李獻鋒 于璇 馮黎霞 于翠 丁鈿 徐強 趙菊鵬 馬駿 武目濤 魏霜
關(guān)鍵詞:番茄褐色皺果病毒;RNA依賴的RNA聚合酶;TaqMan探針;熒光定量RT-PCR;檢測
番茄褐色皺果病毒(tomato brown rugose fruitvlrus,ToBRFV)是近年新發(fā)的一種正單鏈RNA(+ssRNA)病毒,屬于帚狀病毒科Virga'-oiridae,煙草花葉病毒屬Tobarnoroz rus,基因組全長6.2~6.4kb,含有4個開放閱讀框(open reading frame,ORF),其中ORFI和ORF2分別編碼病毒復(fù)制相關(guān)的酶和RNA依賴的RNA聚合酶(RNA-depend-ent RNA polymerase,RdRP),ORF3編碼運動蛋白(movement protein,MP),ORF4編碼外殼蛋白(coat protein,CP)。ToBRFV的寄主主要為番茄和辣椒。植株感病后嫩葉和頂芽表現(xiàn)為斑駁、斑點和黃化等花葉癥狀,葉片變窄、畸形;花和果實大量減少,葉柄、花梗和花萼逐漸壞死;果實變形,出現(xiàn)黃、棕或綠色斑點、斑塊或條紋,嚴重時導(dǎo)致畸形、變褐、壞死,嚴重影響食用價值和產(chǎn)量。ToBRFV最早于2015年由約旦科學(xué)家首次鑒定和報道,此后,該病毒在世界范圍內(nèi)迅速蔓延,陸續(xù)在30余個國家或地區(qū)被檢出,橫跨歐洲、美洲、非洲和亞洲,呈現(xiàn)出種子帶毒傳播,傳播速度快和檢出率高的特點。2019年我國山東溫室栽培的番茄首次檢出ToBRFV,此后在云南和北京等地區(qū)也發(fā)現(xiàn)該病毒為害番茄。鑒于ToBRFV潛在的危害及影響,我國于2021年4月9日將To-BRFV增補列入《中華人民共和國進境植物檢疫性有害生物名錄》。此外,2020年1月至2022年4月,歐盟及瑞士從中國出口的番茄種子和辣椒種子中共檢出ToBRFV多達62批次,涉疫種子均被退貨或銷毀,對我國蔬菜種子的出口貿(mào)易造成了極大影響。
目前,ToBRFV的檢測方法有高通量測序(next-generation sequencing,NGS)、酶聯(lián)免疫(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)、環(huán)介導(dǎo)等溫擴增(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)、RT_PCR和熒光定量RT-PCR方法。NGS受限于檢測時效和檢測成本,無法適用于田間和口岸快速檢測和鑒定;ELISA檢測靈敏度較低且特異性較差;LAMP檢測成本較高、容易產(chǎn)生假陽性;而RT-PCR方法雖使用最為普遍,但其無法滿足當前快速、精準檢測鑒定的需求,尤其是對于病毒載量較低的種子類樣品。熒光定量RT-PCR技術(shù)具有靈敏度高、特異性強、重復(fù)性好、用時短和操作簡便等優(yōu)點,已成為當前植物病害檢測的重要手段之一。目前,國內(nèi)外關(guān)于ToBRFV的熒光定量RT-PCR的檢測方法已有一些研究報道,筆者前期建立了SYBR Green工熒光定量RT-PCR檢測方法,對番茄種子總RNA和重組質(zhì)粒標準品的檢測限分別低至0.2ng/uL和50.0拷貝/uL,均為常規(guī)RT-PCR檢測靈敏度的100倍;田沂民等、Klap等和Sarkes等也分別建立了ToBRFV的SYBR Green熒光定量RT-PCR檢測方法。相較于SYBR Green熒光定量RT-PCR技術(shù),TaqMan熒光定量RT-PCR技術(shù)具有更高的靈敏度、準確性和穩(wěn)定性。目前TaqMan熒光定量RT-PCR技術(shù)在ToBRFV檢測方面也有一些研究成果,F(xiàn)idan等和Panno等分別建立了ToBRFV的TaqMan熒光定量RT-PCR方法,EPPOPM 7/146(1)推薦了3組特異性引物和探針CaTa28、CSP1325和ToBRFVqs用于檢測ToBRFV,但尚無應(yīng)用于實際樣本檢測的研究報道。