紫紅笛鯛幼魚環(huán)境耐受能力研究

摘 要：為研究紫紅笛鯛（Lutjanus argentimaculatus）對水溫、鹽度、溶解氧、氨氮和亞硝酸鹽等環(huán)境因子的耐受能力，選取平均體質(zhì)量（9.7±1.5）g、體長（7.3±0.3）cm的紫紅笛鯛幼魚，采用漸變式方法探索紫紅笛鯛對溫度、鹽度及低溶解氧的耐受能力，并設(shè)置不同濃度梯度，以探究紫紅笛鯛對氨氮及亞硝酸鹽的半致死濃度。結(jié)果顯示，紫紅笛鯛適宜的水溫范圍為16.0～35.0 ℃，臨界下限水溫為13.5 ℃、臨界上限水溫為 40.6 ℃；當鹽度在12.00～67.68時，紫紅笛鯛活動正常，其極限耐受鹽度為73.13±0.18；紫紅笛鯛幼魚的窒息臨界點為（1.88±0.08）mg/L，DO 50為（0.60±0.03）mg/L，DO 100為（0.34±0.03）mg/L；在氨氮脅迫和亞硝酸鹽脅迫下，紫紅笛鯛幼魚24、48、72、96 h的半致死濃度分別為170.30、126.62、95.05、64.90 mg/L和289.92、214.22、132.02、77.78 mg/L，氨氮安全濃度為6.49 mg/L，亞硝酸鹽安全濃度為7.78 mg/L。

關(guān)鍵詞：紫紅笛鯛；環(huán)境耐受；氨氮脅迫；亞硝酸鹽脅迫；溫度；溶解氧；鹽度

紫紅笛鯛（Lutjanus argentimaculatus）隸屬于鱸形目（Perciformes）、笛鯛科（Lutjanidae）、笛鯛屬（Lutjanus），俗稱紅友、紅油等，分布于印度洋、太平洋中部和西部 ^［1］，在我國主要分布于臺灣省及南部沿海城市。紫紅笛鯛口味極佳，且具有生長速度快、養(yǎng)殖周期短、不易生病等優(yōu)點，是華南地區(qū)重要的養(yǎng)殖品種 ^［2］。

魚類的養(yǎng)殖環(huán)境對魚的生存、生長發(fā)育起著至關(guān)重要的作用。其中水體溫度、鹽度、溶解氧、亞硝酸鹽及氨氮等環(huán)境因子直接影響著魚類的生長活動 ^［3-5］。當水體中亞硝酸鹽濃度過高時，可影響魚類血液運輸氧的功能，嚴重時可致魚死亡 ^［6］。而溫度、鹽度、溶解氧則直接影響著魚類的生長存活。目前，已有許多關(guān)于魚類環(huán)境影響因子的研究報道，如龍膽石斑魚（Epinephelus lanceolatus） ^［7］對水溫、鹽度和溶解氧的耐受范圍較廣，適宜水溫為20.0～35.0 ℃、適宜鹽度為11.0～40.0；氨氮對大黃魚（Larimichthys crocea） ^［8］的安全濃度為1.25 mg/L，亞硝態(tài)鹽對大黃魚的安全濃度為5.01 mg/L；澳洲鰻鱺（Anguilla australis） ^［9］對亞硝酸鹽的耐受能力與其體質(zhì)量呈正相關(guān)，其適溫范圍為14～29 ℃；大口黑鱸（Micropterus salmoides） ^［10］在受氨氮脅迫96 h時，其半致死濃度（LC 50）為63.34 mg/L。但有關(guān)環(huán)境因子對紫紅笛鯛影響的研究尚未見報道。

為研究紫紅笛鯛對溫度、鹽度、低氧、氨氮、亞硝酸鹽等常見環(huán)境因子的耐受能力，探究其適宜的耐受范圍，本試驗采用漸變式方法探索紫紅笛鯛對溫度、鹽度及低溶解氧的耐受能力，并設(shè)置不同濃度梯度進行了氨氮和亞硝酸鹽脅迫試驗，以期為紫紅笛鯛的適宜養(yǎng)殖環(huán)境提供理論依據(jù)。

