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    煙草番茄環(huán)紋斑點病毒快速檢測試紙條的研制及應(yīng)用

    2023-11-24 08:51:46夏振遠盧燦華黃昌軍馬俊紅劉春明蓋曉彤
    煙草科技 2023年11期
    關(guān)鍵詞:膠體金單克隆紙條

    姜 寧,夏振遠,盧燦華,黃昌軍,馬俊紅,劉春明,蓋曉彤*

    1.云南省煙草農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,昆明市五華區(qū)圓通街33 號 6500212.云南省煙草公司紅河州公司,云南省紅河州彌勒市溫泉路 652399

    番茄環(huán)紋斑點病毒(tomatozonatespotvirus,TZSV)屬于正番茄斑萎病毒屬(Orthotospovirus),是正番茄斑萎病毒屬的一個新種,于2005 年在我國云南省的番茄和辣椒產(chǎn)區(qū)中被發(fā)現(xiàn),由Dong 等[1]分離并正式命名。TZSV 自然條件下可侵染番茄(Lycopersicumesculentum)、辣椒(Capsicumannuum)、普通煙草(Nicotianatabacum)、馬鈴薯(Solanum tuberosum)、文殊蘭(Crinumasiaticum)、蜘蛛蘭(Hymenocallislittoralis)、鳶尾(Iristectorum)、鬼針草(Bidenspilosa)等20多種植物,目前主要分布在我國的云南、廣西等地[1-8]。TZSV 主要以西花薊馬(Frankliniellaoccidentalis)、棕櫚薊馬(Thripspalmi)、煙薊馬(T.tabaci)等多種薊馬為介體,通過持久增殖型的方式進行傳播,同時還可以通過嫁接和汁液摩擦傳播[1,9-12]。該病毒可引起多種經(jīng)濟作物斑萎病,常與其他病毒復(fù)合侵染加重癥狀,嚴重時甚至絕收,給農(nóng)業(yè)生產(chǎn)帶來較大經(jīng)濟損失[13-14]。TZSV 在寄主上引起的癥狀主要與品種、寄主生育時期、環(huán)境條件等因素有關(guān)。受TZSV侵染的烤煙煙株在發(fā)病初期,葉片上會出現(xiàn)同心環(huán)紋或細小壞死斑點,隨后壞死范圍擴大,葉片上出現(xiàn)大量壞死環(huán)斑或連片壞死,主葉脈扭曲,植株頂芽壞死萎蔫,在團棵期以前發(fā)病的煙株常整株壞死[13,15-16]。根據(jù)于海芹等[2]的報道,云南省煙草斑萎病發(fā)病煙株中,27%以上由TZSV 引起,TZSV 已成為云南煙區(qū)煙草斑萎病的主要病原,嚴重影響烤煙生產(chǎn)。然而,其在煙草上引起的癥狀與番茄斑萎病毒(tomato spotted wilt virus,TSWV)等正番茄斑萎病毒屬病毒在煙草上引起的癥狀相似,通過肉眼難以辨別。目前,檢測TZSV 的方法主要有電子顯微鏡檢測[17]、分子生物學(xué)檢測[4,18]、血清學(xué)檢測等[19-21]。電鏡檢測、分子生物學(xué)檢測,以及血清學(xué)檢測中的酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)檢測耗時長,且需要專業(yè)檢測設(shè)備和技術(shù)嫻熟的專業(yè)人員,成本高,不適合田間病害的快速檢測[22]。目前,國內(nèi)科研人員制備了TZSV 的單克隆抗體[19-21],并在此基礎(chǔ)上制備了TZSV 的膠體金免疫層析試紙條(colloidal gold immunochromatographic strip,GICA),然而目前國內(nèi)外市場上并沒有商品化的TZSV檢測試紙條。為此,制備了TZSV N蛋白單克隆抗體,并研制了能夠快速檢測TZSV 的膠體金試紙條,旨在實現(xiàn)煙葉生產(chǎn)中TZSV的快速檢測鑒定,為煙草斑萎病的有效防控提供技術(shù)支持。

