陳俊凱,于月通,楊 彬,王澤坤,李 靜,陀海欣,徐俊飛,齊 萌
(塔里木大學(xué)動(dòng)物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院/新疆生產(chǎn)建設(shè)兵團(tuán)塔里木動(dòng)物疫病診斷與防控工程實(shí)驗(yàn)室,新疆 阿拉爾 843300)
金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)是一種常見(jiàn)的人獸共患革蘭陽(yáng)性菌, 可引起人和動(dòng)物的胃腸道疾病、創(chuàng)傷和血液感染,造成化膿灶、腹膜炎和菌血癥等病癥[1-2]。 治療由金黃色葡萄球菌引起的感染性疾病通常采用抗菌藥物療法,不科學(xué)、不合理甚至濫用抗菌藥物導(dǎo)致金黃色葡萄球菌的耐藥性不斷增強(qiáng),呈現(xiàn)多重耐藥性。 此外,生物被膜的形成使得細(xì)菌對(duì)抗菌藥物和宿主免疫系統(tǒng)的防御更具有耐受性,有助于菌株在環(huán)境或者宿主中持續(xù)存在[3]。 金黃色葡萄球菌對(duì)不同宿主表現(xiàn)出不同致病性。 金黃色葡萄球菌是奶牛乳腺炎的主要致病菌之一。 由金黃色葡萄球菌引起的奶牛乳腺感染持續(xù)時(shí)間長(zhǎng),不僅導(dǎo)致奶牛淘汰率上升,還可能對(duì)牛奶品質(zhì)產(chǎn)生負(fù)面影響,引發(fā)食物中毒, 從而對(duì)食品衛(wèi)生安全和人類健康構(gòu)成潛在威脅[4]。 豬感染金黃色葡萄球菌后,常表現(xiàn)出流涕、氣喘、皮膚發(fā)炎等癥狀,其在豬和人類之間傳播所造成的公共衛(wèi)生安全問(wèn)題已引起人們的關(guān)注[5]。 目前,我國(guó)豬乳源金黃色葡萄球菌的相關(guān)報(bào)道較少。 本研究對(duì)從新疆維吾爾自治區(qū)阿拉爾市某規(guī)模化養(yǎng)殖場(chǎng)分離到的豬乳源金黃色葡萄球菌進(jìn)行生物被膜形成能力檢測(cè),并對(duì)其致病性及耐藥性進(jìn)行分析, 以期為豬乳源金黃色葡萄球菌的病原生物學(xué)研究提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。
1.1.1 樣本來(lái)源
2022 年10 月, 在新疆維吾爾自治區(qū)阿拉爾市某規(guī)?;B(yǎng)豬場(chǎng)選取外觀健康的哺乳母豬,使用碘酊和75%酒精對(duì)其乳房進(jìn)行消毒后, 用一次性塑料手套擠出乳液,收集至50 mL 的無(wú)菌離心管內(nèi)。 共收集6 份新鮮豬乳樣本,標(biāo)記信息后置4 ℃冷藏箱,送至實(shí)驗(yàn)室,4 ℃冰箱保存。
金黃色葡萄球菌標(biāo)準(zhǔn)菌株ATCC 25923 和具有強(qiáng)生物被膜形成能力的表皮葡萄球菌ATCC 35984,由新疆生產(chǎn)建設(shè)兵團(tuán)塔里木動(dòng)物疫病診斷與防控工程實(shí)驗(yàn)室保存。
1.1.2 主要試劑及儀器
胰蛋白胨大豆液體 (TSB) 培養(yǎng)基、Mueller-Hinton(MH)肉湯培養(yǎng)基、甘露醇高鹽瓊脂(MSA)培養(yǎng)基,奧博星生物技術(shù)(北京)有限責(zé)任公司產(chǎn)品;PCR 擴(kuò)增引物、DL 2 000 DNA Marker、2×Easy Taq PCR Super Mix(+dye)、細(xì)菌基因組DNA 提取試劑盒,全式金生物技術(shù)(北京)有限公司產(chǎn)品;藥敏片均購(gòu)自溫州市泰康生物科技有限公司; 革蘭染色試劑,實(shí)驗(yàn)室自行配制;PCR 儀、凝膠成像系統(tǒng)、電泳儀購(gòu)自Bio-Rad 公司。