已建立的ToBRFV TaqMan熒光定量RT-PCR方法主要以CP和MP基因為靶標序列,而針對RdRP基因的檢測方法相對較少。同時,國內(nèi)還沒有關(guān)于ToBRFV的TaqMan熒光定量RT-PCR方法的研究報道,亟須建立該病毒的快速、穩(wěn)定和高效的檢測方法。本研究根據(jù)ToBRFVRdRP基因序列設(shè)計特異性引物和探針,建立TaqMan熒光定量RT-PCR檢測方法,并對其檢測靈敏度、特異性和實際樣品的檢測進行了驗證,以期豐富ToBRFV的檢測手段,為ToBRFV的檢疫和防控提供技術(shù)支撐。
1材料與方法
1.1試驗材料
供試ToBRFV陽性番茄和辣椒葉片樣品分別購自美國Agdia公司和德國DSMZ公司;ToBRFV陽性番茄和辣椒種子樣品于2019年在廣州口岸截獲,來源國為以色列;10份番茄新鮮葉片和10份辣椒新鮮葉片為2021年在廣東省廣州市番茄和辣椒主要種植區(qū)隨機采樣;20份番茄種子和20份辣椒種子樣品為2019年至2022年期間收集,分別來源于以色列、約旦、秘魯、法國和中國等國家。所有植物材料收集后于-80℃保存、備用。
其他供試病毒包括番茄花葉病毒(tomato mo-salc virus,ToMV)、番茄斑駁花葉病毒(tomatomottle mosaic virus,ToMMV)、煙草花葉病毒(to-bacco mosaic virus,TMV)、黃瓜綠斑駁花葉病毒(cucumber green mottle mosaic virus, CGMMV)、番茄環(huán)斑病毒(tomato ringspot virus,ToRSV)、番茄黑環(huán)病毒(tomato black ring virus,TBRV)、辣椒輕斑駁病毒(pepper mild mottle virus,PMMoV)、煙草環(huán)斑病毒(tobacco rtngspot virus,TRSV)和風果花葉病毒(pepino mosaic vlrus,PepMV),這9種病毒RNA樣品,健康的番茄和辣椒種子樣品均為本實驗室保存。
1.2試驗方法
1.2.1引物和探針的設(shè)計
根據(jù)GenBank已公布的ToBRFV(OM718706.1、MN013187.1、MT018320.1、MK648157.1、MW349655.1和KX619418.1)、ToMV(NC_002692.1)、PMMoV(NC_003630.1)和TMV (NC_001367.1)的RdRP基因序列,設(shè)計了4組特異性引物和探針(S1、S2、S3和S4),引物和探針由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,引物和探針序列見表1。
1.2.2總RNA提取
種子樣品:取250粒番茄或辣椒種子研磨成粉末狀,加入5mL PBS緩沖液(0.01%,pH 7.4),充分混勻后置于4℃靜置24h,10000g、4℃離心3min,吸取200uL上清液用于總RNA提取。葉片樣品:取30mg的番茄或辣椒葉片在研缽中研磨,加入1mL PBS緩沖液(0.01%,pH7.4),混勻,10000g、4℃離心5min后,吸取200uL上清液用于總RNA提取。提取步驟參照植物總RNA提取試劑盒(TaKaRa公司)說明書,最后用50uLRNase Free ddH20洗脫,使用NanoDrop-1000核酸濃度測定儀(Thermo Fisher Scientific公司)測定總RNA濃度和純度,分裝后置于-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3RT-PCR檢測
