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    高效液相色譜-串聯(lián)質譜法測定牛乳中麥草畏殘留

    2023-09-11 03:17:42張立佳劉麗君白艷梅高玉杰李翠枝
    乳業(yè)科學與技術 2023年3期
    關鍵詞:麥草牛乳甲酸

    張立佳,劉麗君,白艷梅,汪 洋,莫 楠,高玉杰,李翠枝*

    (內蒙古伊利實業(yè)集團股份有限公司,內蒙古 呼和浩特 010110)

    麥草畏屬于苯氧羧酸類除草劑,價格低廉,除草效果顯著,適用范圍廣,因此在農業(yè)生產中被大量使用,但是長期不規(guī)范使用該農藥會對土壤和水體造成污染[1-2]。麥草畏在低劑量時顯示出與植物生長素類相似的效果,但是在高濃度下會刺激分生細胞中的異常細胞生長[3-4]。人體攝入高劑量的麥草畏會導致血管組織阻塞,嚴重時可引起人類軟組織的惡性腫瘤、干擾內分泌系統(tǒng)、肝腎損傷、遲發(fā)性神經(jīng)病變等[5-6]。奶牛長期飼用殘留麥草畏的飼料,會導致牛乳中蓄積該農藥,對食品安全造成較大的風險隱患。GB 2763—2021《食品安全國家標準 食品中農藥最大殘留限量》[7]規(guī)定了生乳中麥草畏的臨時限量為0.2 mg/kg。隨著人們的生活水平不斷提高,牛乳的需求量也日益增加,人們也更加關注麥草畏等農藥殘留帶來的危害,因此構建牛乳中麥草畏快速、高效的檢測方法迫在眉睫。

    麥草畏的檢測方法主要集中在谷物[8-12]、蔬菜[13-16]、煙草[17-18]等植物源基質,而牛乳中麥草畏的檢測方法較少。但由于牛乳中含有大量蛋白質、脂肪、磷脂等成分,基質較復雜,已報道的植物源基質檢測方法并不適合牛乳中麥草畏檢測,同時植物源基質檢測方法也存在諸多問題。由于麥草畏極性較強且不易汽化,氣相色譜-串聯(lián)質譜(gas chromatography-tandem mass spectrometry,GC-MS/MS)和GC檢測時需要經(jīng)過衍生化處理,過程復雜且耗時較長[8-11];采用高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)測定時雖然不需要衍生化處理,且在常溫下能夠進行分離分析,但是靈敏度較低,且通常需采用液-液萃取、固相萃取等前處理技術再結合紫外檢測器進行分析,所需試劑量較大,操作步驟繁多[15-16];LC-MS/MS在LC的優(yōu)勢基礎上,兼具串聯(lián)質譜的高選擇性、高靈敏度和準確性等諸多優(yōu)點,已成為目前檢測農藥殘留的主流方法[17-21]。本研究通過優(yōu)化前處理方法和色譜條件,建立HPLC-MS/MS法測定牛乳中麥草畏的檢測方法。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    牛乳 市售;生鮮乳 呼和浩特地區(qū)牧場。

    麥草畏標準品(純度≥97.0%)、乙腈、甲酸(均為色譜純)、0.22 μm聚四氟乙烯針式濾器 上海安譜實驗科技股份有限公司;氯化鈉(優(yōu)級純) 天津市富宇商貿有限公司。

    1.2 儀器與設備

    AB SCIEX 6500+HPLC-MS/MS儀(配備電噴霧電離(elaectrospray ionization,ESI)源) 美國AB Sciex公司;ACQITY UPLC BEH C18柱(100 mm×2.1 mm,1.7 μm) 美國Waters公司;ST16R高速冷凍離心機美國Thermo Fisher公司;S25旋渦振蕩器 德國IKA公司;TurboVap氮吹儀 瑞典Biotage公司;ME2002E分析天平 瑞士梅特勒-托利多公司;Millipore Q純水機美國Millipore公司。

    1.3 方法

    1.3.1 標準溶液的配制

    麥草畏儲備液(500 μg/mL):準確稱取12.5 mg麥草畏標準品(精確至0.01 mg)于25 mL棕色容量瓶中,乙腈溶解并定容至刻度,0~4 ℃避光保存,有效期為3 個月。

    標準中間溶液Ⅰ(10 μg/mL):準確吸取1 mL儲備溶液于50 mL棕色容量瓶中,用乙腈稀釋至刻度,配制質量濃度為10 μg/mL的標準中間溶液Ⅰ,0~4 ℃避光保存,有效期為1 個月。

    標準中間溶液Ⅱ(1 μg/mL):準確吸取1 mL標準中間溶液Ⅰ于10 mL棕色容量瓶中,用乙腈稀釋至刻度,配制質量濃度為1 μg/mL的標準中間溶液Ⅱ,現(xiàn)用現(xiàn)配。