    1 材料與方法

    1.1 材料、試劑和儀器

    試劑耗材:酵母提取物、胰蛋白胨、異丙基-β-D-硫代半乳糖苷[IPTG(英國OXOID公司)];BL21 感受態(tài)(自制);預(yù)染蛋白Marker、蛋白濃度定量試劑盒(上海生工生物工程有限公司);牛血清白蛋白BSA(美國Merck 公司);碳酸氫鈉、無水碳酸鈉、氯化鈉、氯化鉀、十二水合磷酸二氫鈉、磷酸二氫鉀、碳酸鉀、Tris、檸檬酸、氯金酸、檸檬酸三鈉、蔗糖、海藻糖、氫氧化鈉、吐溫-20、甲醇等(國產(chǎn)分析純);NC膜(德國Sartouris公司)。

    儀器:超聲波細胞破碎儀(美國Branson 公司);全溫度振蕩培養(yǎng)箱(上海旻泉儀器有限公司);高速冷凍離心機、低溫高速離心機、可調(diào)微量加樣器、小型臺式離心機(德國Eppendorf公司);恒溫磁力攪拌器(上海司樂儀器有限公司);恒溫鼓風(fēng)干燥箱(德國Binder 公司);純水儀(美國Millipore 公司);水平搖床(太倉華利達實驗設(shè)備有限公司);pH 計(瑞士Mettler Toledo 公司);噴金劃膜機、切條機、壓卡機、封口機(杭州峰航科技有限公司)。

    病毒材料:采自云南植煙區(qū)玉溪、紅河、昆明、麗江、臨滄、普洱、文山、昭通、曲靖等州(市)的田間發(fā)病煙葉樣品131個,樣品經(jīng)PCR檢測為TZSV陽性后用于試紙條的檢測。煙草花葉病毒(tobacco mosaic virus,TMV)、馬鈴薯Y 病毒(potato virus Y,PVY)、TSWV、南美紅辣椒脈斑駁病毒(chilli veinal mottle virus,ChiVMV)、黃瓜花葉病毒(cucumber mosaic virus,CMV)、煙草脈帶花葉病毒(tobacco vein banding mosaic virus,TVBMV)等均由本課題組純化保存。

    1.2 方法

    1.2.1 TZSVN基因蛋白表達和純化

    序列合成:根據(jù)TZSV 云南分離物N基因序列(GenBank Accession number NC_010489),優(yōu)化密碼子,合成并克隆到載體pET28a,得到質(zhì)粒pET28a-TZSV-N,序列由上海生工生物工程股份有限公司合成。質(zhì)粒pET28a-TZSV-N 轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3),并篩選陽性克隆。

    蛋白表達:固體平板上挑取pET28a-TZSV-N 單克隆菌落接入5 mL LB 液體培養(yǎng)基(卡那質(zhì)量濃度50 μg/mL),37 ℃培養(yǎng)12~14 h。次日,菌種以1∶50(體積比)接入LB 液體培養(yǎng)基(卡那質(zhì)量濃度50 μg/mL),37 ℃培養(yǎng)至OD值0.4~0.6,加入IPTG至終濃度0.8 mol/L,25 ℃誘導(dǎo)表達6 h,菌液8 000 r/min、4 ℃離心(5810R,德國Eppendorf 公司)15 min,并收集菌體。

    菌種裂解:加入100 mL 破碎液進行超聲破碎。裂解條件:冰浴、功率60%、超聲2 s、間隔2 s、時間15 min。超聲破碎后12 000 r/min、4 ℃離心15 min,并收集上清液和沉淀。