1 材料和方法

1.1 試驗材料

試驗魚為中國水產(chǎn)科學研究院南海水產(chǎn)研究所深圳試驗基地抗風浪網(wǎng)箱養(yǎng)殖的紫紅笛鯛幼魚，由深圳市龍岐莊實業(yè)發(fā)展有限公司提供。于2021年8月5日，將試驗魚轉(zhuǎn)至室內(nèi)循環(huán)水精養(yǎng)系統(tǒng)中馴養(yǎng)1周，待其狀態(tài)穩(wěn)定后，挑選大小一致、活力好且體表無傷的個體進行試驗。試驗用魚平均體質(zhì)量（9.7±1.5） g，體長（7.3±0.3） cm。

1.2 試驗方法

本試驗中，除特別標明外，水體各指標如下：水溫（30.8±1.0） ℃，鹽度32.5±1.0，pH為8.0±0.1，溶解氧（6.0±0.5） mg/L。試驗前充分曝氣12 h，試驗過程中保持正常充氣。所有試驗均在15 cm×15 cm×40 cm（長×寬×高）的玻璃缸中進行。每個試驗（梯度）均設(shè)置3個平行組和1個對照組，每缸投放試驗魚10尾。試驗期間不 投飼。

1.2.1 溫度脅迫

溫度脅迫試驗設(shè)3個平行組（A組、B組和C組），使用加熱棒或冰水調(diào)溫，每次升高或降低 1.0 "℃，時長間隔為0.5 h。當試驗魚出現(xiàn)側(cè)翻時，恒定水溫1 h，若恒溫期內(nèi)試驗魚恢復(fù)正常狀態(tài)，則繼續(xù)升高或降低水溫，若恒溫期內(nèi)試驗魚不能恢復(fù)，即為臨界水溫值；之后每次升高或降低0.5 ℃，恒定0.5 h后再次進行調(diào)溫。將試驗魚活動出現(xiàn)異常時的水溫作為適宜溫度臨界值，當50%試驗魚出現(xiàn)死亡時的水溫作為溫度致死臨界值 ^［11］。試驗魚活動異常表現(xiàn)為過度活躍、活力減弱，甚至在底部不動 ^［7］。對照組水溫保持在（ 31.0±0.5）℃。試驗期間不換水。

1.2.2 鹽度脅迫

鹽度脅迫試驗設(shè)3個平行組（A組、B組和C組），使用海鹽或淡水調(diào)節(jié)鹽度，每0.5 h升高或降低鹽度1.0。當試驗魚出現(xiàn)側(cè)翻時，恒定鹽度 1 h，若恒定期內(nèi)試驗魚恢復(fù)正常，將繼續(xù)升高或降低鹽度，若恒定期內(nèi)試驗魚不能恢復(fù)正常，此時的鹽度即為臨界鹽度值；之后每0.5 h升高或降低鹽度1.0。試驗魚活動出現(xiàn)異常時的鹽度為適宜鹽度臨界值。對照組水體鹽度穩(wěn)定在32.5± 1.0。試驗期間不換水。

1.2.3 低氧脅迫

低氧脅迫試驗組使用透明膠帶和保鮮膜將玻璃缸進行封口處理，以隔絕外界空氣；對照組則正常充氧。試驗開始時測量初始溶解氧（DO0）。當觀察到試驗魚活動開始出現(xiàn)異常時，立即檢測溶解氧，此時的水體溶解氧即為窒息臨界點；50%的試驗魚側(cè)翻或死亡時的溶解氧定為窒息點（DO 50）；全部試驗魚側(cè)翻或死亡時的溶解氧含量定為極限低氧耐受值（DO 100）。試驗期間不換水。

1.2.4 氨氮脅迫和亞硝酸鹽脅迫

根據(jù)預(yù)試驗結(jié)果，氨氮脅迫試驗設(shè)置50、70、90、120和150 mg/L共5個濃度梯度，亞硝酸鹽脅迫試驗設(shè)置50、100、150、200、250 mg/L共5個濃度梯度。對照組使用正常海水，氨氮、亞硝酸鹽基本為0。試驗開始后，分別記錄各試驗組24、48、72、96 h時幼魚的死亡數(shù)量。為防止試驗魚正常生長活動造成水體污染而對試驗結(jié)果產(chǎn)生影響，每隔24 h更換現(xiàn)配的試驗用水。

1.3 數(shù)據(jù)分析

試驗數(shù)據(jù)經(jīng)初步整理后，使用EXCEL 2016和SPSS 26.0軟件進行處理，并進行單因素方差分析（one-way ANOVA），設(shè)P＜0.05為差異顯著。對氨氮和亞硝酸鹽脅迫試驗結(jié)果進行皮爾遜擬合優(yōu)度檢驗和平行檢驗，并進行Probit回歸分析。

