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    咖啡酸苯乙酯對(duì)HepG2細(xì)胞氧化應(yīng)激和脂質(zhì)代謝的調(diào)節(jié)作用

    2023-10-17 07:02:34陳瑞達(dá)林萌慧蔡成崗趙敏潔蔡海鶯
    食品科學(xué) 2023年17期
    關(guān)鍵詞:氧化應(yīng)激分析

    劉 暢,常 超,陳瑞達(dá),林萌慧,孫 蓉,蔡成崗,趙敏潔,蔡海鶯,,3,*

    (1.浙江科技學(xué)院生物與化學(xué)工程學(xué)院,浙江省農(nóng)業(yè)生物資源生化制造協(xié)同創(chuàng)新中心,浙江省農(nóng)產(chǎn)品化學(xué)與生物加工技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,浙江 杭州 310023;2.浙江大學(xué)生物系統(tǒng)工程與食品科學(xué)學(xué)院,浙江 杭州 310058;3.美欣達(dá)集團(tuán)有限公司,浙江 湖州 313002)

    隨著居民膳食結(jié)構(gòu)的變化,高脂膳食攝入的不斷增加成為日益顯著的現(xiàn)象,過量攝入的高脂膳食會(huì)導(dǎo)致機(jī)體物質(zhì)和能量代謝失衡[1],引起體質(zhì)量增加、脂肪積累、氧化應(yīng)激提高以及系統(tǒng)性炎癥[2-3],并且伴隨著肥胖、非酒精性脂肪肝(nonalcoholic fatty liver disease,NAFLD)、代謝綜合征等多種疾病的產(chǎn)生[4-5]。引起人們廣泛關(guān)注的脂代謝紊亂也和高脂膳食的過量攝入關(guān)系密切[6],當(dāng)大量的能量被吸收后,未被消耗的能量會(huì)在脂肪組織中儲(chǔ)存[7],脂肪積累在現(xiàn)有的脂肪細(xì)胞中,從而增大細(xì)胞體積,然而脂肪細(xì)胞儲(chǔ)存脂肪的能力有限,多余的脂肪無法被脂肪組織吸收,從而引起血液、肝臟等的功能紊亂,而脂肪組織的擴(kuò)大會(huì)逐漸導(dǎo)致肥胖[8-9]??Х人岜揭阴ィ╟affeic acid phenethyl ester,CAPE)是來源于蜂膠中的天然活性物質(zhì)[10],具有許多生物學(xué)特性,如抗氧化、免疫調(diào)節(jié)、抗腫瘤[11-13]等。Sun Lulu等[14]的研究表明,CAPE具有改善脂代謝紊亂的作用,其能夠調(diào)節(jié)不同組織脂代謝的多個(gè)信號(hào)通路,改善高脂膳食脂肪合成調(diào)控的一系列關(guān)鍵基因的表達(dá),抑制組織中的脂肪細(xì)胞分化,減少脂肪的積累。遲樂[15]研究發(fā)現(xiàn),CAPE通過調(diào)節(jié)過氧化物酶體増殖物激活受體-γ(peroxisome proliferator activated receptor-γ,PPAR-γ)、CCAAT/增強(qiáng)子結(jié)合蛋白α(enhancer binding protein α,CEBPα)和轉(zhuǎn)化生長因子-β(transforming growth factor β,TGF-β)信號(hào)通路影響3T3-L1細(xì)胞生成脂肪,抑制脂質(zhì)合成相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子和下游相關(guān)因子的表達(dá),顯著降低細(xì)胞中甘油三酯(triglyceride,TG)含量和甘油-3-磷酸脫氫酶的活性,具有潛在的抗肥胖作用。有研究顯示,CAPE可通過抑制糖尿病小鼠和人肝臟腫瘤細(xì)胞(HepG2)模型的應(yīng)激,活化蛋白激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)和核轉(zhuǎn)錄因子-κB(nuclear factor-κB,NF-κB)炎癥信號(hào)通路,改善胰島素抵抗[16]。目前這些研究都只集中于CAPE調(diào)節(jié)脂代謝的生化指標(biāo)測定以及信號(hào)通路的驗(yàn)證,對(duì)于其直接作用的位點(diǎn)尚不明確。本研究用CAPE處理油酸誘導(dǎo)的HepG2細(xì)胞高脂肪模型,通過轉(zhuǎn)錄組測序,對(duì)2.5 μmol/L CAPE及高脂肪組的細(xì)胞進(jìn)行測序,擬從轉(zhuǎn)錄組水平分析CAPE處理后HepG2細(xì)胞的基因表達(dá)差異,進(jìn)而對(duì)基因進(jìn)行富集分析,同時(shí)篩選出與脂代謝相關(guān)的基因,以期揭示CAPE調(diào)節(jié)脂代謝的潛在機(jī)理,為改善由高脂膳食引起的脂代謝紊亂提供理論參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    CAPE、油酸、油紅O 上海阿拉丁生化科技股份有限公司;MEM(minimum essential medium)培養(yǎng)基、HepG2細(xì)胞 武漢普諾賽生命科技有限公司;TRIzol試劑南京諾唯贊生物科技股份有限公司;CCK-8細(xì)胞活力試劑盒、TG試劑盒、總膽固醇(total cholesterol,T-CHO)試劑盒、總蛋白定量試劑盒(BCA法) 南京建成生物工程研究所。