一步法RT-PCR反應(yīng)在PTC-200 PCR儀(Bio-Rad公司)上進行,反應(yīng)體系為:2×One StepBuffer 12.5uL,10umol/L的正向引物ToBRFV-5506-F和反向引物ToBRFV-6186-R各0.8uL,PrimeScript One Step Enzyme Mix (TaKaRa公司)0.8uL,RNA模板2.0uL,RNase Free ddH20補足至25uL。反應(yīng)程序為:50℃逆轉(zhuǎn)錄30min; 94℃預(yù)變性3min;94℃變性30s,57℃退火30s,72℃延伸60s,35個循環(huán);72℃延伸10min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測后,凝膠成像系統(tǒng)(Bio-Rad公司)分析結(jié)果。
1.2.4TaqMan熒光定量RT-PCR反應(yīng)引物和探針的篩選
一步法TaqMan熒光定量RT-PCR在ThermoQuantStudio 6.0熒光定量PCR儀(Thermo FisherScientific公司)中進行。分別采用本研究設(shè)計的4組特異性引物和探針,以提取的ToBRFV陽性番茄種子總RNA為模板,RNase Free ddH20作為空白對照進行TaqMan熒光定量RT-PCR,篩選出最優(yōu)的引物和探針組合。每次反應(yīng)設(shè)置2個重復(fù)孔,反應(yīng)體系為:One Step PrimeScriptⅢRT-qPCR Mix(TaKaRa公司)12.5uL,10umol/L的正、反向引物各0.6uL,10umol/L的探針0.4uL,RNA模板2.0uL,RNase Free ddH20補足至25uL。反應(yīng)程序為:42℃逆轉(zhuǎn)錄5min;95℃預(yù)變性10s;95℃變性5s,60℃退火60s(收集熒光信號),40個循環(huán)。
1.2.5特異性分析
分別以感染ToBRFV的番茄和辣椒種子樣品總RNA為陽性對照,以感染ToMV、ToMMV、TMV、CGMMV、ToRSV、TBRV、PMMoV、TRSV和PepMV等9種病毒的植物總RNA為試驗材料,以健康的番茄和辣椒種子作為陰性對照,同時以RNase Free ddH90作為空白對照,采用篩選出的引物和探針進行TaqMan熒光定量RT-PCR檢測分析,評估其特異性。
1.2.6靈敏度分析
分別以感染ToBRFV的番茄種子樣品總RNA為試驗材料(濃度約為10fg/uL),用EASY Dilu-tion buffer(TaKaRa公司)進行10倍梯度稀釋,得到濃度依次為107、106、105、104、103、102、101fg/uL和10fg/uL的樣品,以不同濃度的RNA樣品為模板,用篩選的最優(yōu)引物和探針進行TaqMan熒光定量RT-PCR反應(yīng),同時用EPPO PM7/146(1)推薦的2組特異性引物和探針CaTa28和CSP1325作為對照,比較針對不同靶標基因序列的3組引物和探針的檢測靈敏度。選擇熒光值穩(wěn)定且線性比例良好的濃度范圍,以模板濃度的對數(shù)值為橫坐標、Ct值為縱坐標,構(gòu)建熒光定量RT-PCR標準曲線。根據(jù)標準曲線的相關(guān)系數(shù)、斜率和擴增效率等,比較和驗證方法的有效性。
此外,以上述稀釋的總RNA為模板,采用筆者前期設(shè)計的特異性引物ToBRFV-5506-F和To-BRFV-6186-R進行常規(guī)RT-PCR反應(yīng),比較常規(guī)RT-PCR方法和TaqMan熒光定量RT-PCR方法的檢測靈敏度。
1.2.7樣品檢測
