhuǎn)移的目的。

1.2 轉(zhuǎn)移相關(guān)巨噬細(xì)胞（MAMs）

腫瘤發(fā)生轉(zhuǎn)移時(shí)，可通過分泌細(xì)胞因子和外泌體等方式，誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞的分化，使得巨噬細(xì)胞具有促進(jìn)腫瘤轉(zhuǎn)移的功能。例如，當(dāng)巨噬細(xì)胞受到IL-4、IL-13刺激時(shí)，則具有促進(jìn)腫瘤發(fā)展的能力［10］。

巨噬細(xì)胞可分化為多種亞群，在腫瘤微環(huán)境中發(fā)揮著不同的作用，具有代表性的為MAMs。相關(guān)研究表明，單核細(xì)胞通過CCL2/CCR2趨化因子信號(hào)通路，被招募到腫瘤微環(huán)境中并分化為MAMs［11］。如MAMs可利用乳腺癌細(xì)胞的血管黏附分子，通過AKT信號(hào)通路，協(xié)助循環(huán)腫瘤細(xì)胞發(fā)生定植，從而促進(jìn)轉(zhuǎn)移的發(fā)生［12］。

2 MDSCs

2.1 MDSCs的分類及作用機(jī)制

在腫瘤微環(huán)境當(dāng)中發(fā)現(xiàn)的特異性表達(dá)CD11b+CD14－CD33+的骨髓細(xì)胞被定義為MDSCs，其通過抑制機(jī)體的固有免疫和適應(yīng)性免疫系統(tǒng)，發(fā)揮促進(jìn)腫瘤發(fā)生發(fā)展作用。MDSCs又可根據(jù)其表面蛋白進(jìn)一步分為CD14highCD15－單核細(xì)胞來源的MDSCs，以及CD14lowCD15+粒細(xì)胞來源的MDSCs。在小鼠模型的研究中，表達(dá)CD11b和GR1的骨髓來源的未成熟細(xì)胞，根據(jù)其表面特異性蛋白和細(xì)胞形態(tài)，可分為單核細(xì)胞來源CD11b+LY6ChighLY6Glow，以及粒細(xì)胞來源的CD11b+LY6ClowLY6G+兩類MDSCs亞群，兩類亞群均可以不同程度地表達(dá)誘導(dǎo)性一氧化氮合酶（iNOS）和精氨酸酶1，其中iNOS有助于微環(huán)境中產(chǎn)生一氧化氮，以抑制T淋巴細(xì)胞JAK3以及STAT5的活性，從而發(fā)揮抑制T淋巴細(xì)胞功能［13］。MDSCs表達(dá)的arginase 1可以通過使左旋亮氨酸發(fā)生分解代謝，產(chǎn)生對(duì)于T淋巴細(xì)胞具有抑制作用的低L-arginine的微環(huán)境，當(dāng)環(huán)境中L-arginine降低后，T淋巴細(xì)胞CD3合成受到抑制，同時(shí)限制細(xì)胞周期素D3和細(xì)胞周期素依賴酶4的表達(dá)，從而抑制T淋巴細(xì)胞的活性［14］。

2.2 MDSCs調(diào)控腫瘤轉(zhuǎn)移的作用機(jī)制

當(dāng)血液、淋巴結(jié)、脾臟中的MDSCs含量升高時(shí)，預(yù)示著機(jī)體正處于腫瘤進(jìn)展中，MDSCs既可以浸潤(rùn)到原發(fā)腫瘤組織，也可以在轉(zhuǎn)移部位存活。在對(duì)腫瘤骨轉(zhuǎn)移的研究中發(fā)現(xiàn)，MDSCs可協(xié)助腫瘤細(xì)胞免疫逃逸，從而減弱免疫系統(tǒng)對(duì)腫瘤細(xì)胞的清除作用，加速骨轉(zhuǎn)移病灶的形成［15］。對(duì)小鼠腫瘤模型的研究結(jié)果顯示，伴隨著腫瘤的進(jìn)展，骨髓中浸潤(rùn)的MDSCs逐漸增多，當(dāng)通過抑制MMP9通路使MDSCs浸潤(rùn)減少后，腫瘤細(xì)胞在骨組織中的生長(zhǎng)得到了有效抑制［16］。