    上清液純化:收集的上清液利用高親和性Ni 樹脂進行純化,并收集穿出液、洗脫液,由SDS-PAGE檢測純化效果。

    1.2.2 雜交瘤細胞和單克隆抗體制備

    將表達純化的蛋白與等體積的弗氏佐劑混合乳化均勻,成油包水狀態(tài),用于免疫小鼠試驗。將乳化后的蛋白免疫4只BALB/c小鼠,皮下免疫3次,間隔28 d,最后經(jīng)間接ELISA 檢測效價[23]。細胞融合參照趙丹丹等[24]的方法,最后一次免疫14 d 后腹腔注射抗原進行加強免疫,3 d后進行細胞融合。將融合好的細胞進行96 孔鋪板,用HAT 培養(yǎng)液進行培養(yǎng),3 d后更換并改用HT培養(yǎng)液培養(yǎng)。10 d后,取細胞培養(yǎng)上清液進行檢測。使用有限稀釋法對陽性孔進行克隆,直到得到的克隆均為陽性,最終獲得雜交瘤細胞。

    提前7 d在小鼠腹腔中注射礦物油,將一定數(shù)量的雜交瘤細胞注射入小鼠腹腔,10 d左右收集腹水,4 000 r/min 離心15 min,上清液即為單克隆抗體腹水。參照尚海麗等[25]的方法進行單克隆抗體純化。以間接ELISA方法對純化后抗體進行效價檢測[23]。

    應(yīng)用小鼠抗體亞型檢測試劑盒(美國Proteintech公司)對抗體進行亞型檢測。應(yīng)用雙抗夾心的金標方法篩選可以配對的抗體對。

    1.2.3 TZSV膠體金快速檢測試紙條制備

    參照魏梅生等[26]的方法,采用檸檬酸三鈉還原方法制備膠體金。TZSV 膠體金快速檢測試紙由樣品墊、金標墊、硝酸纖維素膜、吸水墊(吸收墊)和背板組成;樣品墊、金標墊、硝酸纖維素膜和吸水墊依次疊加粘貼在背板上,各組分間相互疊加2.5 mm;金標墊上包被有膠體金標記的抗TZSV單克隆抗體(由10#雜交瘤細胞產(chǎn)生);硝酸纖維素膜上設(shè)有檢測線(Test line,T線)和質(zhì)控線(Control line,C線),檢測線包被有抗TZSV病毒單克隆抗體(由55#雜交瘤細胞產(chǎn)生),質(zhì)控線包被有抗鼠IgG二抗。

    質(zhì)控線包被的抗鼠IgG 二抗的質(zhì)量濃度為1 mg/mL。樣品墊的大小為3 mm×15 mm,金標墊的大小為3 mm×3 mm,硝酸纖維素膜的大小為3 mm×28 mm,吸收墊的大小為3 mm×19 mm。檢測線與質(zhì)控線間的間距為6.0 mm~6.5 mm。

    在底板上依次粘貼樣品墊和固定有膠體金標記的TZSV單克隆抗體的金標墊、硝酸纖維素膜以及吸收墊,切條機裁切成3 mm 寬,獲得TZSV 膠體金快速檢測試紙條。

    1.2.4 檢測方法

    準備待測樣品液,取200 μL 待測液加入1.5 mL離心管,取試紙條將有樣品墊的一端插入離心管,接觸待測液,5 min 左右判斷結(jié)果。若C 線顯色而T 線未顯色,則結(jié)果為陰性;若C 線和T 線均顯色,結(jié)果為陽性;若C線和T線均未顯色或T線顯色而C線未顯色,則結(jié)果無效。

    1.2.5 試紙條性能評價試驗

    1.2.5.1 靈敏度測試

    將0.1 g 感染TZSV 的煙草葉片充分研磨,加入1 mL 0.1 mol/L PBS作為病毒汁液的10倍稀釋液,依次配制102、103、104、105倍的病毒汁液稀釋液。

    1.2.5.2 特異性測試

    將含TMV、PVY、CMV、TVBMV、ChiVMV、TSWV和TZSV的發(fā)病葉片制備成10倍病毒汁液稀釋液,分別取200 μL用TZSV快速檢測試紙條檢測。

