牛澤淼,李 鑫,陳 寧,梁振華,趙 娟,呂 品,張 巖,付程浩,*
(1.河北醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,河北 石家莊 050017;2.河北醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,河北 石家莊 050017;3.河北醫(yī)科大學(xué)教學(xué)實(shí)驗(yàn)中心,河北 石家莊 050017;4.河北省食品檢驗(yàn)研究院 河北省食品安全重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河北 石家莊 050227)
食用菌多糖是大型可食用真菌的主要活性物質(zhì)之一,有明確報(bào)道的食用菌多糖種類已超過(guò)百種,例如香菇多糖、靈芝多糖、秀珍菇多糖、金針菇多糖等[1-2]。研究表明,金針菇多糖(Flammulina velutipespolysaccharide,F(xiàn)VP)具有抗腫瘤、免疫調(diào)節(jié)、抗炎、抗氧化、抗衰老和改善腸道菌群等多種潛在的生物活性功能[1,3-4]。Ma Sheng等[5]的研究顯示,F(xiàn)VP可以增強(qiáng)小鼠抗氧化能力,減少血清中炎癥因子白介素(interleukin,IL)-1β、IL-6和腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)的含量,緩解腸炎表型,并指出這一過(guò)程可能是通過(guò)抑制核苷酸結(jié)合寡聚化結(jié)構(gòu)域樣受體蛋白3-與凋亡相關(guān)的斑點(diǎn)樣蛋白-Caspase-1軸的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)實(shí)現(xiàn)的。有研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)VP可以通過(guò)調(diào)節(jié)特定的腸道微生物來(lái)改善小鼠潰瘍性結(jié)腸炎的癥狀,還可調(diào)節(jié)小鼠腸道菌群的組成增強(qiáng)免疫反應(yīng)[6-8]。此外,F(xiàn)VP可調(diào)節(jié)Toll樣受體(Toll-like receptor,TLR)4-核因子(nuclear factor,NF)-κB信號(hào)通路改善炎癥、氧化應(yīng)激和細(xì)胞凋亡,減輕葡聚糖硫酸鈉鹽引起的炎癥性腸病和肝損傷[9-10]。
食品在熏制、烘烤和煎炸過(guò)程中會(huì)產(chǎn)生大量的多環(huán)芳烴類致癌物,苯并[a]芘(benzo[a]pyrene,BaP)是多環(huán)芳烴的典型代表,分子式為C20H12[11]。此外,BaP還存在于汽車尾氣、香煙煙霧、煤焦油中,主要經(jīng)由食物攝入、呼吸、皮膚暴露進(jìn)入人體[12]。早在1930年,BaP就因其致癌活性而廣為人知[13]。近年來(lái),BaP引發(fā)的心血管損傷引起了人們的關(guān)注。研究表明,血管壁的內(nèi)皮細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞是BaP的重要靶細(xì)胞[14],BaP進(jìn)入細(xì)胞后,能夠與芳香烴受體(aryl hydrocarbon receptor,AhR)結(jié)合,在AhR核轉(zhuǎn)位器的協(xié)助下一起控制異物代謝酶的表達(dá),如細(xì)胞色素(cytochrome,CYP)家族基因CYP1A1和CYP1B1[15]。同時(shí),胞內(nèi)的BaP在CYP1A1介導(dǎo)的生物轉(zhuǎn)化過(guò)程中生成二羥環(huán)氧苯并芘(benzo[a]pyrene dihydrodiol epoxide,BPDE)進(jìn)而形成BPDE-DNA加合物,誘導(dǎo)細(xì)胞基因突變[16]。此外,BaP還可以通過(guò)激活絲裂原活化蛋白激酶信號(hào)通路、NF-κB信號(hào)通路、有絲分裂原激活蛋白激酶信號(hào)通路、氨基末端激酶信號(hào)通路上調(diào)血管細(xì)胞黏附分子-1、單核細(xì)胞趨化蛋白-1(monocyte chemotactic protein-1,MCP-1)等炎癥因子的表達(dá),引發(fā)血管炎癥損傷[12,17-18]。