    1.2 儀器與設(shè)備

    超凈工作臺(tái)、CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱、Sorvall? ST 8小型臺(tái)式離心機(jī) 美國賽默飛世爾科技有限公司;CKX53倒置顯微鏡 日本Olympus公司;SpectraMax iD3多功能酶標(biāo)儀 北京眾力挽生物科技有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 細(xì)胞處理

    將復(fù)蘇后的HepG2細(xì)胞培養(yǎng)至細(xì)胞密度達(dá)80%~90%,進(jìn)行傳代培養(yǎng)。HepG2細(xì)胞培養(yǎng)在10%(質(zhì)量分?jǐn)?shù),下同)胎牛血清混合1%青霉素-鏈霉素試液的MEM完全培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中,常規(guī)換液、傳代,當(dāng)細(xì)胞處于對(duì)數(shù)生長期時(shí)取出進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。參考文獻(xiàn)[17]的結(jié)果,使用0.2 mmol/L的油酸誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞形成高脂肪模型的效果最佳,因此將細(xì)胞分為正常組(NCD)、高脂肪組(HFD)、高脂肪+處理組(包括HFD+7.5 μmol/L CAPE(CAPE7.5)、HFD+5 μmol/L CAPE(CAPE5)、HFD+2.5 μmol/L CAPE(CAPE2.5)、HFD+2 μmol/L CAPE(CAPE2)、HFD+1 μmol/L CAPE(CAPE1)),每組設(shè)置6 個(gè)平行對(duì)照,對(duì)處理后的細(xì)胞進(jìn)行染色觀察,在冰水浴條件下超聲破碎細(xì)胞(300 W超聲3~5 s/次,間隔20 s)后進(jìn)行理化指標(biāo)檢測,選出降脂效果最優(yōu)組別進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組水平分析。

    1.3.2 指標(biāo)檢測

    1.3.2.1 CCK-8細(xì)胞活力檢測

    細(xì)胞按照正常組(NCD)、高脂肪組(HFD)、高脂肪+處理組(包括HFD+10 μmol/L CAPE、HFD+7.5 μmol/L CAPE、HFD+5 μmol/L CAPE、HFD+2.5 μmol/L CAPE、HFD+2 μmol/L CAPE、HFD+1 μmol/L CAPE)分組,使用CCK-8試劑盒檢測各處理組細(xì)胞活力。