安全質(zhì)量濃度（SC） ^［12］計算公式為：

SC=0.1×LC 50（1）

式（1）中，LC 50為96 h的半致死質(zhì)量濃度（mg/L）。

2 結(jié)果

2.1 溫度脅迫

高溫脅迫：當水溫升至36.0 ℃時，紫紅笛鯛幼魚活動變得異常，并開始出現(xiàn)死亡；當水溫升高至39.0～40.0 ℃時，試驗魚在玻璃缸內(nèi)活動加劇，上下竄動；當水溫在40.6 ℃時，試驗魚活動猛烈，并出現(xiàn)死魚；水溫繼續(xù)升至40.9 ℃時，試驗魚的活動能力逐漸減弱，且不斷出現(xiàn)死魚，直至全部死亡（見表1）。

低溫脅迫：當水溫下降至15.0 ℃時，試驗魚體色變黑，活力大大減弱，漸漸沉于玻璃缸底部，只有輕微游動跡象；繼續(xù)降低水溫至14.5 ℃時，試驗魚開始靜止不動；當溫度降低為14.0 ℃時，試驗魚開始出現(xiàn)側(cè)翻，但無死亡；當溫度繼續(xù)降至13.5 ℃時，試驗魚活動突然變得激烈，上下竄動，30 min后，試驗魚開始沉于缸底，并且有部分魚側(cè)翻；繼續(xù)降低水溫至12.5 ℃時，試驗魚開始出現(xiàn)死亡；當溫度降至11.0 ℃時，試驗魚全部死亡（見表1）。

試驗結(jié)果顯示，紫紅笛鯛適宜水溫為16.0～35.0 ℃，臨界溫度為13.5 ℃和40.6 ℃。對照組魚在試驗過程中均活動正常。

2.2 鹽度脅迫

紫紅笛鯛對鹽度的耐受性試驗結(jié)果見表2。

當鹽度為12.00～67.68時，紫紅笛鯛幼魚活動正常。逐漸升高水體鹽度至73.13±0.18時，試驗魚的體色開始變黑；繼續(xù)升高鹽度至74.20±0.07時，試驗魚活動開始減緩，維持此鹽度10 min后，試驗魚開始出現(xiàn)亂竄現(xiàn)象，20 min后半數(shù)魚死亡，43 min后全部死亡。在低鹽度脅迫試驗中，逐漸降低水體鹽度至12.00時，紫紅笛鯛幼魚仍活動正常，在不斷降低鹽度的過程中，發(fā)現(xiàn)試驗魚仍可存活，且活力并無減退。隨后，直接使用淡水（本試驗最低鹽度0.16±0.08）進行脅迫，試驗魚活動只輕微有所減弱。試驗結(jié)果表明，紫紅笛鯛幼魚對淡水環(huán)境具有極強的適應(yīng)能力；對高鹽度海水同樣具有較強的耐受能力。

2.3 低氧脅迫

紫紅笛鯛對低氧的耐受試驗結(jié)果見表3。當水體溶解氧降低至（1.88±0.08）mg/L時，試驗魚開始出現(xiàn)異常，此時的溶解氧含量即為窒息臨界點；當水體溶解氧繼續(xù)降低，試驗魚出現(xiàn)半數(shù)死亡，此時的溶氧量為窒息點，即DO 50為（0.60± 0.03）mg/L；當水體溶解氧降低至（0.34± 0.03）mg/L時，試驗魚全部死亡，即DO 100為（ 0.34± 0.03）mg/L。對照組魚在試驗過程中均活動 正常。

2.4 氨氮脅迫

不同濃度氨氮脅迫下紫紅笛鯛的死亡率結(jié)果見圖1。當氨氮質(zhì)量濃度在150 mg/L以下時，同一濃度下，隨著氨氮暴露時間的增加，紫紅笛鯛的死亡率也逐漸升高；同一暴露時長下，隨著氨氮濃度的增高，紫紅笛鯛的死亡率也逐漸升高；反之 亦然。

使用SPSS 26.0軟件進行皮爾遜擬合優(yōu)度檢驗，顯著性P=0.861gt;0.05，說明試驗數(shù)據(jù)擬合度較好。平行檢驗顯著性P=0.487gt;0.05，說明不同氨氮暴露時長下的回歸方程具有相同的斜率。