臨床及動(dòng)物模型研究顯示，MDSCs可以產(chǎn)生活性氧族（ROS），可通過抑制ROS活性減弱MDSCs對(duì)于T淋巴細(xì)胞的抑制作用［17］。轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β（TGF-β）、IL-3、IL-6、IL-10以及粒細(xì)胞巨噬細(xì)胞集落刺激因子等細(xì)胞因子均可誘導(dǎo)MDSCs產(chǎn)生ROS［18］。

在MDSCs與T淋巴細(xì)胞的直接接觸過程中，可產(chǎn)生過氧亞硝酸鹽，使T淋巴細(xì)胞受體和CD8分子發(fā)生硝基置換，干擾特異性抗原在T淋巴細(xì)胞上的結(jié)合，使致敏的記憶性T淋巴細(xì)胞失去對(duì)特異抗原的免疫反應(yīng)，從而發(fā)揮抑制免疫功能的作用［19］。

MDSCs也是一種前體細(xì)胞，在不同的誘導(dǎo)條件下可分化為中性粒細(xì)胞、樹突狀細(xì)胞和巨噬細(xì)胞，可通過抑制T淋巴細(xì)胞的增殖和相關(guān)細(xì)胞因子的產(chǎn)生來發(fā)揮其免疫抑制作用［20］。另一方面，在IFN-γ、IL-10的誘導(dǎo)下，MDSCs還可以促進(jìn)Treg的產(chǎn)生，發(fā)揮免疫抑制作用。對(duì)乳腺癌動(dòng)物模型研究顯示，乳腺癌細(xì)胞可以通過分泌CXCL1和CXCL5招募MDSCs，此過程與TGF-β信號(hào)通路密切相關(guān)；MDSCs和Treg還可被浸潤(rùn)到癌組織中的樹突狀細(xì)胞所招募，通過分泌細(xì)胞因子RANKL和IL-15協(xié)助乳腺癌細(xì)胞定植，促進(jìn)乳腺癌細(xì)胞骨轉(zhuǎn)移的發(fā)生［21］。

3 淋巴細(xì)胞

3.1 Treg

胸腺來源并具有免疫抑制作用的T細(xì)胞亞群被稱為Treg，在生理?xiàng)l件下，Treg具有維持自身抗原免疫耐受的特性，在防止發(fā)生自身免疫性疾病方面發(fā)揮重要作用，其可特異性表達(dá)CD4、CD25和FOXP3，常被縮寫為CD4+CD25+FOXP3+。根據(jù)分泌細(xì)胞因子的不同可分為Tr1和Tr3兩個(gè)亞型，前者主要分泌IL-10，后者則主要分泌TGF-β。

在機(jī)體出現(xiàn)腫瘤后，Treg的免疫抑制作用會(huì)被腫瘤細(xì)胞所利用，從而促進(jìn)腫瘤的轉(zhuǎn)移。Treg分泌的顆粒酶B具有誘導(dǎo)效應(yīng)T淋巴細(xì)胞凋亡的能力，在敲除顆粒酶B基因的動(dòng)物模型中可觀察到，分離的Treg抑制效應(yīng)性淋巴細(xì)胞的能力減弱［22］。在生理?xiàng)l件下Treg中CD4+T淋巴細(xì)胞的比例約為4%，在機(jī)體出現(xiàn)腫瘤后，其比例可上調(diào)至20%～30%。在易發(fā)生骨轉(zhuǎn)移的乳腺癌與前列腺癌中，腫瘤微環(huán)境中的Treg與效應(yīng)性T淋巴細(xì)胞的比例和預(yù)后密切相關(guān)，高水平的Treg提示存在不良預(yù)后［23］。在乳腺原位腫瘤中存在的Treg可分泌RANKL，其可作用于骨微環(huán)境中其他細(xì)胞的RANKL受體，促進(jìn)乳腺癌細(xì)胞骨轉(zhuǎn)移的發(fā)生［24］。