炎癥因子對(duì)促炎細(xì)胞的調(diào)控和募集是血管炎癥損傷的核心事件,其中造血祖細(xì)胞的增殖和分化直接影響著炎癥細(xì)胞生成[19-21]。研究顯示,TNF-α和巨噬細(xì)胞集落刺激因子共同調(diào)控造血c-Kit+Sca-1+祖細(xì)胞的分化和粒細(xì)胞的生成,增加外周循環(huán)中性粒細(xì)胞的水平,加重心血管疾病的風(fēng)險(xiǎn)[21]。最近有證據(jù)顯示,橙皮素能夠下調(diào)BaP引發(fā)的人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞系(EAhy 926)中AhR活化,減少IL-1β和TNF-α分子產(chǎn)生,延緩低密度脂蛋白積累,從而緩解動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)展[22]。Gdula-Argasińska等[23]指出消退素D1處理會(huì)下調(diào)CYP1A1基因表達(dá)和蛋白活性,抑制環(huán)氧合酶2和前列腺素E合成酶蛋白生成,具有修復(fù)人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞損傷的潛力。
目前,尚不清楚FVP是否具有調(diào)節(jié)BaP引發(fā)的血管炎癥損傷的潛能。因此,本研究在動(dòng)物水平檢測(cè)了FVP灌胃前后BaP處理組小鼠血管炎癥分子的表達(dá)水平,以及體內(nèi)造血祖細(xì)胞和循環(huán)促炎細(xì)胞的水平,并在細(xì)胞水平進(jìn)行驗(yàn)證。
6 周齡SPF級(jí)雄性C57/BL6小鼠購(gòu)自遼寧長(zhǎng)生生物技術(shù)有限公司,生產(chǎn)許可證號(hào)SYXK(遼)2018-0003;Raw264.7細(xì)胞 中國(guó)武漢普諾賽生命科技有限公司。
BaP(純度>96%)美國(guó)Sigma公司;2’,7’-二氯熒光素二乙酸酯(2’,7’-dichlorodihydrofluorescein diacetate,DCFH-DA)探針 美國(guó)Cayman Chemical公司;IL-6、細(xì)胞間黏附分子-1(intercellular cell adhesion molecule-1,ICAM-1)、MCP-1單克隆抗體 沈陽(yáng)萬(wàn)類生物科技有限公司;c-Kit、Sca-1、Ly6G、Ly6C、CD11b、CD45、F4/80、CD16/32單克隆抗體 美國(guó)Biolegend公司;微量丙二醛(malondialdehyde,MDA)測(cè)試盒、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)測(cè)定試劑盒 南京建成公司;胎牛血清 德國(guó)Biotech公司;胰酶、DMEM培養(yǎng)基 美國(guó)Gibco公司;Cell Counting Kit-8試劑盒 上海圣爾生物科技有限公司。
TDL-50B低速臺(tái)式離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;Avanti J-30I高速離心機(jī) 美國(guó)Beckman Coulter公司;Guava easyCyte系列微毛細(xì)管細(xì)胞分析儀、Milli-Q超純水系統(tǒng) 美國(guó)Millipore公司;DEL-100酶聯(lián)免疫分析儀杭州米歐儀器有限公司;BD FACSVerse流式細(xì)胞儀美國(guó)BD公司;DM2000 LED微細(xì)胞顯微鏡 德國(guó)Leica公司。
1.3.1 FVP提取
