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    BMP9調(diào)控Notch、TLR4信號(hào)通路誘導(dǎo)主動(dòng)脈瓣間質(zhì)細(xì)胞成骨樣分化

    2023-11-30 02:08:44季愛華張文劍濰坊市益都中心醫(yī)院心臟大血管外科濰坊262500
    中國免疫學(xué)雜志 2023年11期
    關(guān)鍵詞:主動(dòng)脈瓣成骨瓣膜

    錢 磊 季愛華 張文劍(濰坊市益都中心醫(yī)院心臟大血管外科,濰坊 262500)

    鈣化性主動(dòng)脈瓣疾病(calcified aortic valve disease,CAVD)的主要特點(diǎn)為主動(dòng)脈瓣纖維增厚和鈣化,能夠引起主動(dòng)脈瓣狹窄,最終導(dǎo)致慢性心力衰竭[1]。隨著人口的老齡化,CAVD 的發(fā)生率逐年升高,并成為常見的心臟瓣膜?。?]。CAVD 病理過程復(fù)雜,包括內(nèi)皮功能障礙、脂質(zhì)沉積、慢性炎癥、細(xì)胞成骨分化等,最終導(dǎo)致瓣膜鈣化。其中炎癥細(xì)胞浸潤十分關(guān)鍵[3]。目前臨床治療CAVD 只能通過主動(dòng)脈瓣膜置換術(shù),而缺乏有效藥物。因此在CAVD的致病機(jī)制上尋找治療靶點(diǎn)十分重要。骨形態(tài)發(fā)生蛋白(bone morphogenetic protein,BMP)是轉(zhuǎn)化生長因子超家族成員,不但可以誘導(dǎo)骨、軟骨,以及皮下、肌肉的異位骨形成,還能調(diào)節(jié)細(xì)胞的增殖、分化和器官形成[4]。在CAVD 的進(jìn)展中,主動(dòng)脈瓣膜間質(zhì)細(xì)胞(aortic valve interstitial cells,AVICs)會(huì)呈成骨樣分化,在分化過程中,堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)、骨橋蛋白(osteopontin,OPN)、骨鈣蛋白(osteocalcin,OCN)表達(dá)升高[5]。BMP2、BMP4在鈣化瓣膜組織中表達(dá)升高[6]。而BMP9 與BMP2、BMP4 功能類似,促成骨能力很強(qiáng)[7]。在脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)誘導(dǎo)的炎癥環(huán)境中,BMP9促進(jìn)人牙周膜干細(xì)胞的成骨分化,上調(diào)炎癥標(biāo)志物表達(dá)[8]。在動(dòng)脈粥樣硬化中,BMP9可驅(qū)動(dòng)血管平滑肌細(xì)胞的增殖和遷移,造成局部動(dòng)脈粥樣硬化[9]。但BMP9在CAVD中的作用研究鮮有報(bào)道。

    本研究的實(shí)驗(yàn)前期發(fā)現(xiàn)BMP9 在CAVD 患者組織中表達(dá)升高,推測(cè)BMP9 可能促進(jìn)瓣膜鈣化。由于心臟瓣膜鈣化的關(guān)鍵環(huán)節(jié)是AVICs 的成骨分化,因此本研究以豬AVICs 為研究對(duì)象,探討B(tài)MP9 對(duì)AVICs 成骨分化的影響,為CAVD 的治療提供理論和實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 人瓣膜組織和豬AVICs 來源 選擇濰坊市益都中心醫(yī)院的主動(dòng)脈夾層患者為non-CAVD 組,主動(dòng)脈鈣化患者為CAVD組。取患者主動(dòng)脈瓣膜組織,一部分于4%多聚甲醛固定,另一部分于液氮保存。所有患者及家屬均簽署知情同意書。

    于濰坊市青州市動(dòng)物檢疫定點(diǎn)屠宰場(chǎng)收集家豬(8~10 月齡,體質(zhì)量120~150 kg)主動(dòng)脈瓣膜組織,體外分離培養(yǎng)原代AVICs。本研究通過濰坊市益都中心醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(20200512)。