    1.3.2 樣品前處理

    稱取2 g牛乳于30 mL離心管中,加入10 mL體積分數(shù)0.5%甲酸乙腈溶液,渦旋振蕩提取10 min后,加入氯化鈉2.0 g,再次渦旋振蕩10 min,在4 ℃下以15 000 r/min離心10 min。準確移取5 mL上清液于12 mL玻璃氮吹管中,在40 ℃下氮氣濃縮至近干,加入1 mL體積分數(shù)80%乙腈水溶液,渦旋復溶2 min,復溶液通過0.22 μm微孔濾膜過濾,用于儀器分析測定。

    1.3.3 儀器條件

    1.3.3.1 色譜條件

    ACQITY UPLC BEH C18柱(100 mm×2.1 mm,1.7 μm);柱溫:40 ℃;進樣量:5 μL;流動相:A:0.01%甲酸溶液;B:乙腈;梯度洗脫程序見表1。

    表1 梯度洗脫條件Table 1 Gradient elution

    1.3.3.2 質譜條件

    ESI負離子模式(ESI-);離子源電壓:-4 500 V;離子源溫度:450 ℃;氣簾氣(N2)壓力:40 MPa;霧化氣(N2)壓力:50 MPa;輔助加熱氣(N2)壓力:50 MPa;掃描方式:多反應監(jiān)測模式(multiple reaction monitoring,MRM)。具體質譜參數(shù)見表2。

    1.3.4 結果計算

    試樣中麥草畏的殘留量按式(1)計算。

    式中:X為試樣中被測物殘留量/(mg/kg);ρ為試樣上機溶液中被測物殘留量/(ng/mL);V為樣液最終定容體積/mL;f為稀釋倍數(shù);m為試樣質量/g;1 000為換算系數(shù)。

    1.3.5 基質效應(matrix effect,ME)

    選擇陰性牛乳樣品,按照1.3.2節(jié)方法處理后得到空白基質溶液。依次準確加入一定體積的標準品溶液,以空白基質溶液逐級稀釋后得到質量濃度分別為5、10、20、50、100、250 ng/mL的系列標準工作溶液,現(xiàn)用現(xiàn)配。根據(jù)儀器響應和檢測需要,濃度由低到高進行檢測,以峰面積為縱坐標,質量濃度為橫坐標,繪制基質匹配標準曲線。ME按式(2)計算。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    利用QTRAP 6500 HPLC-MS/MS Analyst工作站軟件對譜圖數(shù)據(jù)進行處理,Excel軟件對實驗數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析,Origin 2022軟件進行繪圖。

    2 結果與分析

    2.1 質譜條件的優(yōu)化

    對麥草畏標準品的質譜條件進行優(yōu)化。首先,采用注射方式進樣,對母離子進行掃描,獲取目標物的母離子,然后通過子離子掃描獲取其碎片離子,將母離子和2 個響應信號較強的碎片離子組成檢測離子對,以MRM掃描方式優(yōu)化去簇電壓和碰撞能量。結果表明,在ESI-電離模式下,[M-H]-峰(m/z218.8)響應值較高,這是因為麥草畏苯環(huán)上有羧基,容易電離掉氫離子,同時苯環(huán)上含有氯原子,其同位素峰響應值也較高[22-24]。確定母離子后,分別對母離子m/z218.8和m/z220.9進行子離子掃描,確定特征碎片離子,響應值較高的碎片離子分別為m/z174.9(對應母離子為m/z218.8)和m/z176.9(對應母離子為m/z220.9),其他碎片響應值較小。因此,選取響應值較高的218.8/174.9和220.9/176.9作為定量定性監(jiān)測離子對,完全滿足歐盟2002/657/EC指令[25-26]。

    2.2 色譜條件的優(yōu)化

    2.2.1 液相條件的選擇

    目前已報道的檢測麥草畏的方法中,大部分流動相含有無機鹽類,如甲酸銨和乙酸銨等[3,27]。由于無機鹽不易揮發(fā),對儀器和色譜柱污染較大,長期使用會降低儀器的靈敏度。因此,本方法以乙腈-水作為流動相體系,同時考察水中甲酸含量的變化(0、0.005%、0.010%、0.050%、0.100%)對麥草畏的儀器響應和色譜峰的影響。由圖1可知:當水相不含甲酸時,色譜峰出現(xiàn)分叉,保留能力較差(圖1A);當水中加入0.005%甲酸時,麥草畏的峰形得到改善,但是存在拖尾等基質干擾(圖1B);當甲酸含量達到0.010%時,麥草畏的色譜峰最佳(圖1C),繼續(xù)增加甲酸的含量,峰形沒有明顯變化,但是響應逐漸降低(圖1D、1E),因為麥草畏的電離模式為負離子模式,過高的甲酸含量會抑制麥草畏的離子化效率,導致響應降低。因此,最終選擇0.010%甲酸溶液-乙腈為流動相。同時優(yōu)化梯度洗脫的起始比例,進一步增強了麥草畏的響應,改善了目標化合物的分離效果。當流動相A、B的初始體積比為95∶5時,化合物的響應強度較高,能與相鄰目標峰實現(xiàn)有效分離。

