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    L-賴氨酸對丙二醛誘導(dǎo)氧化下牦牛肉品質(zhì)特性及氧化程度的影響

    2023-08-13 06:06:08蘆慧勤梅議文謝琦藍王琳琳蔡自建冷坪蔚
    食品工業(yè)科技 2023年16期
    關(guān)鍵詞:牦牛肉肉樣巰基

    蘆慧勤,梅議文,謝琦藍,王琳琳,蔡自建,秦 斐,冷坪蔚

    (西南民族大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,四川成都 610041)

    牦牛常年生活在高原地區(qū),牦牛肉具有高蛋白、低脂肪、氨基酸比例適宜、富含礦物質(zhì)等特點,有較高營養(yǎng)價值,近年來廣受消費者歡迎。但肉在宰后貯藏和加工過程中會不可避免地接觸氧氣,使蛋白和脂質(zhì)發(fā)生氧化,導(dǎo)致肉制品出現(xiàn)顏色變暗、口感和風(fēng)味劣變等不良現(xiàn)象。在肉品這一復(fù)雜體系中,蛋白氧化與脂質(zhì)氧化并不是孤立發(fā)生的,二者往往相互促進相互影響。就實際而言,脂質(zhì)往往比蛋白更快也更易發(fā)生氧化,脂質(zhì)氧化過程中產(chǎn)生的自由基和氧化產(chǎn)物可直接或間接攻擊蛋白,誘導(dǎo)并參與蛋白氧化變性,最終影響蛋白功能特性及產(chǎn)品質(zhì)量[1-2]。

    有研究發(fā)現(xiàn),相較于初級產(chǎn)物,脂質(zhì)的次級產(chǎn)物更易與蛋白反應(yīng)[3]。丙二醛(Malondialdehyde,MDA)是脂肪氧化的一種典型次級產(chǎn)物,是脂肪過氧化反應(yīng)中產(chǎn)生最多的醛類,對蛋白有高度反應(yīng)性[4]。MDA可誘導(dǎo)蛋白氧化,改變蛋白結(jié)構(gòu),對肉品品質(zhì)和安全性造成潛在威脅[5]。因此,如何延緩肌肉中脂肪和蛋白氧化,提高其氧化穩(wěn)定性已成為近年研究的熱點。L-賴氨酸(L-lysine,L-Lys)是一種堿性氨基酸,其作為蛋白質(zhì)基本組成成分,安全無毒,來源廣泛。將其添加到肉制品中可起到嫩化、改善色澤、提高出品率等效果[6]。除此以外,L-Lys 還有一定的抗氧化能力:Hwang 等[7]的研究結(jié)果表明,5.5 mmol/L L-Lys 可顯著抑制大豆油高溫氧化;Zhang 等[8]發(fā)現(xiàn)L-Lys 能夠有效延緩乳化香腸氧化進程;Cao 等[9]發(fā)現(xiàn)L-Lys對肌原纖維蛋白結(jié)構(gòu)氧化損傷具有明顯修復(fù)作用。綜上所述,L-Lys 在肉及肉制品的加工中應(yīng)用前景廣闊,本課題組前期研究也證明,L-Lys 可提高牦牛肉制品色澤、保水性等品質(zhì),但對于L-Lys 在MDA 誘導(dǎo)氧化條件下對牦牛肉品質(zhì)特性和氧化程度的影響情況及其機理尚不明確,因此有必要開展相關(guān)研究。