參考已發(fā)表的文獻(xiàn)[4,24]從金針菇子實(shí)體中提取FVP。取干燥的金針菇粉,經(jīng)石油醚常溫浸提3 次,陰干溶劑;加入2 倍體積70%乙醇溶液常溫浸提24 h,重復(fù)3 次,陰干溶劑;金針菇粉按照料液比1∶30(g/mL)加入蒸餾水,90 ℃提取3 h,重復(fù)提取3 次,合并濾液后進(jìn)行減壓濃縮,加入95%乙醇溶液調(diào)整終體積分?jǐn)?shù)為75%,靜置醇沉24 h后過(guò)濾收集多糖沉淀。沉淀分別用無(wú)水乙醇、丙酮、石油醚淋洗2 次,陰干溶劑后復(fù)溶于蒸餾水,得粗多糖溶液。使用Sevag試劑法(氯仿∶正丁醇=4∶1,V/V)除蛋白,重復(fù)除蛋白10 次[4,24]。溶液旋蒸除去氯仿,進(jìn)行二次醇沉,加入95%乙醇至終體積分?jǐn)?shù)75%,靜置24 h,收集沉淀溶于蒸餾水后使用透析袋(8 000~14 000 Da)于4 ℃透析4 d,每隔5 h換一次蒸餾水,冷凍干燥后得FVP。
1.3.2 動(dòng)物飼養(yǎng)與處理
40 只體質(zhì)量為18~20 g的雄性C57/BL6小鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)一周后,隨機(jī)分為5 組,每組8 只。分別為對(duì)照組,BaP(200 mg/(kgmb·d))處理組,F(xiàn)VP灌胃低劑量組(50 mg/(kgmb·d))、中劑量組(100 mg/(kgmb·d))及高劑量組(200 mg/(kgmb·d))(分別記為FVP 50+BaP組、FVP 100+BaP組、FVP 200+BaP組,F(xiàn)VP后面的數(shù)據(jù)表示FVP灌胃的劑量,下同)。FVP劑量按小鼠體質(zhì)量計(jì)算,溶于120 μL三蒸水后灌胃FVP組小鼠,同時(shí)對(duì)照組和BaP組給予同等體積的三蒸水,連續(xù)飼養(yǎng)12 d;第12天,F(xiàn)VP組預(yù)先BaP灌胃12 h后再進(jìn)行FVP灌胃,BaP組灌胃200 mg/kg的BaP,對(duì)照組灌胃等體積三蒸水,持續(xù)3 d。
1.3.3 病理切片、染色及炎癥因子表達(dá)水平的測(cè)定
使用4%多聚甲醛固定小鼠胸腹主動(dòng)脈30 min,隨后使用OTC包埋劑包埋動(dòng)脈組織,-80 ℃冷凍2 h后通過(guò)冰凍切片機(jī)制成5 μm的切片;預(yù)冷丙酮固定切片,使用蘇木精染色,鹽酸乙醇分化液分化,促藍(lán)液反藍(lán),伊紅染色,每染色一次使用流水清洗一次,通過(guò)分級(jí)乙醇脫水,并在二甲苯中清洗,最后樹(shù)膠封片,在顯微鏡下觀察。使用切片進(jìn)行免疫組化(immunohistochemistry,IHC)染色前置于室溫1 h修復(fù)抗原,預(yù)冷丙酮固定30 min,使用內(nèi)源性過(guò)氧化物酶阻斷,山羊血清封閉,一抗(IL-6、MCP-1和ICAM-1)4 ℃孵育過(guò)夜,生物素標(biāo)記山羊抗小鼠IgG抗體,辣根酶標(biāo)記鏈霉素卵白素,DAB顯色液顯色,蘇木精染色,鹽酸乙醇分化液分化,通過(guò)分級(jí)乙醇脫水,并在二甲苯中清洗,最后樹(shù)膠封片,在顯微鏡下觀察。使用Image Pro Plus軟件統(tǒng)計(jì)抗體染色區(qū)并計(jì)算平均光密度值(mean fluorescence intensity,MFI),并計(jì)算各組抗體的相對(duì)表達(dá)量。
1.3.4 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)促炎細(xì)胞及骨髓造血細(xì)胞亞群比例變化