1.2.1 乳樣處理
取2 mL 乳樣在12 000 r/min 轉(zhuǎn)速下離心2 min后,吸取10 μL 下層乳液,加入5 mL TSB 培養(yǎng)基中,于37 ℃恒溫振蕩搖床中過(guò)夜培養(yǎng)增菌。
1.2.2 細(xì)菌分離及形態(tài)學(xué)鑒定
將富集好的菌液劃線接種到MSA 培養(yǎng)基上,于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h 后, 觀察菌落形態(tài),挑取單一菌落劃線接種于MSA 培養(yǎng)基上進(jìn)行純化培養(yǎng), 純化完成后挑選形態(tài)良好的單菌落進(jìn)行革蘭染色,用普通光學(xué)顯微鏡觀察染色特征,初步鑒定細(xì)菌種類。
1.2.3 細(xì)菌生化鑒定
經(jīng)形態(tài)學(xué)觀察后,參考吳自豪等[6]報(bào)道的方法對(duì)疑似金黃色葡萄球菌的菌株進(jìn)行觸酶試驗(yàn)、凝固酶試驗(yàn)和甘露醇發(fā)酵試驗(yàn)。以金黃色葡萄球菌ATCC 25923 為陽(yáng)性對(duì)照,滅菌雙蒸水為空白對(duì)照。
1.2.4 細(xì)菌基因組DNA 提取和16S rDNA 序列PCR 擴(kuò)增
對(duì)經(jīng)表型鑒定初步判定為金黃色葡萄球菌的分離菌株,按照細(xì)菌基因組DNA 提取試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行基因組DNA 提取。 參照劉肖利等[7]報(bào)道的引物序列, 設(shè)計(jì)合成細(xì)菌16S rDNA 通用引物,以分離菌株的基因組DNA 為模板進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,引物由蘇州金唯智生物科技有限公司合成。 PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系為25 μL:2×EasyTaq PCR Super Mix(+dye)12.5 μL, 上、 下游引物各0.5 μL,ddH2O 10.5 μL,DNA 模板1 μL,陰性對(duì)照為ddH2O。 PCR擴(kuò)增程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min,34 個(gè)循環(huán);72 ℃最后延伸10 min。 將陽(yáng)性產(chǎn)物送至蘇州金維智生物科技有限公司進(jìn)行測(cè)序, 對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行BLAST (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)比對(duì)分析后鑒定分離細(xì)菌的種類。
1.2.5 金黃色葡萄球菌生物被膜形成能力檢測(cè)
分別以表皮葡萄球菌ATCC 35984 和雙蒸水為陽(yáng)性對(duì)照和空白對(duì)照,參考Ren 等[8]報(bào)道的方法對(duì)金黃色葡萄球菌進(jìn)行生物被膜形成能力檢測(cè)與判定。 生物被膜形成能力分為4 個(gè)等級(jí):強(qiáng)(+++;OD570nm值>0.39)、中等(++;0.39>OD570nm值>0.26)、弱(+;0.26>OD570nm值>0.13)和陰性(-;OD570nm值<0.13)。