對試驗數(shù)據(jù)使用SPSS 26.0軟件進行Probit回歸分析，結(jié)果見表4。得出不同氨氮暴露時長下的LC 50，并整理得出毒力回歸方程（見表5）。

使用SPSS 26.0軟件進行one-way ANOVA分析（見圖2）。在96 h內(nèi)，氨氮暴露時長每增加24 h，其半致死質(zhì)量濃度均有顯著性降低（P＜0.05）。

2.5 亞硝酸鹽脅迫

不同濃度亞硝酸鹽脅迫下紫紅笛鯛的死亡率結(jié)果見圖3。當亞硝酸鹽濃度在250 mg/L以下時，同一濃度下，隨著亞硝酸鹽暴露時間的增加，紫紅笛鯛的死亡率也逐漸升高；同一暴露時長下，亞硝酸鹽濃度越高，紫紅笛鯛死亡率也隨之升高，反之亦然。

使用SPSS 26.0進行皮爾遜擬合優(yōu)度檢驗，顯著性P=0.977gt;0.05，說明試驗數(shù)據(jù)擬合度較好。平行檢驗顯著性P=0.694gt;0.05，說明不同亞硝酸鹽暴露時長下的回歸方程具有相同的 斜率。

使用SPSS 26.0軟件對試驗數(shù)據(jù)進行Probit回歸分析（見表6），得出不同亞硝酸鹽暴露時長下的LC 50，并整理得出毒力回歸方程（見表7）。

使用SPSS 26.0進行one-way ANOVA分析（見圖4）。結(jié)果顯示，在96 h內(nèi)，亞硝酸鹽暴露時長每增加24 h，其半致死質(zhì)量濃度均有顯著性降低（P＜0.05）。

3 討論

3.1 溫度對紫紅笛鯛的影響

溫度與抗氧化能力及代謝功能密切相關(guān)，魚類對溫度比較敏感，若晝夜溫差過大，容易引起魚類應(yīng)激而導(dǎo)致死亡，低溫可降低機體能量代謝酶活性，降低代謝速率，溫度的變化可影響魚體的免疫功能 ^［13］。本試驗結(jié)果顯示，紫紅笛鯛幼魚的適宜水溫為（16.0～35.0） ℃，臨界溫度為13.5 ℃和40.6 ℃。相較于光唇裂腹魚（Schizothorax lissolabiatus） ^［14］和拉薩裂腹魚（Schizothorax waltoni） ^［15］，紫紅笛鯛的臨界高溫較高，與珍珠龍膽石斑（Epinephelus fuscoguttatus♀×E. lanceolatus♂） ^［7］相似，而略高于白氏文昌魚（Branchiostoma belcheri） ^［16］和花鱸（Lateolabrax maculatus） ^［17］。

3.2 鹽度對紫紅笛鯛的影響

水體鹽度的變化會引起滲透壓的改變，魚類通過調(diào)節(jié)自身的滲透壓及改變抗氧化酶活性來適應(yīng)外界的鹽度變化 ^［18］。紫紅笛鯛在鹽度為12.00～67.68的范圍內(nèi)可正?；顒樱錁O限耐受鹽度為72.86。本試驗中，將紫紅笛鯛置于淡水（鹽度為0.16±0.08）中24 h仍可存活。目前，已有多種魚類耐鹽能力的研究報道，如黃姑魚（Nibea albiflora） ^［19］對鹽度的耐受范圍為2～45；大黃魚幼魚 ^［20］在鹽度低于2時，其死亡率明顯降低；銀鯧仔魚（Pampus argenteus） ^［21］對外界環(huán)境鹽度的變化較為敏感，其最適鹽度耐受范圍為15.54～ 24.90。相較之下，紫紅笛鯛幼魚對鹽度的適應(yīng)范圍非常廣，尤其對低鹽具有極強的耐受能力，可作為潛在的淡水馴養(yǎng)養(yǎng)殖品種。