    1.2.5.3 田間樣品檢測

    田間采集疑似煙草斑萎病的樣品,提取RNA,RT-PCR 鑒定其中的TZSV,所用引物為TZSV N 基因特異性引物。上游引物TZSV-N(5'-3'):TTAAAA AGACAGATCATTGCTGCT;下游引物TZSV-NR(5'-3'):ATGTCTAACGTCCGGAGTTTAAC,參考尹躍艷等[27]的方法設(shè)計。用TZSV 試紙條對所有TZSV RT-PCR 檢測為陽性的樣品進行測試,并計算兩種檢測方法的符合度。

    1.2.5.4 穩(wěn)定性測試

    將制備好的TZSV快速檢測試紙條密封后在4、25、37 ℃3個溫度條件下保存,并在第0、1、2、3、4、5、6個月后取出,分別檢測TZSV陽性樣品和健康煙葉(陰性對照),并檢測其穩(wěn)定性。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 TZSV云南省株系N蛋白原核表達

    對TZSV云南株系N蛋白序列的親疏水性、信號肽、跨膜域、基本結(jié)構(gòu)等進行理論評估,為了更好地進行原核表達,對該基因序列進行了密碼子優(yōu)化(圖1)。優(yōu)化后的序列與原序列相比,核苷酸同源性為77.6%,而氨基酸序列完全一致。采用基因合成的方式構(gòu)建質(zhì)粒并克隆到表達載體pET28a上,進一步轉(zhuǎn)化到大腸桿菌感受態(tài)細胞(BL21)。

    融合蛋白經(jīng)過純化,可在上清液中大量表達,經(jīng)驗證在200~500 mmol/L 咪唑的洗脫下可最大量純化該融合蛋白。SDS-PAGE 電泳分析在理論分子量35 kDa 相應(yīng)位置出現(xiàn)明顯條帶,初步確定融合蛋白成功得到了純化(圖2)。

    圖2 SDS-PAGE檢測純化后的重組TZSV N蛋白Fig.2 Purified recombinant TZSV N protein after SDS-PAGE test

    2.2 TZSV單克隆抗體制備

    取4 只6 周齡雌性BALB/c 小鼠,在第0、13、33天共進行3次免疫。每次每只小鼠抗原免疫用量為25 μg,初次免疫用等量弗氏完全佐劑乳化,皮下多點注射。第2次免疫用等量弗氏不完全佐劑乳化,皮下多點注射,第3次免疫用等量生理鹽水混合,腹腔注射。第2 次免疫后20 d 尾靜脈采血,通過間接ELISA 法測抗體效價,以此確定小鼠體內(nèi)是否有抗體生成。比較4只小鼠的效價,選擇抗體效價較高的小鼠用于細胞融合。融合前3 d 用抗原直接加強免疫1次。

    共獲得陽性單克隆雜交瘤細胞株55 株(1#~55#)。收集雜交瘤細胞,制備并收集小鼠腹水,田間采集的TZSV陽性樣品以103倍病毒汁液稀釋液為待測樣品,采用間接ELISA法測定抗體效價,效價最高可達1∶1 024 000??贵w類型及亞類鑒定結(jié)果表明,55 個單抗中有54 個單抗類型為IgG1,1 個單抗類型為IgG2b,所有單克隆抗體均為κ輕鏈。選擇其中能夠高效分泌TZSV 單抗且效價高的9#、10#、45#和55#雜交瘤細胞進行后續(xù)試驗。

    2.3 TZSV試紙條性能測試

    按照1.2.3 的方法制備TZSV 快速檢測試紙條。首先對試紙條靈敏度進行檢測。經(jīng)測試,10#單抗標金/55#單抗噴膜抗體組合檢測效果最好。利用田間發(fā)病的TZSV 陽性煙葉樣品進行靈敏度檢測。結(jié)果(圖3)顯示,10#單抗標金/55#單抗噴膜的試紙條靈敏度最佳,在病毒汁液稀釋104倍時T 線仍清晰可見,病毒汁液稀釋105倍時隱約有線。