腫瘤細(xì)胞分泌的趨化因子CCL22可以通過CCR4招募Treg，使得Treg向腫瘤組織及轉(zhuǎn)移部位遷移，并在微環(huán)境中大量聚集發(fā)揮免疫抑制作用，并且腫瘤細(xì)胞分泌的TGF-β亦會(huì)促進(jìn)Treg的分化以及增殖。乳腺癌細(xì)胞分泌的前列腺素E2可通過招募Treg，促進(jìn)CD8+T淋巴細(xì)胞的凋亡，協(xié)助腫瘤發(fā)生免疫逃逸，促進(jìn)乳腺癌骨轉(zhuǎn)移的發(fā)生。在乳腺癌發(fā)生轉(zhuǎn)移的過程中，腫瘤來源的半乳糖凝集素可通過上調(diào)T淋巴細(xì)胞調(diào)節(jié)因子（LAT）增加Treg活性，發(fā)揮免疫抑制作用，從而促進(jìn)了轉(zhuǎn)移的發(fā)生［25］。

3.2 ?Th17

輔助性T淋巴細(xì)胞響應(yīng)于MDSCs分泌的IL-6、IL-23和TGF-β等細(xì)胞因子，而被招募至腫瘤微環(huán)境中，腫瘤組織以及微環(huán)境中的Th17分泌的IL-17，可進(jìn)一步增強(qiáng)MDSCs的浸潤(rùn)能力，從而形成一個(gè)級(jí)聯(lián)放大的循環(huán)效應(yīng)。在腫瘤部位被Th17招募的MDSCs，作用于腫瘤相關(guān)的成纖維細(xì)胞（CAFs），而CAFs分泌的粒細(xì)胞集落刺激因子，使得更多具有免疫抑制功能的骨髓細(xì)胞聚集?？梢姡谀[瘤部位聚集的Th17，通過招募MDSCs間接使腫瘤細(xì)胞發(fā)生免疫逃逸，而促進(jìn)腫瘤骨轉(zhuǎn)移的發(fā)生［26］。在一系列的免疫反應(yīng)過程中，Th17在TGF-β1的刺激下，還可分化為Treg，此過程與芳香烴受體（AhR）密切相關(guān)［27］。

3.3 ?Breg

Breg是一類特異性表達(dá)CD25和B220的一個(gè)B淋巴細(xì)胞亞群，根據(jù)Breg所分泌細(xì)胞因子的不同，可進(jìn)一步分為Br1、Br3兩個(gè)亞型，與Treg相應(yīng)亞型一致，這兩個(gè)亞型分別分泌IL-10和TGF-β。Breg可通過分泌抑制炎性反應(yīng)的細(xì)胞因子IL-10，而發(fā)揮免疫抑制的作用，協(xié)助腫瘤細(xì)胞逃脫免疫系統(tǒng)的攻擊，進(jìn)而促進(jìn)腫瘤轉(zhuǎn)移的發(fā)生。腫瘤細(xì)胞誘導(dǎo)的Breg還可直接抑制CD4+T淋巴細(xì)胞和CD8+T淋巴細(xì)胞的增殖，發(fā)揮免疫抑制作用；也可通過分泌TGF-β，使得CD4+T淋巴細(xì)胞向FOXP3+Treg轉(zhuǎn)變，誘導(dǎo)產(chǎn)生大量Treg，從而間接發(fā)揮免疫抑制作用。此外Breg發(fā)揮免疫抑制作用機(jī)制還包括，其通過表達(dá)的人凋亡相關(guān)因子配體（FasL）、腫瘤壞死因子相關(guān)凋亡誘導(dǎo)配體以及程序性死亡受體1的配體促使效應(yīng)細(xì)胞發(fā)生凋亡［28］。

4 結(jié)語

在腫瘤微環(huán)境中還存在其他的免疫細(xì)胞，如自然殺傷細(xì)胞（NK），NK也可對(duì)腫瘤細(xì)胞起到殺傷作用，然而在腫瘤發(fā)展過程中，當(dāng)酪氨酸激酶受體被抑制時(shí)，限制了NK細(xì)胞的殺傷作用，為腫瘤細(xì)胞發(fā)生轉(zhuǎn)移提供了有利條件［29］。有研究表明，在前列腺癌、胃癌以及食管鱗狀細(xì)胞癌中，均發(fā)現(xiàn)NK細(xì)胞受到了抑制［30］。NK細(xì)胞與TAMs功能類似，腫瘤細(xì)胞相關(guān)中性粒細(xì)胞（TANs）也可降低CD8+T淋巴細(xì)胞活性，促進(jìn)原發(fā)腫瘤的增殖［31］。