    1.1.2 主要試劑及儀器 BMP9 干擾RNA(si-BMP9)、陰性對(duì)照干擾RNA(si-RNA)購自廣州銳博公司;重組腺病毒BMP7(recombinant adenovirus BMP7,Ad-BMP7)和攜帶綠色熒光蛋白基因的重組腺病毒(recombinant adenovirus carrying green fluorescent protein gene,Ad-GFP)購自上海漢恒公司;胎牛血清、胰蛋白酶、雄激素受體(androgen receptor,AR)染色試劑盒、ALP 染色試劑盒購自上海碧云天公司;M199培養(yǎng)基購自美國Hyclone公司;α-平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)、Vimentin、血小板內(nèi)皮細(xì)胞黏附分子-1(platelet endothelial cell adhesion molecule-1,PECAM-1,CD31)抗體購自萬類公司;BMP9、Runx2、OCN、OPN 抗體購自美國CST 公司;Notch2、發(fā)狀分裂相關(guān)增強(qiáng)子1(hairy and enhancer of split 1,Hes1)、Notch 胞內(nèi)域(Notch intracellular domain,NICD)、Toll 樣受體-4(Toll-like receptor-4,TLR4)、核因子κB p65(nuclear factor κB p65,NF-κB p65)抗體購自深圳市豪地華拓公司;二喹啉甲酸(Bicinchoninic acid,BCA)蛋白濃度測(cè)定試劑盒購自北京中杉金橋公司;冷凍離心機(jī)購自美國Beckman 公司;組織包埋機(jī)購自德國Leica 公司;蛋白電泳儀、轉(zhuǎn)膜儀購自美國伯樂公司;電子顯微鏡購自日本Olympus公司。

    1.2 方法

    1.2.1 免疫組織化學(xué)染色 取出4%多聚甲醛固定的主動(dòng)脈瓣膜組織并制成石蠟切片,經(jīng)烘片、二甲苯脫蠟、梯度乙醇脫洗、枸櫞酸鈉緩沖液抗原修復(fù)、3%H2O2封閉、血清室溫封閉、一抗4 ℃孵育過夜、二抗室溫30 min,3,3′-二氨基聯(lián)苯胺(3,3′-Diaminobenzidine,DAB)顯色、蘇木素復(fù)染,后經(jīng)梯度乙醇脫水、透明、封片、顯微鏡(×200)下觀察。

    1.2.2 豬AVICs 的分離、培養(yǎng)與鑒定 AVICs 的分離、培養(yǎng):離體主動(dòng)脈瓣膜用含雙抗的PBS漂洗后保存于新鮮M199培養(yǎng)基中,PBS漂洗后用Ⅰ型膠原酶消化組織,將瓣膜剪成小塊,于膠原酶中消化過夜。次日離心收集細(xì)胞,加入含10%胎牛血清的M199培養(yǎng)基于37 ℃、5%CO2條件中培養(yǎng),每3 d換液1次。待細(xì)胞密度達(dá)到80%時(shí)消化傳代。

    免疫熒光鑒定細(xì)胞表型:豬AVICs 接種于24 孔板的爬片,待細(xì)胞密度達(dá)到50%時(shí)用4%多聚甲醛固定,0.5% Triton-X100 破膜,3%H2O2封閉,血清室溫封閉,加入α-SMA、Vimentin 和CD31 一抗(1∶50)4 ℃孵育過夜,加入熒光染料標(biāo)記的二抗(1∶200)室溫避光孵育2 h,DAPI 復(fù)染細(xì)胞核,于熒光顯微鏡(×200)下觀察α-SMA、Vimentin和CD31表達(dá)。

    1.2.3 豬AVICs 的成骨分化誘導(dǎo) 取對(duì)數(shù)生長期的AVICs于M199培養(yǎng)基中培養(yǎng),待細(xì)胞密度約50%時(shí)向培養(yǎng)基中加入10 mmol/L β-甘油磷酸鈉、50 μg/ml維生素C、100 nmol/L 地塞米松誘導(dǎo)AVICs細(xì)胞成骨分化。