以廣東省廣州市田間采集的番茄葉片樣品10份、辣椒葉片樣品10份和廣州口岸收集的進出境番茄種子樣品20份、辣椒種子樣品20份,共60份樣品作為試驗材料(表2),分別以感染ToBRFV的番茄和辣椒葉片、種子樣品作為陽性對照,健康番茄和辣椒葉片、種子樣品作為陰性對照,同時以RNaseFree ddH2O作為空白對照,運用本研究建立的TaqMan熒光定量RT-PCR方法進行檢測,根據(jù)擴增曲線、Ct值確定其病毒攜帶情況。同時,將檢為陽性的熒光定量RT-PCR反應(yīng)液委托廣州天一輝遠公司測序分析,將獲得的序列在NCBI上進行BLAST比對分析,進一步復(fù)核陽性檢測結(jié)果。
2結(jié)果與分析
2.1引物和探針篩選結(jié)果
采用TaqMan熒光定量RT-PCR評估本研究設(shè)計的4組引物和探針對ToBRFV的檢測效率。S1組、S2組引物和探針產(chǎn)生的熒光信號最快,且約在22個循環(huán)達到了平臺期,但是陰性對照樣品在32個循環(huán)后均出現(xiàn)熒光信號,表明S1組、S2組引物和探針有非特異性擴增,特異性不強;S3組、S4組引物和探針在14個循環(huán)后出現(xiàn)熒光信號,約在24個循環(huán)后達到平臺期,無非特異性擴增信號,但是S3組在平臺期的熒光信號遠低于S4組,表明S4組引物和探針的擴增效率要高于S3組(圖1)。因此,選擇S4組引物和探針進行后續(xù)試驗。
2.2特異性檢測結(jié)果
采用TaqMan熒光定量RT-PCR對S4組引物ToBRFV-709-F/ToBRFV-828-R和探針ToBRFV-753-P進行特異性評價,結(jié)果顯示,感染ToBRFV的番茄、辣椒陽性種子樣品均有特異性擴增,而ToMV、ToMMV、TMV、CGMMV、ToRSV、TBRV、PMMoV、TRSV和PepMV等9種番茄和辣椒的主要病毒、健康的番茄和辣椒種子樣品和空白對照均無擴增反應(yīng),表明以S4組引物ToBRFV-709-F/To-BRFV-828-R和探針ToBRFV-753-P建立的Taq Man熒光定量RT-PCR方法對ToBRFV具有良好的特異性。
2.3靈敏度檢測結(jié)果
以10倍梯度稀釋的感染ToBRFV的番茄種子總RNA為模板,對S4組引物和探針進行靈敏度測試,并分別與CaTa28、CSP1325進行比較分析。結(jié)果顯示,3組引物和探針對濃度為10fg/uL時Ct值分別為38.22、36.40和36.99,RNA濃度為1fg/uL時均無熒光信號或Ct值為40.0(圖3a、3c和3e),表明3組引物和探針對ToBRFV的最低檢測濃度均為10fg/uL。3組引物和探針對不同濃度總RNA檢測的Ct值較為接近,S4組引物和探針檢測ToBRFV的Ct值略低于CaTa28和CSP1325。由建立的3種標準曲線可知(圖3b、3d和3f),隨著模板濃度降低,Ct值均出現(xiàn)遞增趨勢,且在模板總RNA濃度為10~10fg/uL范圍內(nèi),Ct值與模板總RNA濃度的對數(shù)值之間均呈良好的線性關(guān)系,標準曲線的斜率分別為-3.273、-3.288和-3.409,擴增效率為102.096%、101.423%和96.506%,R2分別為0.999、0.998和0.999,表明S4組引物和探針與Ca-Ta28、CSP1325對ToBRFV均具有較高的檢測效率。常規(guī)RT-PCR方法對總RNA濃度為10fg/uL的樣品擴增時具有清晰的條帶(圖4),即最低檢測濃度為10fg/uL,表明TaqMan熒光定量RT-PCR方法檢測ToBRFV的靈敏度是常規(guī)RT-PCR方法的100倍。
2.4樣品檢測結(jié)果
運用本研究建立的TaqMan熒光定量RT-PCR方法對收集的60份番茄和辣椒葉片、種子樣品進行檢測,結(jié)果(表2)表明,10份番茄葉片和10份辣椒葉片樣品檢測結(jié)果均為陰性;種子樣品中有10份檢測出攜帶ToBRFV,其中番茄種子樣品檢出5份,分別來自約旦、以色列、秘魯、法國和泰國;辣椒種子樣品檢出5份,分別來自約旦、以色列、泰國、日本和中國山東省。為進一步驗證檢測結(jié)果,將上述所有陽性檢出樣品的熒光定量RT-PCR產(chǎn)物進行測序,將獲得的序列在NCBI上進行BLAST比對分析,結(jié)果顯示,10份樣品測序序列與ToBRFV(登錄號:NC_028478.1)的對應(yīng)區(qū)域序列的相似性均為100%。