由此可見，免疫系統(tǒng)在清除腫瘤細(xì)胞的道路上并不是一帆風(fēng)順的，其殺傷作用會(huì)在一定程度上被腫瘤細(xì)胞所抑制。腫瘤細(xì)胞對(duì)轉(zhuǎn)移部位的微環(huán)境進(jìn)行了改造，使得免疫細(xì)胞的免疫應(yīng)答能力下降，從而產(chǎn)生了免疫逃逸現(xiàn)象。因此，腫瘤的轉(zhuǎn)移之所以難以治愈，與其利用多種免疫細(xì)胞所發(fā)揮的免疫逃逸作用密不可分。因此，關(guān)注腫瘤相關(guān)的免疫細(xì)胞，了解其作用機(jī)制，并針對(duì)腫瘤免疫逃逸關(guān)鍵蛋白進(jìn)行藥物研發(fā)，對(duì)腫瘤的治療具有重要的意義。

作者聲明： 唐亮、康輝參與了研究設(shè)計(jì)；唐亮、朱麗娟、呂成偉參與了論文的寫作和修改。所有作者均閱讀并同意發(fā)表該論文，且均聲明不存在利益沖突。

［參考文獻(xiàn)］

［1］HE N N， JIANG J T. Contribution of immune cells to bone metastasis pathogenesis［J］. Front Endocrinol， 2022，13：1019864.

［2］ DUNN G P， OLD L J， SCHREIBER R D. The immunobiology of cancer immunosurveillance and immunoediting［J］. Immunity， 2004，21（2）：137-148.

［3］ LIU C， WANG M， XU C L， et al. Immune checkpoint inhibitor therapy for bone metastases： Specific microenvironment and current situation［J］. J Immunol Res， 2021，2021：8970173.

［4］ XIANG L S， GILKES D M. The contribution of the immune system in bone metastasis pathogenesis［J］. Int J Mol Sci， 2019，20（4）：999.

［5］ SAWA-WEJKSZA K， KANDEFER-SZERSZE M. Tumor-associated macrophages as target for antitumor therapy［J］. Arch Immunol Ther Exp， 2018，66（2）：97-111.

［6］ XU Y J， ZENG H， JIN K F， et al. Immunosuppressive tumor-associated macrophages expressing interlukin-10 conferred poor prognosis and therapeutic vulnerability in patients with muscle-invasive bladder cancer［J］. J Immunother Cancer， 2022，10（3）：e003416.

［7］ FENG Y W， YE Z Q， SONG F R， et al. The role of TAMs in tumor microenvironment and new research progress［J］. Stem Cells Int， 2022，2022：5775696.

［8］ BATOON L， MCCAULEY L K. Cross talk between macrophages and cancer cells in the bone metastatic environment［J］. Front Endocrinol， 2021，12：763846.

［9］ FUJIWARA T， YAKOUB M A， CHANDLER A， et al. CSF1/CSF1R signaling inhibitor pexidartinib （PLX3397） reprograms tumor-associated macrophages and stimulates T-cell infiltration in the sarcoma microenvironment［J］. Mol Cancer Ther， 2021，20（8）：1388-1399.

［10］ MENDOZA-REINOSO V， MCCAULEY L K， FOURNIER P G J. Contribution of macrophages and T cells in skeletal metastasis［J］. Cancers， 2020，12（4）：1014.

［11］ QIAN B Z， LI J F， ZHANG H， et al. CCL2 recruits inflammatory monocytes to facilitate breast-tumour metastasis［J］. Nature， 2011，475（7355）：222-225.

［12］ ARDURA J A， RACKOV G， IZQUIERDO E， et al. Targeting macrophages： Friends or foes in disease？［J］. Front Pharmacol， 2019，10：1255.

［13］ BINGISSER R M， TILBROOK P A， HOLT P G， et al. Macrophage-derived nitric oxide regulates T cell activation via reversible disruption of the Jak3/STAT5 signaling pathway［J］. J Immunol， 1998，160（12）：5729-5734.