    1.2.4 BMP9 處理及實(shí)驗(yàn)分組 取對(duì)數(shù)生長期的AVICs,以2×105個(gè)/孔密度鋪于6 孔板中,待細(xì)胞密度達(dá)到約70%時(shí),構(gòu)建BMP9 基因沉默及過表達(dá)體系。轉(zhuǎn)入siRNA,分為control 組(未轉(zhuǎn)染siRNA 的AVICs 細(xì)胞)、si-control 組(轉(zhuǎn)染陰性對(duì)照siRNA 的AVICs細(xì)胞)、si-BMP9組(轉(zhuǎn)染BMP9-siRNA的AVICs細(xì)胞)。轉(zhuǎn)染重組腺病毒,分為Ad-GFP組(轉(zhuǎn)染GFP腺病毒的AVICs 細(xì)胞)、Ad-BMP9 組(轉(zhuǎn)染BMP9 腺病毒的AVICs細(xì)胞)。轉(zhuǎn)染48 h后,提取細(xì)胞總RNA用于qPCR 檢測(cè);提取細(xì)胞總蛋白質(zhì)用于Western blot檢測(cè)。

    1.2.5 ALP 染色 將轉(zhuǎn)染后的AVICs 細(xì)胞接種于24 孔板,各組細(xì)胞加入鈣鹽培養(yǎng)基培養(yǎng)7 d,然后用PBS 洗滌3 次,4%多聚甲醛室溫固定后,加入NBT/BCIP 溶液行ALP 染色,避光30 min 后觀察染色結(jié)果。ALP 染色如細(xì)胞質(zhì)中出現(xiàn)藍(lán)色輪廓,提示細(xì)胞內(nèi)ALP與染料結(jié)合。

    1.2.6 AR 染色 將轉(zhuǎn)染后的AVICs 細(xì)胞接種于24孔板,各組細(xì)胞加入鈣鹽培養(yǎng)基培養(yǎng)14 d,PBS洗滌3 次,4%多聚甲醛室溫固定后,加入0.4% AR 染液染色,采用去離子水終止反應(yīng),顯微鏡下觀察鈣鹽沉積情況。茜素紅染色細(xì)胞外出現(xiàn)深紅色鈣化結(jié)節(jié),提示產(chǎn)生鈣質(zhì)。

    1.2.7 qRT-PCR 檢測(cè)AVICs 中BMP9 及相關(guān)成骨指標(biāo)的mRNA 表達(dá) 采用Trizol 法提取AVICs 細(xì)胞總RNA。將RNA 反轉(zhuǎn)錄為cDNA,并使用SYBR Green 進(jìn)行擴(kuò)增,GAPDH 用作內(nèi)參。反應(yīng)條件:95 ℃ 5 min,95 ℃ 10 s,62 ℃ 30 s,共40 個(gè)循環(huán)。使用2-ΔΔCt公式計(jì)算BMP9、Runx2、OPN、OCN mRNA 的相對(duì)表達(dá)水平。BMP9-F:5′-ACGATCTGTTTCCCCTCATCT-3′,BMP9-R:5′-ATGCAGGGATGATGTTCTG-3′。Runx2-F:5′-GCACTACCCAGCCACCTTTA-3′,Runx2-R:5′-TATGGAGTGCTGCTGGTCTG-3′。OPN-F:5′-GAGCAAACAGACGATGTGGA-3′,OPN-R:5′-GACCAGCTCATCGGATTCAT-3′。OCN-F:5′-TCACACTGCTTGCCCTACTG-3′,OCN-R:5′-TGCCATAGAAGCGCCGATAG-3′。GAPDH-F:5′-GGTGAAGGTCGGAGTGAACG-3′,GAPDH-R:5′-CGTGGGTGGAATCATACTGGA-3′。