3.2 低氧脅迫對紫紅笛鯛的影響

水體溶解氧是影響魚類的生存生長的關(guān)鍵因素之一。不同魚類對低溶解氧的耐受能力也不一樣。本試驗中，當水體溶解氧逐漸降低時，紫紅笛鯛先是活動加劇、呼吸加快以獲得更多的氧氣，隨后鰓部扇動，呼吸開始減弱，并逐漸沉至水底。研究表明，魚類對低氧的耐受能力與魚的體質(zhì)量相關(guān)，其體質(zhì)量越大，低氧耐受能力越強 ^［22］。紫紅笛鯛的窒息臨界點為（1.88±0.08）mg/L，DO 50為（0.60±0.03）mg/L，DO 100為（0.34±0.03）mg/L。同為幼魚，珍珠龍膽石斑 ［體質(zhì)量（121.4～ 277.5）g］的窒息臨界點為0.70 mg/L ^［7］，棕點石斑魚（Epinephelus fuscoguttatus）［體質(zhì)量（33.06±4.66）g］和金虎石斑魚（Epinephelus fuscoguttatus♀×E. lanceolatus♂［體質(zhì)量（34.26±3.85）g］的窒息點分別為0.22 mg/L和0.24 mg/L ^［23］，相比之下，紫紅笛鯛對低溶解氧的耐受能力較差。因此，在紫紅笛鯛養(yǎng)殖過程中要保證水體溶解氧高于（ 1.88±0.08） mg/L。

3.3 氨氮、亞硝酸鹽脅迫對紫紅笛鯛的影響

養(yǎng)殖水體中的氨氮主要來自工業(yè)廢水和生活污水、養(yǎng)殖水產(chǎn)動物蛋白質(zhì)代謝產(chǎn)物的排泄和糞便殘餌這些含氮有機物的氨化作用 ^［24-25］。養(yǎng)殖水體中的亞硝酸鹽主要來自于投喂的飼料、魚類排泄物及分泌物、水生生物的尸體及養(yǎng)殖中使用的肥料等 ^［26］。氨氮對魚類具有極強的毒性，可破壞魚鰓及體表黏膜，影響魚類的輸氧系統(tǒng)，對其神經(jīng)系統(tǒng)也有一定的影響；亞硝酸鹽也是通過影響魚類的輸氧系統(tǒng)，氧化血紅蛋白，降低其運輸氧的能力，最終使魚缺氧甚至導(dǎo)致死亡 ^［27］。

在氨氮和亞硝酸鹽脅迫下，在一定范圍內(nèi)，同一濃度下，暴露時間越長，紫紅笛鯛死亡率也越高；而同一暴露時長下，氨氮或亞硝酸鹽的濃度越高，紫紅笛鯛死亡率也越高。本試驗結(jié)果，氨氮和亞硝酸鹽的安全濃度分別為6.49和 7.78 mg/L。

呂景才等 ^［28］研究發(fā)現(xiàn)，鯉（Cyprinus carpio）、鰱（Hypophthalmichthys molitrix）、鳙（Aristichthys nobilis）、草魚（Ctenopharyngodon idella）的亞硝酸鹽安全濃度分別為3.09、2.04、1.99、0.35 mg/L；陳思 ^［29］研究發(fā)現(xiàn)，斜帶石斑魚（Epinephelus "coioides）對氨氮的安全濃度為3.34 mg/L，亞硝酸鹽的安全濃度為9.04 mg/L。與上述結(jié)果相比，紫紅笛鯛對亞硝酸鹽的安全濃度和對氨氮的安全濃度都較高，說明紫紅笛鯛具有較強的環(huán)境耐受 能力。

4 結(jié)論

紫紅笛鯛屬于熱帶和亞熱帶近海底層魚類，其適應(yīng)的溫度范圍較廣，但其幼魚對低溫（臨界低溫為13 ℃）較為敏感，在繁殖季節(jié)應(yīng)注意對水體采取保溫或加溫等措施。本試驗研究發(fā)現(xiàn)，紫紅笛鯛可以在鹽度低于67.68的水體條件下正?；顒?，且對低鹽環(huán)境具有很強的耐受力，說明紫紅笛鯛適宜生長的鹽度范圍廣，在常見的海水、咸淡水區(qū)域均可進行養(yǎng)殖，這一特點對紫紅笛鯛的養(yǎng)殖推廣具有非常大的優(yōu)勢，且目前已有養(yǎng)殖戶對紫紅笛鯛進行淡水馴化養(yǎng)殖的報道 ^［30-31］。但紫紅笛鯛幼魚耐低氧的能力較弱，在幼苗培養(yǎng)過程中應(yīng)注意保證充足的水體溶解氧。雖然紫紅笛鯛幼魚對氨氮和亞硝酸鹽具有較強的耐受能力，但養(yǎng)殖過程中也應(yīng)避免水體污染，注意合理投喂飼料，避免產(chǎn)生過多的殘飼剩餌，并應(yīng)勤換水，及時除去水體中的糞便殘餌，應(yīng)注意監(jiān)測水體狀況，保持水體中氨氮及亞硝酸鹽處于安全濃度之下。

參考文獻

［1］黃小林，楊潔，戴超，等.丁香酚對紫紅笛鯛幼魚的麻醉效果［J］.中國漁業(yè)質(zhì)量與標準，2020，10（2）：51-58.