    1.3.2.2 油紅O染色觀察及吸光度測定

    正常組、高脂組及高脂肪+處理組細(xì)胞棄掉舊培養(yǎng)液并用磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)潤洗2 次后,加入200 μL質(zhì)量分?jǐn)?shù)4%多聚甲醛溶液,將孔板轉(zhuǎn)移到4 ℃冰箱內(nèi)固定20 min,棄廢液,用PBS潤洗2 次,24 孔板中每孔加入200 μL 油紅O染色10 min。待染色觀察樣品采用60%(體積分?jǐn)?shù),下同)異丙醇或70%乙醇溶液快速潤洗,吸去廢液,每孔加入1 mL PBS后在顯微鏡下觀察拍照;待測吸光度樣品使用60%異丙醇或70%乙醇溶液[18]萃取油紅O,室溫放置20 min,將萃取出的染液以500 μL/孔轉(zhuǎn)移至24 孔培養(yǎng)板中,測定其在490 nm波長處吸光度[19]。

    1.3.2.3 細(xì)胞內(nèi)TG和T-CHO水平測定

    分別收集各處理組細(xì)胞并制備成勻漿液。參照相應(yīng)試劑盒說明書,測定各組HepG2細(xì)胞內(nèi)的TG、T-CHO水平,并通過定量細(xì)胞中的蛋白進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化處理。

    1.3.2.4 計(jì)算機(jī)預(yù)測靶點(diǎn)

    通過S w i s s T a r g e t P r e d i c t i o n(h t t p://swisstargetprediction.ch/)數(shù)據(jù)庫[20]檢索CAPE的作用靶蛋白及對(duì)應(yīng)基因,通過GeneCards(https://www.genecards.org/)數(shù)據(jù)庫[21]檢索脂代謝相關(guān)靶點(diǎn)基因,將結(jié)果導(dǎo)入STRING(https://string-db.org/)數(shù)據(jù)庫構(gòu)建共有靶點(diǎn)基因的蛋白相互作用關(guān)系網(wǎng)絡(luò)[22]。使用DAVID(https://david.ncifcrf.gov)數(shù)據(jù)庫[23]對(duì)共有的靶點(diǎn)基因進(jìn)行京都基因與基因組百科全書(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes,KEGG)通路富集分析。以核心靶點(diǎn)基因編碼蛋白為受體、CAPE為配體,采用AutoDock4軟件進(jìn)行分子對(duì)接,模擬CAPE調(diào)節(jié)脂代謝靶點(diǎn)。

    1.3.2.5 細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組樣本處理及轉(zhuǎn)錄組測序分析

    根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,對(duì)調(diào)節(jié)脂代謝指標(biāo)效果較顯著的HFD+2.5 μmol/L CAPE組進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組水平分析。取對(duì)數(shù)生長期[24]的HepG2細(xì)胞,以5×105個(gè)/孔接種于6 孔細(xì)胞板中,每個(gè)條件設(shè)置3 組平行,即HFD-1、HFD-2、HFD-3(HFD組)和CAPE-1、CAPE-2、CAPE-3(HFD+2.5 μmol/L CAPE組)。待細(xì)胞密度達(dá)到80%左右[25],加入0.2 mmol/L油酸將細(xì)胞誘導(dǎo)成高脂肪模型。培養(yǎng)24 h后,處理組棄去舊液,加入0.2 mmol/L油酸+2.5 μmol/L CAPE混合培養(yǎng)液。孵育24 h后,用移液槍吸去孔板中的細(xì)胞培養(yǎng)基,每孔加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.25%胰酶1 mL,消化細(xì)胞3~5 min,吸取MEM完全培養(yǎng)基5 mL終止細(xì)胞消化,收集細(xì)胞后轉(zhuǎn)入10 mL離心管中,4 ℃、200×g離心5 min,棄上清液,再加入3 mL PBS重懸,重復(fù)離心步驟,細(xì)胞沉淀中加入5×106個(gè)/mL TRIzol試劑[26],吹打混勻,1 mL/管分裝入1.5 mL RNase-free離心管中,液氮速凍0.5 h,包埋在干冰中送樣。細(xì)胞樣品RNA質(zhì)量檢測及轉(zhuǎn)錄組分析由上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司完成。轉(zhuǎn)錄組測序步驟:利用Illumina測序平臺(tái)對(duì)基因序列進(jìn)行高通量轉(zhuǎn)錄組測序;通過Fastp軟件對(duì)原始測序序列5’→3’的堿基質(zhì)量及測序數(shù)據(jù)中A、T、G、C堿基含量進(jìn)行評(píng)估,將與分析標(biāo)準(zhǔn)不符合的讀數(shù)(reads)刪除,保留對(duì)后續(xù)分析有幫助的高質(zhì)量讀數(shù)(clean reads)。