    本文以牦牛肉背最長肌為研究對象,以MDA 作為誘導(dǎo)劑建立模擬氧化體系,對牦牛肉注射不同濃度的L-Lys 和MDA 混合溶液,通過測定貯藏過程中牦牛肉食用品質(zhì)、脂質(zhì)氧化、蛋白氧化及肌肉組織學(xué)特性等指標(biāo),探究L-Lys 在MDA 誘導(dǎo)氧化條件下對牦牛肉品質(zhì)特性和氧化程度的影響,以明確在氧化脅迫條件下L-Lys 對牦牛肉品質(zhì)的影響作用及潛在機制,以期為保持和提高牦牛肉及肉制品品質(zhì)提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    新鮮牦牛肉背最長肌 選取屠宰場2~4 歲、發(fā)育良好、健康無病的牦牛6 頭,屠宰后2 h 內(nèi)取背最長肌,剔除表面筋膜,切分成塊,每塊約40 g,4 ℃條件下帶回實驗室,采自廣漢向陽江南屠宰場;L-Lys食品級 河南萬邦化工科技有限公司;1,1,3,3-四甲氧基丙烷(TMP)、二硝基苯甲酸(DTNB) 阿拉丁;尿素、鹽酸胍、乙酸、三氯甲烷、碘化鉀、硫代硫酸鈉成都市科隆化學(xué)品有限公司;十二烷基硫酸鈉(SDS) 德國Biofroxx;2,4-二硝基苯肼(DNPH)西亞試劑;以上試劑均為分析純。

    PH-STAR 手持pH 計 德國麥斯特有限公司;CM-700D 色差儀 柯尼卡美能達股份有限公司;HH-6 數(shù)顯恒溫水浴鍋 國華(常州)儀器制造有限公司;XHF-D 高速分散器 寧波新芝生物科技股份有限公司;Centrifuge 5804R 高速冷凍離心機 德國Eppendorf 公司;V-1000 紫外分光光度計 翱藝儀器上海有限公司。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 MDA 溶液的制備 參考Wang 等[10]的方法制備丙二醛溶液。取8.4 mL TMP 于10 mL 5 mol/L HCl 溶液中,加水定容至50 mL,40 ℃避光振蕩30 min,冷卻后用6 mol/L NaOH 調(diào)節(jié)溶液pH 至6.0,最后將溶液用磷酸鹽緩沖液(50 mmol/L,pH6.0)定容至250 mL,即得MDA 儲備液。使用前參考Wang 等[10]的方法測定MDA 濃度:將儲備液稀釋105倍后測定其在267 nm 波長處的吸光度,ε=31500L/(mol·cm)。

    1.2.2 樣品前處理 將L-Lys 溶液和MDA 溶液1:1(V/V)混合后注射在肉品中。KB 組:蒸餾水;L0 組:10 mmol/L MDA;L5 組:5 mmol/L L-Lys、10 mmol/L MDA;L10 組:10 mmol/L L-Lys、10 mmol/L MDA,注射量為肉重10%。注射完成后立即用自封袋包裝,手動排出空氣后,置于4 ℃冰箱內(nèi)避光貯藏,分別于第1、3、5、7 d 時取對應(yīng)肉樣測定指標(biāo)。

    1.2.3 食用品質(zhì)測定1.2.3.1 pH 手持pH 計校準(zhǔn)后,將探頭插入肉樣,待讀數(shù)穩(wěn)定后記錄數(shù)值。

    1.2.3.2 肉色穩(wěn)定性 色度:將肉樣切開,用色差儀測定肉樣中心色度。結(jié)果表示為亮度值L*、紅度值a*、黃度值b*。

    肌紅蛋白(myoglobin,Mb)氧化狀態(tài):參考Krzywicki[11]的方法,并略作修改。取5 g 肉糜,加入20 mL 磷酸鈉緩沖液(0.04 mol/L,pH6.8),勻漿后4 ℃靜置1 h 離心30 min(3300 r/min,15 ℃)。取上清液進行過濾,濾液用緩沖液定容至25 mL,測定其在525、545、565、572 nm 處吸光度并按以下公式計算:

    氧合肌紅蛋白含量(Oxymyoglobin,OMb)(%)=(0.882R1-1.267R2+0.809R3-0.361)×10

    高鐵肌紅蛋白含量(Methemoglobin,MMb)(%)=(2.514R1+0.777R2+0.800R3+1.098)×100

    式中:R1,A572/A525;R2,A565/A525;R3,A545/A525。

    1.2.3.3 蒸煮損失 將肉樣切塊后稱重,80 ℃水浴加熱至肉樣中心溫度達到75 ℃后保持15 min,冷卻,擦干表面水分后再次稱重并按下式計算:

    式中:m1,肉樣蒸煮前質(zhì)量,g;m2,肉樣蒸煮后質(zhì)量,g。

    1.2.3.4 肌原纖維小片化指數(shù)(Myofibril fragmentation index,MFI) 參考李文博等[12]的方法,并略作修改。取2 g 肉糜,加入20 mL MFI 緩沖液,勻漿后離心15 min(1000×g,4 ℃),棄上清后加入15 mL 緩沖液相同條件再次離心,棄上清后用10 mL 緩沖液充分懸浮沉淀,然后用200 目篩網(wǎng)過濾,并用5 mL緩沖液幫助過濾。所得濾液用雙縮脲法測定蛋白濃度,并調(diào)節(jié)蛋白濃度至0.5 mg/mL,最后在540 nm處測定吸光度并按下式計算:

    式中:A540,溶液在540 nm 波長處的吸光度。

    1.2.3.5 質(zhì)構(gòu)特性 參考毛云等[13]的方法,并略作改動。將測定蒸煮損失后的肉樣修整成2 cm×2 cm×1 cm 的肉塊。參數(shù)設(shè)定:采用P/0.5 探頭,測試前速度2 mm/s,測試速度1 mm/s,測試后速度5 mm/s,壓縮比50%,觸發(fā)力5 g。測定硬度、黏性、彈性、咀嚼性。

    1.2.4 脂質(zhì)氧化1.2.4.1 過氧化物值(Peroxide value,POV) 參照姚崢[14]的方法,并略作改動。取3.0 g 肉糜,加入30 mL 三氯甲烷-乙酸混合溶液(2:3,V/V),勻漿后轉(zhuǎn)移到具塞錐形瓶中,加入1 mL 飽和碘化鉀溶液,立即加塞、振搖1 min,置于暗處反應(yīng)5 min,加入75 mL 蒸餾水和1 mL 0.5%的淀粉溶液,混勻后用0.002 mol/L 的Na2S2O3標(biāo)準(zhǔn)液滴定并按下式計算:

    式中:V,試樣消耗的Na2S2O3標(biāo)準(zhǔn)液體積,mL;V0,空白試驗消耗的Na2S2O3標(biāo)準(zhǔn)液體積,mL;c,Na2S2O3標(biāo)準(zhǔn)液的濃度,mol/L;m,試樣質(zhì)量,g;1000,換算系數(shù)。

    1.2.4.2 硫代巴比妥酸(Thiobarbituric acid reactive substances,TBARS)值 參考Jhonberg 等[15]的方法,并略作改動。取5 g 肉糜,加入25 mL 7.5%三氯乙酸(含0.1% EDTA),冰浴勻漿后離心5 min(5000 r/min,4 ℃),過濾后取5 mL 濾液加5 mL 0.02 mol/L 硫代巴比妥酸溶液,混勻后在沸水浴中反應(yīng)40 min,冷卻后在532 和600 nm 波長處測定吸光度并按下式計算:

    式中:A532,532 nm 波長處吸光度;A600,600 nm波長處吸光度;V,上清液體積,mL;M,丙二醛的摩爾質(zhì)量,72.063 g/mol;m,樣品質(zhì)量,kg;l,光程,1 cm;ε,摩爾消光系數(shù),156000 L/(mol·cm)。