按文獻(xiàn)[25-26]方法收集脾臟、骨髓和血液中的免疫細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度為106cell/100 μL。孵育抗體,使用BD FACSVerse流式細(xì)胞儀上機(jī)檢測(cè),數(shù)據(jù)通過(guò)FlowJo V10軟件進(jìn)行分析。通過(guò)CD11b+Ly6ChighLy6G-識(shí)別單核細(xì)胞,C D 11 b+F 4/8 0+識(shí)別巨噬細(xì)胞,CD11b+Ly6ClowLy6G+識(shí)別中性粒細(xì)胞,c-Kit+Sca-1+識(shí)別造血祖細(xì)胞,c-Kit+Sca-1-CD34+CD16/32high識(shí)別粒細(xì)胞巨噬細(xì)胞祖細(xì)胞(granulocyte macrophage progenitor,GMP),c-Kit+Sca-1-識(shí)別造血干細(xì)胞,c-Kit+Sca-1-CD34+CD16/32mid識(shí)別普通髓系祖細(xì)胞(common myeloid progenitor,CMP)。
1.3.5 細(xì)胞活性氧(reactive oxygen species,ROS)水平測(cè)定
將Raw264.7細(xì)胞密度調(diào)整為2×104個(gè)/mL,在6 孔板中按照每孔2 mL接種細(xì)胞懸液。置于含5% CO2、37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,使細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)。吸去上清液,分別加入含不同質(zhì)量濃度(0、30、60、125、250 μg/mL)FVP的DMEM培養(yǎng)基2 mL,繼續(xù)在培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2 h后,除對(duì)照孔其余5 孔使用1 μg/mL BaP處理繼續(xù)培養(yǎng)2 h或10 h,然后每孔加入1 μL DCFH-DA熒光染色劑,孵育30 min使用Guava easyCyte系列微毛細(xì)管細(xì)胞分析儀上機(jī)測(cè)定異硫氰酸酯(fluoresceine isothiocyanate,F(xiàn)ITC)熒光強(qiáng)度。通過(guò)FlowJo V10軟件計(jì)算出每組的MFI。
1.3.6 MDA含量檢測(cè)
根據(jù)MDA測(cè)試盒說(shuō)明書(shū)使用各組(對(duì)照組、BaP組、FVP 30+BaP組、FVP 60+BaP組、FVP 125+BaP組、FVP 250+BaP組)100 μL細(xì)胞上清液與其余試劑按比例混勻,并設(shè)立空白管。將各組試管渦旋混勻,95 ℃水浴40 min,取出后流水冷卻,按每孔100 μL將各組混合液加入96 孔板,使用酶標(biāo)儀測(cè)定各組532 nm波長(zhǎng)處吸光度。按照說(shuō)明書(shū)公式計(jì)算MDA濃度。
1.3.7 SOD活力檢測(cè)
根據(jù)SOD測(cè)試盒說(shuō)明書(shū)使用各組(對(duì)照組、BaP組、FVP 30+BaP組、FVP 60+BaP組、FVP 125+BaP組、FVP 250+BaP組)20 μL細(xì)胞勻漿上清液與其余試劑按比例混勻加入96 孔板,并設(shè)立空白孔。將各孔混勻,37 ℃烘箱孵育20 min,450 nm波長(zhǎng)處酶標(biāo)儀讀數(shù),測(cè)定各組吸光度。按照說(shuō)明書(shū)公式計(jì)算SOD活力。
所有細(xì)胞實(shí)驗(yàn)至少重復(fù)3 次,動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中每種處理至少7 只動(dòng)物。所有數(shù)據(jù)結(jié)果均采用表示,采用GraphPad Prism 8和Microsoft Excel 2021軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析,并采用ordinary One-way ANOVA檢驗(yàn)法進(jìn)行顯著性分析,P<0.05被認(rèn)為具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