    1.3.2.6 差異表達(dá)基因功能注釋及富集分析

    通過Hisat2軟件進(jìn)行基因序列比對(duì)分析,綜合蛋白質(zhì)直系同源簇(clusters of orthologous groups of proteins,COG)、非冗余蛋白庫(non-redundant protein sequence database,NR)、基因本體(gene ontology,GO)、KEGG、蛋白質(zhì)序列數(shù)據(jù)庫(Swiss-Prot protein sequence database,Swiss-Prot)、蛋白質(zhì)家族數(shù)據(jù)庫(protein families database,Pfam)對(duì)所表達(dá)的基因進(jìn)行注釋;利用DESeq2、DEGseq和edgeR軟件進(jìn)行基因表達(dá)量差異分析。差異表達(dá)基因(differentially expressed genes,DEGs)篩選標(biāo)準(zhǔn):|log2FC|≥1(FC:實(shí)驗(yàn)組基因表達(dá)量/對(duì)照組基因表達(dá)量)且P≤0.05。采用美吉生信云分析平臺(tái)(https://cloud.majorbio.com/)對(duì)基因集中的基因/轉(zhuǎn)錄本進(jìn)行KEGG通路富集分析[27],當(dāng)P<0.05時(shí)認(rèn)為該通路富集顯著。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

    采用Origin 2019軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析與處理,并用GraphPad prism6軟件作圖,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,數(shù)據(jù)間比較采用單因素方差分析(ANOVA),以P<0.05表示差異顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 CAPE對(duì)油酸誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞脂質(zhì)代謝的影響

    根據(jù)文獻(xiàn)[28-29]報(bào)道,CAPE在高于20 μmol/L時(shí)具有一定細(xì)胞毒性,CCK-8細(xì)胞活力檢測結(jié)果顯示,10 μmol/L CAPE顯著降低細(xì)胞活力,而CAPE濃度為7.5、5、2.5、2、1 μmol/L時(shí),HepG2細(xì)胞的活力均保持在98%以上,因此,確定調(diào)節(jié)脂代謝的CAPE濃度為1~7.5 μmol/L。采用油紅O染色觀察各組細(xì)胞脂滴積累情況,并于490 nm波長處測定其吸光度。和NCD組相比,HFD組油紅O染色效果變化顯著(圖1),說明油酸誘導(dǎo)高脂肪模型建模成功。根據(jù)染色效果及吸光度結(jié)果分析,在CAPE濃度為2.5 μmol/L時(shí),其對(duì)脂質(zhì)積累的抑制效果最為顯著。對(duì)改善脂肪積累效果最佳的處理組和高脂肪組(即2.5 μmol/L CAPE組和HFD組)進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組分析,并對(duì)2 組細(xì)胞進(jìn)行油紅O染色以確定處理效果,結(jié)果如圖2A、B所示。和HFD組相比,CAPE 2.5組細(xì)胞脂肪積累水平顯著降低。進(jìn)一步測定破碎細(xì)胞中TG及T-CHO水平,經(jīng)過蛋白校準(zhǔn)后的細(xì)胞TG和T-CHO水平變化如圖2C、D所示。與HFD組對(duì)比,CAPE 2.5組細(xì)胞中TG水平有明顯的下降趨勢,但CAPE處理對(duì)于膽固醇代謝調(diào)節(jié)效果不顯著,這進(jìn)一步證明CAPE干預(yù)具有明顯緩解高脂細(xì)胞模型中脂滴積累的效果。