    1.2.5 蛋白氧化測定

    1.2.5.1 肌原纖維蛋白的提取 參考Huang 等[16]的方法,并略作改動。向肉糜中加入4 倍體積標(biāo)準(zhǔn)鹽溶液(10 mmol/L 磷酸鈉緩沖液,0.1 mol/L NaCl,1 mmol/L EGTA,2 mmol/L MgCl2,pH7.0),冰浴勻漿后離心15 min(2000×g,4 ℃),棄上清,重復(fù)上述步驟3 次。最后一次離心后向沉淀中加入4 倍體積0.1 mol/L NaCl 溶液,勻漿后用4 層紗布過濾,將濾液再次離心15 min(2000×g,4 ℃),沉淀即為肌原纖維蛋白。用雙縮脲法測定蛋白濃度。

    1.2.5.2 羰基含量 參考瞿丞等[17]的方法,并略作改動。用25 mmol/L 的磷酸鈉緩沖液(PBS,pH6.25)將肌原纖維蛋白溶液稀釋至2 mg/mL。取1 mL 蛋白溶液加入1 mL 2 mol/L HCl 溶液(含0.02 mol/L DNPH),混勻后室溫下避光反應(yīng)40 min,再加入4 mL 20%三氯乙酸,混勻后離心5 min(11000×g,4 ℃),用2 mL 乙醇-乙酸乙酯溶液(1:1,V/V)洗滌沉淀3 次后,再加入6.0 mL 6.0 mol/L 鹽酸胍溶液,37℃水浴30 min 后在370 nm 波長處測定吸光度。

    1.2.5.3 巰基含量 參考瞿丞等[17]的方法,測定總巰基和活性巰基含量。取1 mL 2 mg/mL 蛋白溶液依次加入4 mL 尿素-SDS 溶液(含8.0 mol/L 尿素,30 g/L SDS,0.1 mol/L PBS,pH7.4)和1 mL 10 mmol/L DTNB 溶液(溶于0.1 mol/L PBS 中,pH7.4),混勻后室溫下避光反應(yīng)15 min 后在412 nm 波長處測定吸光度。用不含尿素的緩沖液以相同方法測定活性巰基含量。

    1.2.6 肌肉組織學(xué)特性 參考吳盈茹等[18]的方法,并略做改動。取對應(yīng)時間點的肉樣,垂直肌纖維切成約1 cm×0.5 cm×0.5 cm 的肉塊,用4%多聚甲醛固定72 h 后再用梯度乙醇溶液脫水1 h,再經(jīng)包埋、修片、切片、蘇木精-伊紅染液染色后進行顯微觀察,放大倍數(shù)為400 倍。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    用Microsoft 2016 Excel 對數(shù)據(jù)進行整理與計算,用SPSS 23 軟件對試驗數(shù)據(jù)進行顯著性分析(P<0.05,差異顯著),用Origin 9.0 軟件作圖。每個試驗重復(fù)測定3 次取平均值,結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉食用品質(zhì)的影響

    2.1.1 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉pH 的影響pH 是預(yù)測肉品質(zhì)的重要指標(biāo),對顏色、風(fēng)味、口感等品質(zhì)都有較大影響。由圖1 可知,在貯藏過程中,KB 組由于動物宰后體內(nèi)發(fā)生糖酵解生成乳酸,pH 不斷下降。添加MDA 后,L0 組pH 呈波動趨勢但并不顯著,1 d 時,L0 組pH 低于KB 組。類似地,劉彩華等[19]也發(fā)現(xiàn)經(jīng)過氧化處理的魚肉pH 下降更快,其具體原因有待進一步探究。3、7 d 時,L0 組pH 顯著高于KB 組(P<0.05),這可能是由于MDA誘導(dǎo)脂質(zhì)氧化后促進了蛋白降解[20],導(dǎo)致微生物大量滋生,產(chǎn)生胺類等堿性物質(zhì)使pH 升高。L5 和L10組pH 則呈先上升后下降變化。前5 d 內(nèi),L-Lys作為胺類的前體物質(zhì)在體系中不斷轉(zhuǎn)化成胺類,pH 上升;7 d 時由于內(nèi)源氨基酸以及外源添加LLys 解離產(chǎn)生羧酸、酮酸等物質(zhì)[21],且胺類物質(zhì)發(fā)生氧化,當(dāng)羧酸、酮酸含量大于胺類時,pH 開始下降。同時,L-Lys 還具有抑菌作用[22],可延緩胺類生成。綜上所述,本試驗條件下體系pH 變化是動物宰后體內(nèi)生化反應(yīng)、MDA 促氧化和L-Lys 抑菌作用等因素共同作用的結(jié)果。