    圖3 TZSV試紙條靈敏度檢測Fig.3 Sensitivity evaluation on test strips for TZSV

    以陽性的TMV、PVY、CMV、TVBMV、ChiVMV、TSWV 和TZSV 發(fā)病葉片作為待測樣品對TZSV 試紙條特異性進行檢測,結(jié)果見圖4。由圖4 可見,試紙條僅對TZSV樣品有陽性反應(yīng),其他病毒陽性樣品檢測結(jié)果均為陰性,表明TZSV試紙條具有良好的特異性。

    圖4 TZSV試紙條特異性檢測Fig.4 Specificity evaluation on test strips for TZSV

    田間采集疑似煙草斑萎病的煙草樣品,提取RNA,通過RT-PCR 鑒定其中的TZSV。鑒定為TZSV 陽性的131 個煙草樣品用本研究中制備的TZSV快速檢測試紙條進行檢測,其中126個樣品經(jīng)試紙條檢測為陽性,符合率為96.2%。

    TZSV 試紙條穩(wěn)定性評價。將試紙條置于4、25、37 ℃環(huán)境條件下保存6個月,期間每隔1個月取出試紙條檢測陰性對照和TZSV 陽性樣品,結(jié)果見表1。在穩(wěn)定性評價6 個月時間內(nèi),試紙條在3 種溫度條件下均保持良好的穩(wěn)定性,無假陽性和假陰性出現(xiàn)。

    表1 不同溫度條件下TZSV試紙條穩(wěn)定性檢測結(jié)果①Tab.1 Stability evaluation results of test strips for TZSV at different temperatures

    3 討論

    煙草斑萎病已成為影響我國西南煙區(qū)烤煙生產(chǎn)的重要病毒病,其病原是以TSWV 和TZSV 為主的多種正番茄斑萎病毒屬病毒[2]。不同病毒引起的煙草斑萎病癥狀類似,僅憑肉眼難以區(qū)分。此外,苗期的煙草斑萎病檢測對于育苗質(zhì)量監(jiān)測尤為重要。目前市場上已有TSWV的快速檢測產(chǎn)品,但沒有TZSV的快速檢測試紙條。我國已有科研人員制備了TZSV單克隆抗體并制備了TZSV快速檢測試紙條,但其對煙草病汁液的檢測限介于1∶810~1∶2 430,且并未對田間自然發(fā)病的TZSV煙葉樣品進行檢測[19-21]。本研究中制備的TZSV 快速檢測試紙條檢測TZSV陽性煙草葉片病汁液可稀釋10 000 倍(質(zhì)量體積比),靈敏度高,可在5 min內(nèi)實現(xiàn)田間發(fā)病煙草斑萎病樣品的快速檢測。本研究中制備的TZSV 快速檢測試紙條檢測結(jié)果與RT-PCR 檢測結(jié)果的吻合率為96.2%,少量RT-PCR檢測結(jié)果為TZSV陽性的樣品,TZSV試紙條檢測結(jié)果為陰性,這說明試紙條檢測的靈敏度略低于RT-PCR。由于病毒在葉片上分布不均,這一結(jié)果也可能與不同采樣煙葉部位病毒含量差異有關(guān)。根據(jù)云南省煙草斑萎病病原組成特點,下一步可嘗試制備同時檢測TSWV 和TZSV 的多重檢測試紙條。本研究中制備的TZSV 快速檢測試紙條可對田間煙葉和煙田周邊雜草上的TZSV 實現(xiàn)快速檢測,基于其較高的靈敏度,本研究中制備的TZSV 單抗和快速檢測試紙條具有檢測傳毒昆蟲薊馬是否帶毒的潛力,但還需進一步驗證。

    4 結(jié)論

    ①獲得了TZSV 單克隆抗體。②制備了TZSV膠體金快速檢測試紙條,可在5 min內(nèi)完成煙草病毒的檢測。③試紙條檢測陽性TZSV 的煙草病汁液的靈敏度高,可稀釋10 000 倍(質(zhì)量體積比)。同時與煙草上常見的TMV、PVY、CMV 和TSWV 等病毒沒有交叉反應(yīng),可特異性地檢測田間煙葉樣品中的TZSV。

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