［14］ MUKHERJEE D， BERCZ L S， TOROK M A， et al. Regulation of cellular immunity by activating transcription factor 4［J］. Immunol Lett， 2020，228：24-34.

［15］ DYSTHE M， PARIHAR R. Myeloid-derived suppressor cells in the tumor microenvironment［J］. Adv Exp Med Biol， 2020，1224：117-140.

［16］ WU T， ZHANG X， LIU X X， et al. Single-cell sequencing reveals the immune microenvironment landscape related to anti-PD-1 resistance in metastatic colorectal cancer with high microsatellite instability［J］. BMC Med， 2023，21（1）：161.

［17］JI C W， SI J X， XU Y， et al. Mitochondria-targeted and ultrasound-responsive nanoparticles for oxygen and nitric oxide codelivery to reverse immunosuppression and enhance sonodynamic therapy for immune activation［J］. Theranostics， 2021，11（17）：8587-8604.

［18］ DONG S T， GUO X N， HAN F， et al. Emerging role of natural products in cancer immunotherapy［J］. Acta Pharm Sin B， 2022，12（3）：1163-1185.

［19］ ZHAO H Y， TENG D， YANG L F， et al. Myeloid-derived itaconate suppresses cytotoxic CD8+ T cells and promotes tumour growth［J］. Nat Metab， 2022，4（12）：1660-1673.

［20］ LONG H X， JIA Q Z， WANG L Y， et al. Tumor-induced erythroid precursor-differentiated myeloid cells mediate immunosuppression and curtail anti-PD-1/PD-L1 treatment efficacy［J］. Cancer Cell， 2022，40（6）：674-693.e7.

［21］ IGLESIAS-ESCUDERO M， ARIAS-GONZLEZ N， MA-

RTNEZ-CCERES E. Regulatory cells and the effect of cancer immunotherapy［J］. Mol Cancer， 2023，22（1）：26.

［22］ SUN X H， ZHENG X X， ZHANG X， et al. Exosomal microRNA-23b-3p from bone marrow mesenchymal stem cells maintains T helper/Treg balance by downregulating the PI3k/Akt/NF-κB signaling pathway in intracranial aneurysm［J］. Brain Res Bull， 2020，165：305-315.

［23］ TAKAYAMA K， INOUE T， NARITA S， et al. Inhibition of the RANK/RANKL signaling with osteoprotegerin prevents castration-induced acceleration of bone metastasis in castration-insensitive prostate cancer［J］. Cancer Lett， 2017，397：103-110.

［24］ VAN DAM P A， VERHOEVEN Y， TRINH X B. The non-bone-related role of RANK/RANKL signaling in cancer［J］. Adv Exp Med Biol， 2020，1277：53-62.

［25］ SEIF F， TORKI Z， ZALPOOR H， et al. Breast cancer tumor microenvironment affects Treg/IL-17-producing Treg/Th17 cell axis： Molecular and therapeutic perspectives［J］. Mol Ther Oncolytics， 2023，28：132-157.

［26］ SHIBABAW T， TEFERI B， AYELIGN B. The role of Th-17 cells and IL-17 in the metastatic spread of breast cancer： As a means of prognosis and therapeutic target［J］. Front Immunol， 2023，14：1094823.

［27］ GAGLIANI N， AMEZCUA VESELY M C， ISEPPON A， et al. Th17 cells transdifferentiate into regulatory T cells during resolution of inflammation［J］. Nature， 2015，523（7559）：221-225.

［28］ MICHAUD D， STEWARD C R， MIRLEKAR B， et al. Regulatory B cells in cancer［J］. Immunol Rev， 2021，299（1）：74-92.

［29］ SIVORI S， PENDE D， QUATRINI L， et al. NK cells and ILCs in tumor immunotherapy［J］. Mol Aspects Med， 2021，80：100870.

［30］ SHIMASAKI N， JAIN A， CAMPANA D. NK cells for cancer immunotherapy［J］. Nat Rev Drug Discov， 2020，19（3）：200-218.

［31］ FENG M， WANG F， LIU X Y， et al. Neutrophils as key re-

gulators of tumor immunity that restrict immune checkpoint blockade in liver cancer［J］. Cancer Biol Med， 2023，20（6）：421-437.

（本文編輯 耿波 厲建強(qiáng)）