1.2.6 金黃色葡萄球菌藥物敏感性試驗(yàn)
采用K-B 紙片擴(kuò)散法檢測(cè)10 類12 種抗菌藥物對(duì)分離菌株的敏感性, 包括β-內(nèi)酰胺類:青霉素、頭孢西?。宦让顾仡悾郝让顾?;大環(huán)內(nèi)酯類:紅霉素、替米考星;利福霉素類:利福平;四環(huán)素類:四環(huán)素;氟喹諾酮類:環(huán)丙沙星;林可酰胺類:克林霉素;酰胺醇類:氟苯尼考;氨基糖苷類:慶大霉素;磺胺類:磺胺甲噁唑。 以金黃色葡萄球菌標(biāo)準(zhǔn)菌株ATCC 25923 為質(zhì)控菌株。根據(jù)美國(guó)臨床和實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)協(xié)會(huì)指南(CLSI,2021)發(fā)布的相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行藥物敏感性試驗(yàn)操作和結(jié)果判定。
1.2.7 金黃色葡萄球菌耐藥基因檢測(cè)
參照文獻(xiàn)[9-10]報(bào)道的引物序列,設(shè)計(jì)5 種耐藥基因引物,采用PCR 法檢測(cè)金黃色葡萄球菌分離株的耐藥基因攜帶情況,引物由蘇州金唯智生物科技有限公司合成。 檢測(cè)的耐藥基因包括慶大霉素耐藥基因ant(4)、紅霉素耐藥基因ermA、頭孢西丁耐藥基因mecA、 利奈唑胺耐藥基因optrA和克林霉素耐藥基因ermS。耐藥基因PCR 擴(kuò)增反應(yīng)體系同“1.2.4”項(xiàng)下;PCR 擴(kuò)增程序均為:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,50 ℃退火30 s,72 ℃延伸45 s,30 個(gè)循環(huán);72 ℃最后延伸10 min。 PCR 擴(kuò)增結(jié)束后, 采用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)擴(kuò)增產(chǎn)物,使用凝膠成像儀拍照。
1.2.8 金黃色葡萄球菌毒力基因檢測(cè)
參照文獻(xiàn)[11-14]報(bào)道的引物序列,設(shè)計(jì)20種毒力基因引物,采用PCR 法檢測(cè)金黃色葡萄球菌分離株的毒力基因攜帶情況, 引物由蘇州金唯智生物科技有限公司合成。 毒力基因包括編碼葡萄 球 菌 腸 毒 素 的 基 因sea、seb、sec、sed、see、seg、seh、sei 和sej,毒性休克綜合征毒素基因tsst-1,剝脫毒素基因eta 和etb,Panton-Valentine 殺白細(xì)胞素基因lukF,溶血素基因hla 和hlb,纖連蛋白結(jié)合蛋白基因fnbA 和fnbB, 凝聚因子基因clfA 和clfB, 以及膠原蛋白黏附素基因cna。 毒力基因PCR 擴(kuò)增反應(yīng)體系及程序同“1.2.8”項(xiàng)下。 PCR 擴(kuò)增結(jié)束后, 采用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)擴(kuò)增產(chǎn)物,使用凝膠成像儀拍照。
在6 份豬乳樣本中, 有2 份樣本經(jīng)細(xì)菌分離培養(yǎng)后在MSA 培養(yǎng)基中出現(xiàn)圓形、 大小一致、淺黃色或者米黃色的菌落(見(jiàn)圖1);分別挑取2 份樣本獲得的單個(gè)菌落進(jìn)行革蘭染色鏡檢, 鏡下觀察到了革蘭陽(yáng)性球菌,呈單個(gè)、短鏈或葡萄串狀排列(見(jiàn)圖2)。 生化試驗(yàn)結(jié)果顯示,2 株分離菌的觸酶試驗(yàn)、凝固酶試驗(yàn)和甘露醇發(fā)酵試驗(yàn)均為陽(yáng)性。結(jié)合形態(tài)學(xué)和生化鑒定結(jié)果,2 株分離菌初步鑒定為金黃色葡萄球菌。