    圖1 麥草畏在不同甲酸比例流動相條件下的色譜圖Fig.1 Chromatograms of dicamba with mobile phases containing different concentrations of formic acid

    2.2.2 色譜柱的選擇

    考察麥草畏在Waters Anionic Polar Pesticide色譜柱(100 mm×2.1 mm,5 μm)、Phenomenex Kinetex Bphenyl色譜柱(100 mm×3.0 mm,2.6 μm)和Waters ACQITY UPLC BEH C18色譜柱(100 mm×2.1 mm,1.7 μm)上的色譜行為。結果表明,由于麥草畏極性較大,Waters Anionic Polar Pesticide色譜柱、Phenomenex Kinetex Bphenyl色譜柱對麥草畏具有一定的保留能力,但色譜峰峰形分叉、存在干擾峰、本底基線高、色譜峰拖尾、出峰時間不穩(wěn)定等異?,F(xiàn)象(圖2A、2B),需要加入甲酸銨等鹽類改善峰形,對色譜柱本身和儀器污染較大,嚴重影響靈敏度和使用壽命,不利于長時間進樣分析。相比而言,麥草畏在Waters ACQITY UPLC BEH C18色譜柱上響應強度較高,出峰時間穩(wěn)定(圖2C)。因此,本方法最終選擇Waters ACQITY UPLC BEH C18色譜柱進行分析檢測。

    圖2 麥草畏在不同色譜柱條件下的色譜圖Fig.2 Chromatograms of dicamba on different columns

    2.3 前處理條件優(yōu)化

    2.3.1 提取體系的選擇

    由于麥草畏屬于苯氧羧酸類除草劑,其酸度系數(shù)為1.9,在堿性條件下易離解成鹽而溶于水相中,可在提取液中加入適量的甲酸來抑制麥草畏的離解,從而增強麥草畏向有機相中的分配比例??瞻讟悠分刑砑欲湶菸窐藴势泛?,分別經(jīng)過0%、0.1%、0.3%、0.5%、1.0%、2.0%甲酸-乙腈溶液6 種體系提取,考察麥草畏的回收率,由圖3可知:隨著甲酸含量增加,麥草畏的回收率也逐漸增大,當乙腈中甲酸含量達到0.5%時,回收率達到最大值,這是因為酸化乙腈抑制了麥草畏中羧基被電離成離子,進而提高提取效率,回收率增大;繼續(xù)增加甲酸的含量,麥草畏的回收率沒有明顯變化??紤]到麥草畏為負離子檢測,過高的酸度會抑制化合物的響應,故選擇0.5%甲酸-乙腈溶液作為提取體系。

    圖3 提取試劑中不同甲酸含量對麥草畏回收率的影響Fig.3 Effect of different formic acid contents in the extraction solvent on the recovery of dicamba

    同時,考察前處理中加入不同含量的氯化鈉對麥草畏回收率的影響,由圖4可知:當不加氯化鈉時,水相與有機相分層不明顯,不利于上清液的移取;加入氯化鈉后,兩相分層明顯,隨著氯化鈉含量的增加,麥草畏的回收率逐漸增大,當氯化鈉含量達到2.0 g時,回收率最高達到99.2%,當氯化鈉含量繼續(xù)增加到2.5 g和3.0 g,回收率略有下降,因此氯化鈉最佳使用量為2.0 g。最后,考察低溫冷凍離心條件對樣品的影響,當樣品在4 ℃、15 000 r/min條件下低溫高速離心10 min,使溶液中的脂肪凝結在液體表面,蛋白沉淀至液體底部,有效去除脂肪、蛋白等雜質,凈化效果較好。

    圖4 氯化鈉含量對麥草畏回收率的影響Fig.4 Effect of sodium chloride content on the recovery of dicamba