研究結(jié)果顯示,與對(duì)照組小鼠相比,BaP染毒小鼠的血管組織IL-6、MCP-1和ICAM-1分子的相對(duì)表達(dá)水平至少增加1 倍(圖1)。使用50、100、200 mg/kg的FVP預(yù)先灌胃之后BaP染毒小鼠的血管組織表達(dá)IL-6、MCP-1和ICAM-1分子的表達(dá)水平顯著降低,且具有劑量依賴性(圖1)。上述結(jié)果提示,F(xiàn)VP灌胃能夠顯著下調(diào)BaP染毒小鼠血管組織炎癥分子的表達(dá)。
圖1 FVP灌胃對(duì)BaP誘發(fā)的血管炎癥因子表達(dá)水平的影響Fig.1 Effect of FVP gavage on the expression of vascular inflammatory cytokinesin BaP-induced mice
研究結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,BaP染毒小鼠外周血中單核細(xì)胞(CD11b+Ly6ChighLy6G-)、巨噬細(xì)胞(CD11b+F4/80+)和中性粒細(xì)胞(CD11b+Ly6ClowLy6G+)比例以及脾臟中巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞比例顯著增加(圖2)。與炎癥分子表達(dá)下降相一致的是,50、100 mg/kg FVP灌胃后外周血中單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞以及脾臟中巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞比例大幅下降。同時(shí)200 mg/kg FVP灌胃后脾臟中中性粒細(xì)胞和巨噬細(xì)胞比例也大幅下降。然而,200 mg/kg FVP灌胃后外周血中3 種促炎細(xì)胞比例和脾臟中單核細(xì)胞比例與BaP染毒組無(wú)顯著差異。此外,上述3 種類型促炎細(xì)胞比例上調(diào)與FVP灌胃劑量增加正相關(guān)。上述結(jié)果提示,較低劑量的FVP灌胃能夠顯著下調(diào)BaP染毒小鼠外周血和脾臟中3 種促炎細(xì)胞比例。
圖2 FVP灌胃對(duì)BaP誘發(fā)的外周促炎細(xì)胞積累的影響Fig.2 Effect of FVP gavage on BaP-induced accumulation of proinflammatory cells
研究結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,BaP染毒小鼠骨髓中造血祖細(xì)胞(c-Kit+Sca-1+)的比例增加了近2 倍,同時(shí)GMP(c-Kit+Sca-1-CD34+CD16/32high)的比例增加近1.5 倍;與之相反的是,BaP染毒小鼠骨髓中造血干細(xì)胞(c-Kit+Sca-1-)和CMP(c-Kit+Sca-1-CD34+CD16/32mid)的比例下降,其中MCP下降超過(guò)一半。而FVP灌胃逆轉(zhuǎn)了這一現(xiàn)象,造血祖細(xì)胞比例下降至與對(duì)照組接近,且50 mg/kg FVP灌胃后GMP和造血干細(xì)胞的比例基本恢復(fù)至正常水平,200 mg/kg FVP灌胃后MCP比例相較BaP染毒小鼠明顯增加,接近正常小鼠骨髓細(xì)胞構(gòu)成的比例(圖3)。以上結(jié)果提示FVP灌胃使骨髓造血細(xì)胞的構(gòu)成回歸至健康對(duì)照組水平,顯著改善了BaP誘發(fā)的骨髓造血系統(tǒng)紊亂。
圖3 FVP灌胃對(duì)BaP誘發(fā)骨髓造血作用紊亂的影響Fig.3 Effect of FVP gavage on BaP-induced hemopoietic disorder in bone marrow