圖1 分離菌株在MSA 培養(yǎng)基上的菌落形態(tài)
圖2 分離菌株的革蘭染色鏡檢結(jié)果(1 000×)
基于細(xì)菌16S rDNA 序列,對(duì)2 株疑似金黃色葡萄球菌基因組DNA 樣本進(jìn)行PCR 擴(kuò)增。 經(jīng)序列比對(duì)分析發(fā)現(xiàn),2 株分離菌的16S rDNA 序列均與埃及人源金黃色葡萄球菌 (GenBank 登錄號(hào):OP809639) 分離株的16S rDNA 序列同源性為100%。 結(jié)合形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果、 生化鑒定結(jié)果和16S rDNA 序列分析結(jié)果,將分離到的2 株細(xì)菌判定為金黃色葡萄球菌, 分離率為33.33%(2/6),分別命名為No.1 菌株和No.2 菌株(見(jiàn)圖3)。
圖3 分離菌株的16S rDNA 序列PCR 擴(kuò)增結(jié)果
藥物敏感性試驗(yàn)結(jié)果顯示,在12 種抗菌藥物中, 分離到的2 株金黃色葡萄球菌均對(duì)利福平敏感,均對(duì)青霉素、頭孢西丁、四環(huán)素、紅霉素、替米考星、克林霉素和磺胺甲噁唑耐藥,對(duì)慶大霉素、氟苯尼考、氯霉素和環(huán)丙沙星的耐藥率為50%(見(jiàn)表1)。 2 株分離菌均對(duì)3 類以上抗菌藥物表現(xiàn)出耐藥性,因此,為多重耐藥菌。
表1 2 株豬乳源金黃色葡萄球菌分離株的藥物敏感性試驗(yàn)結(jié)果
根據(jù)結(jié)晶紫半定量測(cè)定結(jié)果,2 株分離菌的OD570nm值>0.800,由“1.2.5”項(xiàng)下生物被膜形成能力的判定標(biāo)準(zhǔn)可知,2 株金黃色葡萄球菌均有形成生物被膜的能力。
在檢測(cè)的5 種耐藥基因中,2 株金黃色葡萄球菌分離株均攜帶ant(4)基因和mecA 基因(見(jiàn)圖4),未檢測(cè)出ermA、ermS、optrA 基因。
圖4 豬乳源金黃色葡萄球菌部分耐藥基因的PCR 擴(kuò)增結(jié)果
在檢測(cè)的20 種毒力基因中,2 株金黃色葡萄球菌分離株均攜帶seg、sei、hlb、fnbA、clfA 基因;No.1菌株還攜帶hla 基因, 而No.2 菌株不攜帶hla 基因(見(jiàn)圖5);2 株菌均未檢測(cè)出sea、seb、sec、sed、see、seh、sej、tsst-1、eta、etb、lukF、fnbB、clfB、cna 基因。
圖5 豬乳源金黃色葡萄球菌部分毒力基因的PCR 擴(kuò)增結(jié)果
金黃色葡萄球菌主要引起豬的乳腺炎、 關(guān)節(jié)炎和創(chuàng)口感染, 近年來(lái)有關(guān)豬源金黃色葡萄球菌分離鑒定和耐藥情況的報(bào)道不斷增多。 在印度,Zehra 等[15]分離得到27 株豬肉源金黃色葡萄球菌,分離率為20.61%(27/131),對(duì)8 種藥物呈現(xiàn)耐藥,表現(xiàn)出多重耐藥性。 在我國(guó),蔣松宏等[16]自重慶市某養(yǎng)殖場(chǎng)的106 份豬鼻拭子樣本中分離得到7 株耐大觀霉素金黃色葡萄球菌,分離率為6.60%(7/106),對(duì)4 種藥物呈現(xiàn)耐藥,攜帶7 種耐藥基因,表現(xiàn)出多重耐藥性。 