    圖1 經(jīng)CAPE處理的HepG2細(xì)胞染色觀察及吸光度Fig.1 Observation and absorbance of stained HepG2 cells treated with CAPE

    圖2 經(jīng)2.5 μmol/L CAPE處理HepG2細(xì)胞的染色及指標(biāo)檢測Fig.2 Observation and characterization of stained HepG2 cells treated with 2.5 μmol/L CAPE

    2.2 經(jīng)CAPE處理的HepG2細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序及DEGs分析

    對(duì)CAPE處理的HepG2細(xì)胞與高脂肪組細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測序及DEGs分析,CAPE組和HFD組經(jīng)過過濾后的序列數(shù)量(即clean reads數(shù)目)分別有47 575 973 條和47 867 835 條,所占比例分別為96.07%和96.03%,根據(jù)經(jīng)CAPE處理的HepG2細(xì)胞中基因表達(dá)的變化情況,共篩選出3 270 個(gè)DEGs。其中,表達(dá)上調(diào)的DEGs有1 351 個(gè),表達(dá)下調(diào)的DEGs有1 919 個(gè),DEGs表達(dá)模式聚類見圖3。

    圖3 DEGs表達(dá)模式聚類Fig.3 Clustering analysis of DEGs expression pattern

    2.3 經(jīng)CAPE處理的HepG2細(xì)胞DEGs KEGG通路功能注釋及富集分析

    為進(jìn)一步明確DEGs的功能,對(duì)HFD組及CAPE組之間的DEGs進(jìn)行KEGG功能注釋分析。如圖4所示,DEGs分別注釋到代謝、遺傳信息的處理、環(huán)境信息處理、細(xì)胞過程、有機(jī)系統(tǒng)和人類疾病中。經(jīng)CAPE處理的HepG2高脂肪模型細(xì)胞的DEGs在脂代謝上有相關(guān)注釋,說明脂代謝相關(guān)基因在CAPE的影響下產(chǎn)生差異性表達(dá)。

    圖4 KEGG通路功能注釋分析Fig.4 Functional annotation analysis of KEGG pathways

    前15 條顯著富集的KEGG通路如表1所示,表中比例表示相應(yīng)KEGG通路在目標(biāo)基因集中所占比例,分子為基因集中富集到該KEGG通路的基因或轉(zhuǎn)錄本數(shù)目,分母為該基因集中具有KEGG注釋的基因或轉(zhuǎn)錄本總數(shù)目,將P<0.05定義為該功能顯著富集,可以發(fā)現(xiàn)顯著富集的通路主要集中在代謝和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)上。對(duì)DEGs進(jìn)行KEGG通路富集分析,發(fā)現(xiàn)DEGs主要參與果糖和甘露糖代謝(fructose and mannose metabolism)、糖酵解/糖異生(glycolysis/gluconeogenesis)、HIF-1信號(hào)通路(HIF-1 signaling pathway)、脂肪酸降解(fatty acid degradation)等。進(jìn)一步分析KEGG通路中與脂質(zhì)代謝和氧化應(yīng)激相關(guān)的主要富集信號(hào)通路基因轉(zhuǎn)錄水平發(fā)現(xiàn),在HIF-1α信號(hào)通路上DEGs顯著富集,推測CAPE通過HIF-1α通路改善高脂誘導(dǎo)的HepG2細(xì)胞氧化應(yīng)激,從而改善脂代謝紊亂和氧化應(yīng)激壓力;另外,多個(gè)脂肪酸降解通路相關(guān)關(guān)鍵基因表達(dá)量差異顯著,脂肪酸代謝上游調(diào)控基因PPARα表達(dá)也發(fā)生上調(diào),而PPARα信號(hào)通路與脂肪酸分解代謝[30-31]關(guān)系密切。與GeneCards數(shù)據(jù)庫(https://www.genecards.org/)[21]靶點(diǎn)預(yù)測結(jié)果一致,CAPE對(duì)肝臟細(xì)胞具有多個(gè)作用靶點(diǎn),其通過與靶點(diǎn)的相互作用調(diào)節(jié)脂代謝相關(guān)的多個(gè)代謝通路。Sun Lulu等[14]所進(jìn)行的小鼠實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,CAPE能夠調(diào)節(jié)不同組織脂代謝的多個(gè)信號(hào)通路以及脂肪合成的一系列關(guān)鍵基因的表達(dá),改善高脂膳食小鼠脂代謝紊亂,說明CAPE對(duì)脂代謝調(diào)節(jié)具有多靶點(diǎn)作用。