［2］牛文濤，蔡澤平.大亞灣紫紅笛鯛野生群體遺傳多樣性的RAPD分析［J］.海洋通報，2006，25（2）：87-92.

［3］邵彥翔.石斑魚對溫度脅迫的耐受性研究［D］.大連：大連海洋大學，2016.

［4］冉鳳霞，金文杰，黃屾，等.鹽度變化對魚類影響的研究進展［J］.西北農(nóng)林科技大學學報（自然科學版），2020，48（8）：10-18.

［5］孫俊霄，韓廣坤，劉婭，等.雜交黃顙魚與普通黃顙魚幼魚生長性能及耐低氧能力的比較［J］.水生生物學報，2019，43（6）：1271-1279.

［6］管士成.環(huán)境因素對魚類生長速度的影響［J］.養(yǎng)殖技術(shù)顧問，2013（10）：229.

［7］林國文.珍珠龍膽石斑魚對水溫、鹽度和低溶解氧耐受能力的初步研究［J］.漁業(yè)研究，2020，42（5）：481-485.

［8］阮成旭，袁重桂，吳德峰，等.氨氮和亞硝態(tài)氮對大黃魚幼魚的急性毒性效應(yīng)［J］.福州大學學報（自然科學版），2014，42（2）：333-336.

［9］魏金生，江興龍，王澤旭，等.澳洲鰻鱺（Anguilla australis）不同生長階段的生物學耐受性特征及其演變趨勢［J］.海洋與湖沼，2021，52（4）：983-993.

［10］鄭洪武，楊斯琪，孫穎，等.急性氨氮脅迫對大口黑鱸幼魚ACP、CAT和MDA的影響［J］.浙江海洋大學學報（自然科學版），2020，39（1）：27-33.

［11］CURRIE R J，BENNETT W A，BEITINGER T L.Critical thermal minima and maxima of three freshwater game-fish species acclimated to constant temperatures［J］.Environmental Biology of "Fishes，1998，51（2）：187-200.

［12］SPRAGUE J B.Measurement of pollutant toxicity to fish—III［J］.Water Research，1971，5（6）：245-266.

［13］胡玲紅，王映，王化敏，等.不同溫度脅迫對青鳉鰓凋亡的影響［J］.大連海洋大學學報，2021，36（6）：929-936.

［14］金方彭，李光華，高海濤，等.光唇裂腹魚幼魚對溫度、鹽度、pH的耐受性試驗［J］.水產(chǎn)科技情報，2016，43（6）：303-307.

［15］何林強，王萬良，曾本和，等.不同規(guī)格拉薩裂腹魚溫度耐受性研究［J］.水生生物學報，2020，44（6）：1230-1238.

［16］方琦，周仁杰，鐘指揮.白氏文昌魚幼魚對海水溫度和鹽度變化的耐受力研究［J］.水產(chǎn)科技情報，2010，37（6）：274-278.

［17］胡彥波，李昀，溫海深，等.不同群體花鱸幼魚溫度耐受特征的初步研究［J］.中國海洋大學學報（自然科學版），2019，49（S2）：1-7.

［18］杜佳玉，吳晗閱，孟照勇，等.鹽度脅迫對細鱗鮭幼魚呼吸代謝和抗氧化酶活性的影響［J］.安徽農(nóng)業(yè)科學，2021，49（22）：114-116.

［19］田璐.鹽度對黃姑魚生存生長、非特異性免疫及腸道菌群的影響［D］.舟山：浙江海洋大學，2019.

［20］曾榮林，謝仰杰，王志勇，等.大黃魚幼魚對低鹽度的耐受性研究［J］.集美大學學報（自然科學版），2013，18（3）：167-171.

［21］郭勤單，徐國成，王有基，等.銀鯧仔魚對不同鹽度的耐受力及其耗氧量的研究［J］.水產(chǎn)學報，2013，37（5）：719-726.