Zhang 等[17]自廈門市分離得到130 株豬肉源金黃色葡萄球菌, 發(fā)現(xiàn)123 株攜帶1 個(gè)或多個(gè)葡萄球菌腸毒素基因,78 株攜帶毒力基因seb, 未發(fā)現(xiàn)毒力基因sed、sej、seo、sep、ser 和seu。 在波蘭,Banaszkiewicz 等[18]分離得到121 株野豬源金黃色葡萄球菌,發(fā)現(xiàn)16 個(gè)分離株攜帶1 個(gè)或多個(gè)葡萄球菌腸毒素基因, 分別有2株、2 株、4 株和11 株攜帶毒力基因seb、sec、see和seh。 在希臘,Pexara 等[19]在屠宰豬扁桃體中分離得到26 株金黃色葡萄球菌, 發(fā)現(xiàn)21 株攜帶葡萄球菌腸毒素基因sea、seb、seg、seh、sei、sej 和中毒性休克綜合征毒素-1 基因(tst)。 該試驗(yàn)所獲2株豬乳源金黃色葡萄球菌均攜帶seg、sei、hlb、fnbA 與clfA 基因,其中1 株還攜帶hla 基因。 上述研究結(jié)果表明, 不同國(guó)家和地區(qū)以及豬源不同部位/組織中都能分離到的金黃色葡萄球菌,但菌株攜帶的毒力基因存在較大差異, 這與宿主生存環(huán)境、用藥情況和地理分布等因素密切相關(guān)。
研究發(fā)現(xiàn), 金黃色葡萄球菌多重耐藥情況越來(lái)越嚴(yán)重。 Xu 等[20]自湖北省分離得到230 株豬源金黃色葡萄球菌, 對(duì)其中127 株分離菌進(jìn)行藥敏試驗(yàn),發(fā)現(xiàn)對(duì)復(fù)方新諾明、四環(huán)素、紅霉素、克林霉素、氯霉素、環(huán)丙沙星、慶大霉素和苯唑西林的耐藥率分別為100.00%(127/127)、98.43%(125/127)、91.34%(116/127)、91.34%(116/127)、74.80%(95/127)、62.99%(80/127)、34.65%(44/127)和16.54%(21/127)。Zhang 等[21]自湖南省分離得到163 株豬源金黃色葡萄球菌,發(fā)現(xiàn)對(duì)鏈霉素、慶大霉素、紅霉素、青霉素、克林霉素、克林霉素、四環(huán)素、氨芐西林、頭孢噻肟、環(huán)丙沙星和復(fù)方新諾明耐藥率均大于63.19%(103/163);163 株金黃色葡萄球菌均攜帶耐藥基因gyrA、aac(6)/aph(2)、tetk;還攜帶耐藥基因blaZ(96.93%,158/16)、tetM(93.87%,153/163)、LinE(88.96%,145/163)、ermA(82.82%,135/168)、sull (72.39%,118/163)、MsrA (17.18%,28/163)和mecA(4.29%,7/163);Zheng 等[22]自我國(guó)東部地區(qū)分離得到63 株豬源耐甲氧西林金黃色葡萄球菌,對(duì)克林霉素、氯霉素、紅霉素、慶大霉素以及利奈唑胺的耐藥率分別為95.24%(60/63)、76.19% (48/63)、49.21% (31/63)、3.17% (2/63) 和1.59%(1/63)。
本研究中2 株豬乳源金黃色葡萄球菌對(duì)青霉素、頭孢西丁、四環(huán)素、紅霉素、替米考星、克林霉素以及磺胺甲噁唑耐藥率均為100%,均攜帶耐藥基因blaZ、ant(4)和mecA,具有多重耐藥性,與上述報(bào)道結(jié)果相一致,提示在臨床生產(chǎn)中,在對(duì)患病動(dòng)物進(jìn)行藥物治療時(shí),應(yīng)合理用藥,避免致病菌產(chǎn)生更多的耐藥性。
阿拉爾市某規(guī)?;B(yǎng)殖場(chǎng)豬乳源金黃色葡萄球菌生物被膜形成能力強(qiáng), 攜帶多種毒力基因和耐藥基因,表現(xiàn)為多重耐藥性。