    2.4 CAPE調(diào)節(jié)HepG2細(xì)胞HIF-1α通路改善氧化應(yīng)激

    轉(zhuǎn)錄組DEGs分析顯示,CAPE處理能上調(diào)高脂誘導(dǎo)細(xì)胞的HIF-1α基因轉(zhuǎn)錄表達(dá)水平(提高了0.326 倍),并且顯著調(diào)節(jié)HIF-1α下游厭氧呼吸等通路基因PDK1、HK1、PFKP、PFKFB3、LDHA、ALDOC、ENO1、PGK1、EGLN3的表達(dá)(表2),表明CAPE處理能調(diào)節(jié)HIF-1α通路。另外,CAPE組細(xì)胞RTK、MEK、elf4E相關(guān)基因表達(dá)相較于高脂肪組分別上升了1.5、1.37、1.2 倍,且4E-BP1表達(dá)量下降了42%,表明CAPE可能通過MEK-ERK-4E-BP1-elf4E通路上調(diào)HIF-1α的表達(dá)(圖5)。計(jì)算機(jī)輔助預(yù)測發(fā)現(xiàn),mTOR和MAPK相關(guān)的蛋白激酶為CAPE的潛在作用靶點(diǎn),表明CAPE分子能通過與潛在靶點(diǎn)相互作用,影響HIF-1α蛋白翻譯表達(dá)。進(jìn)一步分析顯示,CAPE組中參與HIF-1α泛素化降解通路的基因PHD表達(dá)量降低,表明CAPE處理能抑制泛素化介導(dǎo)的HIF-1α蛋白降解,提高HIF-1α蛋白積累水平。因此,CAPE處理能調(diào)節(jié)HIF-1α的翻譯和泛素化降解,促進(jìn)機(jī)體無氧呼吸的進(jìn)程,緩解高脂處理細(xì)胞的氧化應(yīng)激壓力。氧化應(yīng)激在脂代謝紊亂及相關(guān)疾病中的重要作用備受矚目[32]。研究表明,機(jī)體氧化應(yīng)激的增加常伴隨脂質(zhì)的異常堆積加劇以及脂質(zhì)從頭合成的顯著改變[33]。另外,活性氧和炎癥誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激能夠?qū)е轮|(zhì)過氧化、線粒體和過氧化物酶體的脂肪酸氧化功能損傷,并促進(jìn)細(xì)胞因子釋放,進(jìn)一步加劇炎癥和肝細(xì)胞纖維化,這是酒精性脂肪肝和其他肝臟疾病的主要發(fā)展機(jī)制[34]。

    表2 HIF-1α通路DEGs表達(dá)Table 2 Expression of DEGs associated with HIF-1α signaling pathway

    圖5 CAPE調(diào)節(jié)HIF-1α通路的潛在機(jī)制分析Fig.5 Analysis of the underlying mechanism of CAPE regulation of HIF-1α signaling pathway