3結(jié)論與討論
目前檢測ToBRFV的TaqMan熒光定量RT-PCR方法,其檢測靶標多集中于CP和MP基因。EPPO PM7/146(1)中推薦的3組引物及特異性探針中,CaTa28以MP基因序列作為檢測靶標,CSP1325和ToBRFV均以CP基因序列作為檢測靶標;Panno等建立的TaqMan熒光定量RT-PCR方法亦是以MP基因序列作為檢測靶標。目前僅有Fidan等以RdRP基因序列為檢測靶標構(gòu)建了ToBRFV的TaqMan熒光定量RT-PCR方法,但是該研究沒有進行特異性和靈敏度分析,且其試驗材料為植株葉片。因此,本研究以RdRP基因作為檢測靶標,并以種子為試驗材料,建立了To-BRFV的熒光定量RT-PCR檢測方法。
ToBRFV可與ToMV、TMV、PepMV等同屬病毒同時侵染同一寄主并表現(xiàn)相似的癥狀,因此,建立ToBRFV熒光定量RT-PCR方法的關(guān)鍵步驟是進行特異性驗證。本研究中選取了口岸重點關(guān)注且檢出頻次較高的ToMV、ToMMV、TMV、CGMIVIV、ToRSV、TBRV、PMMoV、TRSV和PepMV等9種番茄和辣椒的主要病毒進行特異性試驗,且檢測結(jié)果均為陰性,表明本方法具有良好的特異性。
種子的植物病毒載量通常較低,因此,建立檢測方法的靈敏度尤為關(guān)鍵。Panno等建立的Taq Man熒光定量RT-PCR方法以體外轉(zhuǎn)錄合成RNA為模板,檢測靈敏度可達到10拷貝/反應(yīng);Bernabe-Orts等建立的Taq Man熒光定量RT-PCR方法以番茄葉片總RNA為模板,檢測靈敏度可達到10-1 fg/uL。本方法對感染ToBRFV的番茄種子RNA的檢測靈敏度為10fg/uL,靈敏度是常規(guī)RT-PCR方法的100倍。通過構(gòu)建標準曲線分析表明,分別以RdRP、CP和MP基因為靶標的3組引物和探針建立的熒光定量RT-PCR方法對ToBRFV的檢測靈敏度和擴增效率均相當,本方法可以與CaTa28、CSP1325互為補充用于ToBRFV檢測和復(fù)核。
此外,前人研究較多采用單一國家的ToBRFV分離物樣品進行方法驗證,本研究收集了9個國家的番茄和辣椒的樣品進行驗證,并分別從中國山東省、約旦、以色列、秘魯、泰國、日本和法國的種子樣品中檢測出ToBRFV,說明本方法對來源于不同國家的ToBRFV均具有較好的特異性。當然,這些來源于不同國家的陽性樣品是否屬于不同的ToBRFV分離物,需要后續(xù)進一步深入研究。此外,本研究從國內(nèi)收集的30份樣品中僅檢出1份辣椒種子ToBRFV陽性,國內(nèi)檢出率并不高,這可能與本研究收集的樣品數(shù)量有限相關(guān)。從近2年來歐盟通報從中國出口的番茄和辣椒種子檢出ToBRFV的頻次可以推測,當前ToBRFV在國內(nèi)的分布可能不止局限于已報道的山東、北京和云南等省份。因此,建議加強番茄和辣椒種苗跨境運輸和國內(nèi)跨區(qū)域調(diào)運的植物檢疫,對國內(nèi)的番茄和辣椒主要產(chǎn)區(qū)盡快開展ToBRFV疫情普查,并對國內(nèi)已發(fā)生的區(qū)域及時采取控制、根除措施,避免該病毒進一步擴散傳播造成更大的損失。
綜上所述,本研究針對ToBRFV建立了基于RdRP基因的TaqMan熒光定量RT-PCR方法,該方法特異性強、靈敏度高、重復(fù)性好、穩(wěn)定性強,能夠滿足快速、精準、穩(wěn)定的鑒定需求,適用于番茄和辣椒種子、葉片攜帶ToBRFV的檢測,是現(xiàn)有針對MP和CP為檢測靶標的檢測方法的有效補充手段,有助于ToBRFV進行高效檢測和診斷,為To-BRFV疫情的檢疫及防控提供有力支撐。