［22］高云濤，高云紅，李明月，等.斑石鯛低氧耐受能力及血液生理生化指標變化研究［J］.漁業(yè)科學進展，2022，43（6）：79-88.

［23］段鵬飛，田永勝，李振通，等.棕點石斑魚（♀）×藍身大斑石斑魚（♂）雜交后代與棕點石斑魚低氧耐受能力初步研究［J］.中國水產(chǎn)科學，2022，29（2）：220-233.

［24］冼健安，錢坤，郭慧，等.氨氮對蝦類毒性影響的研究進展［J］.飼料工業(yè)，2014，35（22）：52-58.

［25］孔杰.我國環(huán)境監(jiān)測中水體氨氮分析方法和影響因素綜述［J］.中國資源綜合利用，2018，36（4）：83-85.

［26］席文秋，孫娜，楊占全，等.水產(chǎn)養(yǎng)殖中亞硝酸鹽的產(chǎn)生及其消除方法［J］.科學養(yǎng)魚，2017（5）：81-82.

［27］呂妍.氨氮等水質(zhì)指標對水產(chǎn)養(yǎng)殖的影響及解決辦法［J］.黑龍江水產(chǎn)，2021，40（5）：53-56.

［28］呂景才，沈成鋼，楊景華.亞硝酸鹽對幾種淡水魚苗的急性毒性試驗［J］.大連水產(chǎn)學院學報，1993，8（1）：65-68.

［29］陳思.養(yǎng)殖水溫、餌料種類及氨氮和亞硝酸鹽對珍珠龍膽石斑魚幼魚生長性能的影響［D］.湛江：廣東海洋大學，2015.

［30］李振言.內(nèi)陸咸淡水主養(yǎng)紫紅笛鯛創(chuàng)高效［J］.科學養(yǎng)魚，2004（7）：30.

［31］黎祖福，張偉民，陶小林.紫紅笛鯛的養(yǎng)殖［J］.海洋科學，1995，19（6）：5-7.

Study on the environmental tolerance of juvenile Lutjanus argentimaculatus

YU Zhide ^1，2， HUANG Xiaolin ^2，3， ZHUANG Jiegui4， CHEN Yibiao ^2，3， LI Tao ^2，3， YANG Yukai ^2，3， HUANG Zhong ^2，3， SHU Hu1

（1. School of Life Sciences，Guangzhou University，Guangzhou 510006，China；

2. Shenzhen Base of South China Sea Fisheries Research Institute，Chinese

Academy of Fishery Sciences，Shenzhen 518121，China; 3. South China Sea

Fisheries Research Institute，Chinese Academy of Fishery Sciences/Key Laboratory of

South China Sea Fishery Resources Exploitation amp; Utilization， Ministry of Agriculture and

Rural Affairs/Guangdong Provincial Key Laboratory of Fishery Ecology and Environment，

Guangzhou 510300，China; 4. Shenzhen Longqizhuang

Industrial Development Co.，Ltd，Shenzhen 518121，China）

Abstract： To investigate the environmental tolerance of Lutjanus argentimaculatus to environmental factors， "juvenile L. argentimaculatus with an average weight of （9.7±1.5）g and a body length of （7.3±0.3）cm was used to explore their tolerance to temperature，salinity，and low dissolved oxygen with the gradual method.Different "concentration gradients were set to determine the median lethal concentration（LC 50） for ammonia nitrogen and "nitrite.The results showed that the suitable water temperature range for L. argentimaculatus was （16～35）℃， with a critical lower water temperature of 13.5 ℃， and a critical upper water temperature of 40.6 ℃.Normal "activity was observed when salinity ranged from 12.00 to 67.68， with an extreme salinity tolerance of （73.13± 0.18）.The critical point of asphyxiation for juvenile L. argentimaculatus was （1.88±0.08） mg/L， with DO 50 at （0.60±0.03） mg/L， and DO 100 at （0.34±0.03） mg/L.Under ammonia nitrogen stress， the LC 50 at 24， 48， 72， and 96 h were 170.30， 126.62， 95.05， and 64.90 mg/L， respectively.Under nitrite stress， the LC 50 at 24， 48， 72， and 96 h were 289.92， 214.22， 132.02， and 77.78 mg/L， respectively.The safe concentration for ammonia nitrogen is 6.49 mg/L， and the safe concentration for nitrite is 7.78 mg/L.

Key words： Lutjanus argentimaculatus; tolerance; ammonia nitrogen stress; nitrite stress; temperature; dissolved oxygen; salinity