    2.5 CAPE調(diào)節(jié)HepG2細(xì)胞脂肪酸分解代謝通路

    經(jīng)KEGG信號(hào)通路基因差異表達(dá)分析發(fā)現(xiàn),CAPE能改善高脂HepG2細(xì)胞的脂肪酸分解代謝和PPARα信號(hào)通路相關(guān)多個(gè)基因的表達(dá)(表3)。PPARα通路參與調(diào)節(jié)脂肪酸轉(zhuǎn)運(yùn)、脂肪酸氧化[35]、脂肪酸降解及膽固醇代謝等重要脂代謝通路。如圖6所示,相較于高脂肪組,CAPE組細(xì)胞PPARα下游與脂肪酸氧化代謝相關(guān)的蛋白表達(dá)量明顯上升,如肉堿棕櫚酰轉(zhuǎn)移酶I(carnitine palmotoyltransferase I,CPT1)和肉堿棕櫚酰轉(zhuǎn)移酶II(carnitine palmotoyltransferase II,CPT2),其中調(diào)控CPT1、CPT2、PPARα表達(dá)的CPT1A、CPT2、PPARα基因分別上調(diào)了1.039、0.755、0.661 倍,調(diào)控脂肪酸結(jié)合蛋白5表達(dá)的FABP5基因上調(diào)了1.598 倍,表明CAPE處理促進(jìn)了細(xì)胞內(nèi)脂肪酸的活化進(jìn)程。另外,CAPE組高脂誘導(dǎo)細(xì)胞脂肪酸β氧化進(jìn)程相關(guān)酶基因表達(dá)上調(diào),在脂肪酸β氧化的氧化、水合、脫氫、硫解[36]4 個(gè)過程中,調(diào)控?;o酶A脫氫酶(acyl-coenzyme A dehydrogenase,ACADM)合成的基因ACADM表達(dá)量上升了0.38 倍,編碼長鏈酰基輔酶A脫氫酶(acyl coenzyme a dehydrogenase very long chain,ACADVL)合成的基因ACADVL表達(dá)量上升了0.39 倍;調(diào)控烯醇輔酶A水合酶S1(enoylcoenzyme A hydratase S1,ECHS1)和烯酰輔酶A 水合酶(hydroxyacyl-coenzyme A dehydrogenase,HADHA)合成的基因ECHS1及HADHA表達(dá)量分別升高了0.2 倍和0.31 倍;調(diào)控L-β-羥脂酰CoA脫氫酶(hydroxyacylcoenzyme A dehydrogenase,HADH)合成基因HADH表達(dá)量提高了1.42 倍;編碼脂酰CoA硫解酶(cetyl-coenzyme A acyltransferase,ACAA)合成的基因ACAA1和ACAA2表達(dá)量分別沒有變化和提高了0.47 倍,促進(jìn)了長鏈脂肪酸的氧化分解。由此可知,CAPE處理可能通過PPARα通路和脂肪酸β氧化通路改善高脂誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞內(nèi)的脂代謝。

    表3 PPARα通路DEGs表達(dá)Table 3 Expression of DEGs associated with PPARα signaling pathway

    圖6 CAPE調(diào)節(jié)脂肪酸分解的潛在通路分析Fig.6 Analysis of the underlying pathways of CAPE regulation of fatty acid breakdown