研究結(jié)果顯示,1 μg/mL BaP處理2 h不可誘發(fā)Raw264.7細(xì)胞產(chǎn)生明顯的氧化應(yīng)激,BaP處理時(shí)間延長(zhǎng)至10 h可誘發(fā)Raw264.7細(xì)胞產(chǎn)生明顯的氧化應(yīng)激,BaP組DCFH-DA的MFI較對(duì)照組增加近百倍,125 μg/mL和250 μg/mL FVP預(yù)處理組DCFH-DA的M F I 較BaP 組顯著下降(圖4 A)。同時(shí)M D A 檢測(cè)結(jié)果表明,BaP處理10 h后細(xì)胞上清液中MDA含量增加2 倍以上,F(xiàn)VP預(yù)處理組細(xì)胞上清液中MDA含量較BaP組顯著降低,其中60 μg/mL FVP預(yù)處理組下降最明顯,接近正常對(duì)照水平,其余FVP預(yù)處理組較BaP組下降約16%(圖4B)。SOD檢測(cè)結(jié)果表明,對(duì)照組細(xì)胞勻漿上清液中SOD活力為23 U/mL左右,而B(niǎo)aP處理10 h后細(xì)胞勻漿上清液中SOD活力下降至約19 U/mL,F(xiàn)VP預(yù)處理組細(xì)胞勻漿上清液中SOD活力較BaP組顯著改善,其中60 μg/mL FVP預(yù)處理組改善最明顯,接近正常對(duì)照水平,其余FVP預(yù)處理組細(xì)胞勻漿上清液中SOD活力恢復(fù)至約21 U/mL(圖4C)。結(jié)果提示,F(xiàn)VP預(yù)處理能夠顯著抑制BaP引發(fā)Raw264.7細(xì)胞的氧化應(yīng)激水平。
圖4 FVP預(yù)處理對(duì)BaP誘發(fā)Raw264.7細(xì)胞氧化應(yīng)激水平的影響Fig.4 Effect of FVP pretreatment on oxidative stress in Raw264.7 cells induced by BaP
BaP是一類備受世界各國(guó)關(guān)注的食源性污染物,主要在食品熏、炸、燒、烤等加工過(guò)程中產(chǎn)生,通過(guò)飲食、飲水、皮膚暴露等方式被人體攝入[16]。研究顯示,主動(dòng)脈是BaP的靶器官之一。BaP可通過(guò)誘導(dǎo)細(xì)胞氧化應(yīng)激、凋亡、細(xì)胞周期紊亂、自噬、炎癥損傷等細(xì)胞損傷事件增加心血管疾病的風(fēng)險(xiǎn)[27-28]。研究表明,F(xiàn)VP具有免疫調(diào)節(jié)、抗炎和改善腸道菌群等多種潛在的生物活性[2]。例如,Ma Sheng等[5]的研究顯示,F(xiàn)VP可以增強(qiáng)小鼠抗氧化能力,減少血清中炎癥因子(IL-1β、IL-6和TNF-α)的含量,緩解腸炎表型。為明確FVP處理后BaP染毒小鼠血管炎癥損傷的變化情況,本研究通過(guò)免疫組化技術(shù)分析了經(jīng)不同劑量FVP灌胃后BaP染毒小鼠模型胸主動(dòng)脈血管組織炎癥損傷相關(guān)分子(IL-6、MCP-1和ICAM-1)的表達(dá)水平(圖1)。結(jié)果顯示,F(xiàn)VP灌胃可顯著改善BaP染毒小鼠血管組織炎癥相關(guān)因子表達(dá)及外周炎癥細(xì)胞的積累,且具有劑量依賴性。血管炎癥損傷過(guò)程中,促炎細(xì)胞的募集是損傷程度的重要過(guò)程,表現(xiàn)為外周促炎細(xì)胞的增多[19-21]。本研究使用多色流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)了FVP灌胃后的BaP染毒小鼠單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞的比例變化,進(jìn)一步分析FVP對(duì)促炎細(xì)胞募集的影響。結(jié)果顯示,F(xiàn)VP灌胃顯著改善了BaP染毒小鼠外周血中單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞比例以及脾臟中巨噬細(xì)胞和中性粒細(xì)胞比例(圖2)。這些結(jié)果共同提示,F(xiàn)VP能夠改善BaP誘導(dǎo)的血管炎癥損傷,并且這一功效可能是通過(guò)其免疫調(diào)節(jié)活性達(dá)成。