    1.2.8 Wertern blot 檢 測(cè)CAVD 組織和AVICs 中BMP9、相關(guān)成骨指標(biāo)及Notch、TLR4 信號(hào)通路蛋白表達(dá) 取部分CAVD 組織和AVICs,加入適量RIPA組織裂解液進(jìn)行總蛋白提取,并測(cè)定各組蛋白濃度,緩沖液稀釋后進(jìn)行SDS-PAGE 分離蛋白,電泳完畢后迅速轉(zhuǎn)至PVDF 膜,于TBST 中室溫封閉2 h,分別加入BMP9、Runx2、OPN、OCN、Notch2、NICD、Hes1、TLR4、NF-κB p65 一抗(1∶2 000)4 ℃孵育過夜。TBST 洗滌3 次后,加入二抗(1∶10 000)室溫孵育2 h,最后避光加入ECL顯色劑顯色,Bio-Rad凝膠成像儀記錄蛋白灰度并拍照,以GAPDH 作為對(duì)照,對(duì)各組蛋白表達(dá)進(jìn)行相對(duì)定量分析。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS16.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。計(jì)量資料用表示。兩組間比較采用t檢驗(yàn)。P<0.05表示差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 Runx2、BMP9 在CAVD 組織中的表達(dá) 免疫組化結(jié)果(圖1A)及Western blot(圖1B)結(jié)果顯示,與non-CAVD 組相比,CAVD 組中Runx2、BMP9 蛋白表達(dá)水平顯著升高(P<0.05)。說明BMP9能夠促進(jìn)瓣膜鈣化,且在CAVD的進(jìn)展中起重要作用。

    2.2 豬AVICs 的形態(tài)及表型鑒定 接種24 h 后,AVICs 細(xì)胞呈長梭形,形態(tài)趨于一致,呈放射狀(圖2A);免疫熒光染色結(jié)果顯示,α-SMA(圖2B)、Vimentin(圖2C)陽性表達(dá);而CD31陰性表達(dá)(圖2D)。說明原代豬AVICs分離成功。

    圖2 豬AVICs的形態(tài)及表型鑒定(×200)Fig.2 Morphology and phenotype identification of pig AVICs(×200)

    2.3 BMP9促進(jìn)豬AVICs的成骨分化 ALP染色結(jié)果(圖3A)顯示,與si-control組相比,si-BMP9組藍(lán)紫色染色結(jié)節(jié)明顯減少,ALP 活性降低(P<0.05);與Ad-GFP 組相比,Ad-BMP9 組藍(lán)紫色染色結(jié)節(jié)明顯增多,ALP 活性升高(P<0.05)。茜素紅染色結(jié)果(圖3B)顯示,與si-control組相比,si-BMP9組紅色鈣化結(jié)節(jié)明顯減少,茜素紅濃度降低(P<0.05);與Ad-GFP 組相比,Ad-BMP9 組深紅色鈣化結(jié)節(jié)明顯增多,茜素紅濃度升高(P<0.05)。qRT-PCR(圖3C)和Western blot(圖3D)結(jié)果顯示,與si-control 組相比,si-BMP9組BMP9、Runx2、OPN和OCN mRNA和蛋白表達(dá)水平明顯降低(P<0.05);與Ad-GFP 組相比,Ad-BMP9 組BMP9、Runx2、OPN 和OCN mRNA 和蛋白表達(dá)水平明顯升高(P<0.05)。提示BMP9能夠促進(jìn)AVICs成骨分化,并提高成骨指標(biāo)表達(dá)。

    圖3 BMP9促進(jìn)豬AVICs的成骨分化Fig.3 BMP9 promotes osteogenic differentiation of pig AVICs

    2.4 BMP9對(duì)Notch、TLR4信號(hào)通路的影響 Western blot結(jié)果(圖4)顯示,與si-control組相比,si-BMP9組Notch2、NICD、Hes1、TLR4、NF-κB p65 蛋白表達(dá)水平明顯降低(P<0.05);與Ad-GFP 組相比,Ad-BMP9組Notch2、NICD、Hes1、TLR4、NF-κB p65 蛋白表達(dá)水平明顯升高(P<0.05)。說明BMP9 可能通過Notch 和TLR4 信號(hào)通路調(diào)節(jié)AVICs 細(xì)胞的成骨樣分化。

    圖4 BMP9對(duì)Notch、TLR4信號(hào)通路的影響Fig.4 Influence of BMP9 on Notch and TLR4 signaling pathway