    對(duì)CAPE調(diào)節(jié)脂代謝作用具體機(jī)制的研究表明,可能存在多種作用靶點(diǎn)和調(diào)節(jié)通路以及組織和細(xì)胞特異性[37]。遲樂[15]對(duì)3T3-L1脂肪細(xì)胞研究發(fā)現(xiàn),CAPE通過調(diào)節(jié)PPAR-γ、CEBPα和TGF-β信號(hào)通路影響脂肪合成,抑制脂質(zhì)合成相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子和下游相關(guān)因子的表達(dá),發(fā)揮抗肥胖的作用。Nie Jiarui等[16]研究發(fā)現(xiàn),CAPE可通過抑制糖尿病小鼠和HepG2細(xì)胞模型的JNK和NF-κB炎癥信號(hào)通路改善胰島素抵抗和糖脂代謝。最近有研究表明,CAPE能顯著抑制小鼠腸道菌群膽鹽水解酶(bile salt hydrolase,BSH)活性,提高膽汁酸中牛磺β-鼠膽酸含量,從而選擇性抑制膽汁酸法尼醇X受體(farnesoid X receptor,F(xiàn)XR),抑制高脂膳食引起的神經(jīng)酰胺含量升高和脂肪生成,同時(shí)改善胰高血糖素樣肽-1(glucagonlike peptide-1,GLP-1)分泌,改善小鼠NAFLD[38]。另外,金銘等[39]利用25-羥固醇(25-hydroxycholesterol,25-OHC)通過14-3-3η信號(hào)蛋白研究蛋白組磷酸化修飾作用誘導(dǎo)肝臟上皮L02細(xì)胞的脂代謝紊亂,發(fā)現(xiàn)CAPE可通過泛素化依賴途徑促進(jìn)14-3-3η信號(hào)蛋白降解,進(jìn)而逆轉(zhuǎn)25-OHC誘導(dǎo)的肝臟細(xì)胞脂代謝紊亂。有別于小鼠實(shí)驗(yàn)以及脂肪細(xì)胞體外實(shí)驗(yàn)研究,本研究采用HepG2細(xì)胞體外實(shí)驗(yàn)和轉(zhuǎn)錄組測序高通量篩選方法,進(jìn)一步分析CAPE對(duì)脂肪酸誘導(dǎo)的高脂肪模型細(xì)胞的直接作用靶點(diǎn)。研究發(fā)現(xiàn),CAPE對(duì)肝細(xì)胞同樣具有多重靶點(diǎn),與脂代謝相關(guān)的作用通路包括調(diào)節(jié)HIF-1α通路(緩解高脂細(xì)胞氧化應(yīng)激)和脂肪酸分解代謝通路。CAPE通過調(diào)節(jié)HIF-1α的翻譯和泛素化降解,促進(jìn)機(jī)體無氧呼吸的進(jìn)程,緩解高脂處理細(xì)胞的氧化應(yīng)激壓力,改善細(xì)胞代謝微環(huán)境和脂代謝紊亂;CAPE處理可能通過調(diào)節(jié)PPARα通路和脂肪酸β氧化通路多個(gè)關(guān)鍵基因表達(dá)從而改善高脂誘導(dǎo)HepG2細(xì)胞內(nèi)的脂代謝。

    3 結(jié) 論

    CAPE對(duì)細(xì)胞脂代謝的改善機(jī)制和關(guān)鍵靶基因的研究并不完善,本研究結(jié)果顯示,CAPE可以顯著影響油酸誘導(dǎo)的HepG2高脂肪模型細(xì)胞的基因表達(dá)譜,表明CAPE調(diào)節(jié)脂代謝的靶點(diǎn)具有多重性。KEGG信號(hào)通路富集分析結(jié)果表明,CAPE的主要調(diào)節(jié)通路包括HIF-1α通路和脂肪酸降解通路,CAPE處理促進(jìn)高脂細(xì)胞模型中HIF-1α的表達(dá),并抑制了HIF-1α蛋白的泛素化降解,通過對(duì)下游調(diào)節(jié)基因表達(dá)的調(diào)控,緩解肝細(xì)胞內(nèi)的氧化應(yīng)激并改善細(xì)胞微環(huán)境。此外,受CAPE影響的高脂細(xì)胞模型PPARα通路被激活,與脂肪酸轉(zhuǎn)運(yùn)和氧化代謝相關(guān)的CPT1、CPT2等蛋白表達(dá)量升高,表明CAPE也可通過PPARα通路調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)脂肪酸氧化分解,改善脂代謝。本研究為CAPE調(diào)節(jié)脂代謝的分子機(jī)制研究提供了一定的理論依據(jù),為膳食干預(yù)高脂膳食引起的脂代謝紊亂提供參考。

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