然而,多項(xiàng)研究表明FVP能夠通過(guò)激活TLR2-NF-κB抑制激酶α軸促進(jìn)B細(xì)胞或Raw264.7細(xì)胞激活,發(fā)揮免疫激活、抗腫瘤等功能[29]。本實(shí)驗(yàn)機(jī)制探究結(jié)果發(fā)現(xiàn),F(xiàn)VP不能顯著抑制BaP染毒Raw264.7細(xì)胞模型IL-6、TNF-α等促炎基因的表達(dá)(結(jié)果未展示),這提示FVP可能通過(guò)其他途徑抑制促炎細(xì)胞的募集和血管炎癥反應(yīng)。炎癥細(xì)胞因子主要來(lái)源于成熟血細(xì)胞,也是炎癥損傷的關(guān)鍵下游效應(yīng)因子[30-31]。成熟血細(xì)胞由骨髓中的造血干細(xì)胞發(fā)育而來(lái)[32],因此造血系統(tǒng)的變化顯著影響機(jī)體的炎癥損傷。本研究結(jié)果表明BaP染毒小鼠血管炎癥發(fā)生的同時(shí),伴隨著骨髓中造血祖細(xì)胞和粒細(xì)胞巨噬細(xì)胞祖細(xì)胞比例的增加,以及造血干細(xì)胞和普通髓系祖細(xì)胞比例的降低,提示造血系統(tǒng)紊亂。而FVP灌胃顯著改善了造血系統(tǒng)紊亂,使造血祖細(xì)胞的構(gòu)成回歸至健康對(duì)照組水平(圖3),這提示FVP可能通過(guò)逆轉(zhuǎn)造血系統(tǒng)紊亂,延緩血管炎癥損傷的發(fā)生發(fā)展。
此外,在炎癥發(fā)展過(guò)程中,減少ROS的生成是減輕炎性損傷的一種潛在策略[33]。ROS生成是氧化應(yīng)激的主要特征,低濃度的ROS有助于細(xì)胞生理活動(dòng)的調(diào)節(jié),而過(guò)量的ROS可通過(guò)氧化脂質(zhì)分子、激活炎性信號(hào)通路等機(jī)制介導(dǎo)血管重塑性疾病的發(fā)生發(fā)展[34-35]。本研究結(jié)果顯示,F(xiàn)VP預(yù)處理可以顯著抑制BaP染毒Raw264.7細(xì)胞模型中ROS和MDA的產(chǎn)生,增強(qiáng)細(xì)胞SOD的活力(圖4)。這與之前的研究一致,Wu Ming等[36]發(fā)現(xiàn)FVP在體外具有對(duì)羥自由基、超氧化物自由基和1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基的清除作用和還原力;Hu Yuning等[37]的結(jié)果顯示與白色金針菇菌株相比,黃色菌株中經(jīng)80%乙醇沉淀的多糖組分具有最強(qiáng)的抗氧化活性,表明不同品種或FVP的不同組分具有多樣性的生物活性。上述結(jié)果提示具有復(fù)雜結(jié)構(gòu)的天然活性成分可能通過(guò)多靶點(diǎn)、多通路最終使細(xì)胞改變應(yīng)激或病理狀態(tài),回歸穩(wěn)態(tài)。
本研究探討了FVP處理對(duì)BaP染毒小鼠胸腹主動(dòng)脈炎癥標(biāo)志物表達(dá)、外周血和脾臟中促炎細(xì)胞比例變化及骨髓造血細(xì)胞亞群構(gòu)成變化的影響,并在細(xì)胞層面檢查了FVP處理對(duì)BaP共培養(yǎng)后Raw264.7細(xì)胞的炎癥損傷。結(jié)果表明,F(xiàn)VP處理能顯著抑制BaP誘導(dǎo)的小鼠主動(dòng)脈炎癥介質(zhì)(IL-6、MCP-1、ICAM-1)的表達(dá),緩解外周免疫器官中的促炎細(xì)胞(巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞、單核細(xì)胞)的積累。同時(shí),F(xiàn)VP處理顯著改善了BaP引起的骨髓中造血祖細(xì)胞亞群構(gòu)成的紊亂狀態(tài)。以上研究結(jié)果提示,F(xiàn)VP能夠通過(guò)維持造血系統(tǒng)穩(wěn)態(tài),緩解BaP對(duì)機(jī)體的炎癥損傷,細(xì)胞層面上,F(xiàn)VP處理后可抑制BaP誘導(dǎo)Raw264.7細(xì)胞的氧化應(yīng)激水平。綜上所述,F(xiàn)VP可能具有良好的抗炎和心血管保護(hù)作用,這為開(kāi)發(fā)相關(guān)的功能食品或藥品提供了參考。