    3 討論

    CAVD 是一種活躍的、細(xì)胞驅(qū)動(dòng)的退行性疾病。健康瓣膜中AVICs 保持靜止,維持成纖維細(xì)胞樣特征,但在CAVD 中AVICs 會(huì)呈成骨樣分化,并伴有Runx2、OPN、OCN 和ALP 表達(dá)升高[10-11]。在骨形成及心臟瓣膜發(fā)育中,BMPs 起重要作用。研究發(fā)現(xiàn)BMP2、BMP4、BMP7 在CAVD 中表 達(dá)升 高,表明BMPs 家族與CAVD 相關(guān)[12-14]。BMP2 的主要作用為直接誘導(dǎo)鈣化,而BMP9 主要參與內(nèi)皮病變。瓣膜鈣化過程中,最初表現(xiàn)為內(nèi)皮細(xì)胞損傷和上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化,但最終將轉(zhuǎn)化為AVICs 表型[15]。研究發(fā)現(xiàn),BMP9 可誘導(dǎo)VCAM-1 和ICAM-1 表達(dá),引起血管炎癥,進(jìn)而誘導(dǎo)局部的動(dòng)脈粥樣硬化,且BMP9 也能使血管平滑肌細(xì)胞發(fā)生鈣化,表明BMP9 在鈣化過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用[16-17]。本研究證實(shí),在CAVD 組織中BMP9 表達(dá)升高,推測(cè)BMP9可能在CAVD 中起重要作用。通過構(gòu)建低表達(dá)和過表達(dá)BMP9 的AVICs發(fā)現(xiàn)敲減BMP9后,Runx2、OPN、OCN 等成骨指標(biāo)表達(dá)降低,同時(shí)ALP 染色變淺,鈣鹽沉積減少;BMP9過表達(dá)后,Runx2、OPN、OCN 表達(dá)增加,ALP 染色變深,鈣鹽沉積增加,說明BMP9 能夠促進(jìn)AVICs 成骨分化。

    Notch 信號(hào)通路能夠調(diào)控細(xì)胞的增殖、分化及凋亡等生理過程,同時(shí)Notch 信號(hào)通路在誘導(dǎo)成骨細(xì)胞分化及內(nèi)皮細(xì)胞鈣化中起重要作用。如謝正松等[18]發(fā)現(xiàn)過表達(dá)BMP4通過激活Notch 信號(hào)通路,促進(jìn)骨髓基質(zhì)細(xì)胞成骨分化。MAJUMDAR 等[19]發(fā)現(xiàn)Notch 信號(hào)通路可促進(jìn)血管平滑肌細(xì)胞鈣化。ZENG 等[20]研究表明Notch 信號(hào)通路在人心臟瓣膜間質(zhì)細(xì)胞鈣化過程中發(fā)揮重要的促進(jìn)作用。許多研究表明慢性炎癥反應(yīng)參與退行性瓣膜鈣化。TLR4是一種模式識(shí)別受體,可表達(dá)于主動(dòng)瓣膜間質(zhì)細(xì)胞,能夠誘導(dǎo)膜間質(zhì)細(xì)胞的成骨分化和造成炎癥反應(yīng)。如ZHENG 等[21]發(fā)現(xiàn)主動(dòng)瓣膜間質(zhì)細(xì)胞中TLR4、NF-κB 水平上調(diào),miR-214 通過激活TLR4 通路促進(jìn)鈣化。SHEN 等[22]發(fā)現(xiàn)小鼠主動(dòng)瓣膜間質(zhì)細(xì)胞鈣化區(qū)中TLR4表達(dá)水平增加,TLR4基因敲除后,主動(dòng)脈瓣間質(zhì)細(xì)胞鈣化程度明顯減弱。本研究中敲減BMP9 后,Notch2、NICD、Hes1、TLR4、NF-κB p65 蛋白表達(dá)水平降低;過表達(dá)BMP9 后,Notch2、NICD、Hes1、TLR4、NF-κB p65 蛋白表達(dá)水平升高,說明BMP9可能通過激活Notch 和TLR4信號(hào)通路發(fā)揮促鈣化作用,見圖5。

    圖5 BMP9誘導(dǎo)豬AVICs成骨分化的作用機(jī)制Fig.5 Mechanism of BMP9 inducing osteogenic differentiation of pig AVICs

    綜上所述,BMP9 能夠促進(jìn)AVICs 的成骨樣分化,這一作用機(jī)制可能與Notch 和TLR4 信號(hào)通路的激活有關(guān)。為CAVD 的治療提供了理論和實(shí)驗(yàn)依據(jù)。抑制AVICs BMP9 表達(dá)或阻斷Notch 和TLR4 信號(hào)通路,可能會(huì)延緩瓣膜鈣化進(jìn)程。

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