    2.3.2 復溶溶劑的選擇

    為了減小溶劑效應對結果的影響,本研究考察不同體積分數(shù)的乙腈溶液(乙腈、水體積比:0∶100、5∶95、10∶90、20∶80、50∶50、80∶20、100∶0)作為復溶溶劑時麥草畏的回收率變化趨勢,由圖5可知:不同體積分數(shù)乙腈溶液對麥草畏回收率的影響顯著,當選擇水溶解樣品時,麥草畏的回收率低于20%,隨著乙腈體積分數(shù)的增加,麥草畏的回收率逐漸變大;當乙腈體積分數(shù)達到80%時,麥草畏的回收率達到95%以上;繼續(xù)增加乙腈體積分數(shù),麥草畏的回收率沒有明顯的變化,但是色譜峰出現(xiàn)峰展寬、峰分叉現(xiàn)象,這可能因為強溶劑溶解樣品時,樣品溶劑與流動相溶劑的強度相差較大,有些樣品分子溶解在強溶劑中,并隨強溶劑流過柱子,而有些則溶解在流動相中,從而導致峰分叉、峰展寬。因此,選擇體積分數(shù)80%乙腈溶液作為復溶溶劑。

    圖5 不同復溶溶劑對麥草畏回收率的影響Fig.5 Effects of different redissolving solvents on the recovery of dicamba

    2.4 方法學驗證

    2.4.1 線性范圍、檢出限和定量限

    溶劑校準曲線的建立:依次吸取標準中間溶液Ⅱ(1 μg/mL)5、10、20、50、100、250 μL,經(jīng)體積分數(shù)80%乙腈溶液稀釋至1 000 μL,得到質量濃度分別為5、10、20、50、100、250 ng/mL的系列標準工作溶液。按質量濃度由低到高的順序在最優(yōu)色譜條件下測定,對峰面積(y)和質量濃度(x)進行線性擬合,建立標準曲線。由表3可知,相應的質量濃度范圍內線性關系良好,相關系數(shù)(r)大于0.995,麥草畏在牛乳中的檢出限均為5.0 μg/kg(信噪比≥3),定量限均為10.0 μg/kg(信噪比≥10),滿足GB 2763—2021《食品安全國家標準 食品中農藥最大殘留限量》對生乳中麥草畏的最大殘留限量的規(guī)定。

    表3 線性范圍、相關系數(shù)(r)、檢出限及定量限Table 3 Linear relationship, correlation coefficient (r), LOD and LOQ

    2.4.2 ME

    ME是除了目標物以外的其他物質,如蛋白、磷脂、脂肪、礦物質等對目標物的響應所產生的影響,導致目標物的響應增強或減弱,所產生的效應稱之為基質增強或基質抑制[28-29]。ME為負值表示存在基質抑制效應,為正值表示基質增強,絕對值越大表示ME越強,需要通過基質匹配標準曲線減小ME對結果的影響[19]。結果表明,牛乳中麥草畏的ME為97.2%,ME不明顯,可忽略不計,通過溶劑標準曲線進行外標法定量分析。

    2.4.3 加標回收率和精密度

    為了驗證方法的準確性和重復性,對陰性牛乳樣品分別進行低、中、高(10.0、20.0、200.0 μg/kg)3 個水平且每個水平重復6 次的加標回收實驗。由表4可知,牛乳中麥草畏的平均加標回收率為96.2%~104.3%,相對標準偏差為1.5%~3.0%,說明該方法準確度和重復性較好,符合GB/T 27417—2017《合格評定 化學分析方法確認和驗證指南》[30]對化學方法確認的規(guī)定,滿足牛乳中麥草畏的檢測要求。

    表4 牛乳中麥草畏的加標回收率和精密度(n=6)Table 4 Recovery and precision of dicamba in spiked milk (n = 6)

    2.5 實際樣品測定

    隨機抽取呼和浩特地區(qū)市售生鮮乳30 批,參照本方法對樣品進行檢測,通過配制標準曲線、過程空白和加標回收進行質控,質控數(shù)據(jù)全部符合標準規(guī)定,30 批次均未檢出麥草畏,說明樣品不含有麥草畏。但由于采集樣品量有限,并不反映麥草畏農殘在牛乳中的整體污染情況,需要繼續(xù)監(jiān)測。

    3 結 論

    綜上所述,本方法通過優(yōu)化前處理方法和儀器條件,建立了檢測牛乳中麥草畏的HPLC-MS/MS方法。提取試劑為0.5%酸化乙腈溶液,加入氯化鈉含量為2 g,通過低溫高速冷凍離心,采用體積分數(shù)80%乙腈溶液作為復溶溶劑,結合Acquity UPLC BEH C18色譜柱(100 mm×2.1 mm,1.7 μm)分離,以乙腈-體積分數(shù)0.01%甲酸溶液為流動相進行梯度洗脫分析。采用方法學驗證結論,麥草畏的檢出限和定量限分別為5.0、10.0 μg/kg,在牛乳中的平均回收率為96.2%~104.3%,相對標準偏差為1.5%~3.0%。本方法具有較高的靈敏度和準確性,操作簡單,適合大批量樣品的檢測。

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