    圖1 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉pH 的影響Fig.1 Effect of L-Lys on the pH value of yak meat under MDA induced oxidation

    2.1.2 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉肉色穩(wěn)定性的影響

    2.1.2.1 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉肉色的影響 肉色影響消費者購買欲的重要因素之一。由表1 可知,隨著貯藏時間的延長,各組L*值和a*值逐漸減小,b*值逐漸增大。與KB 組相比,L0 組L*值降低,a*值顯著降低(P<0.05),b*值顯著增大(P<0.05),Mahmudul 等[23]的研究結(jié)果也顯示MDA 值越大,顏色退化越嚴(yán)重。MDA 誘導(dǎo)蛋白氧化發(fā)生交聯(lián)聚合[10],水分大量滲出,L*值降低;同時,MDA 抑制紅褐色的MMb 被還原成亮紅色的OMb,肌肉出現(xiàn)不被接受的褐色(a*值降低,b*值升高),其具體機制將在下一部分具體討論。另外,注射液MDA 本身為黃色液體,可能也影響了b*值。從L5和L10 組來看,添加L-Lys 對于MDA 氧化脅迫造成的顏色劣變具有一定改善作用,其改善程度與濃度成正比,但效果有限,無法完全抵消MDA 的作用。

    表1 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉肉色的影響Table 1 Effect of L-Lys on yak meat color under MDA induced oxidation

    2.1.2.2 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉肌紅蛋白氧化狀態(tài)影響 Mb 氧化狀態(tài)及含量改變是導(dǎo)致肉色變化的直接原因。由圖2 可知,L5、L10 組OMb含量明顯高于L0 組,但隨著貯藏時間延長,各組OMb 含量均顯著減少(P<0.05),7 d 時L0 組OMb含量最低,僅余14.44%,說明除貯藏時間外,MDA也嚴(yán)重影響了Mb 的狀態(tài)和含量。一方面,MDA 引發(fā)脂質(zhì)氧化產(chǎn)生大量自由基,OMb 受到攻擊被氧化為MMb;另一方面,MDA 破壞線粒體正常結(jié)構(gòu)同時抑制還原酶活力,阻礙MMb 被還原[24-25]。因此,7 d 時L0 組OMb 含量降至最低,而MMb 含量隨貯藏時間延長顯著增加(P<0.05),7 d 時L0 組MMb含量高達56.37%。當(dāng)L-Lys 與MDA 復(fù)配后,首先L-Lys 可清除自由基并與OMb 卟啉環(huán)中Fe2+發(fā)生配位反應(yīng)[26],保護OMb 免受氧化,其次L-Lys 能夠還原MMb 成[27],所以與L0 組相比,L5、L10 組OMb含量顯著升高(P<0.05),MMb 含量則顯著下降(P<0.05)。Mb 化學(xué)狀態(tài)以及含量的變化趨勢與a*值、b*值變化情況相符。貯藏后期,雖然氧化程度不斷加重,但L-Lys 延緩氧化的效果仍然存在,且其效果與濃度呈正比。

    圖2 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉Mb 氧化狀態(tài)影響Fig.2 Effect of L-Lys on myoglobin oxidation state of yak meat under MDA induced oxidation

    2.1.3 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉蒸煮損失的影響 蒸煮損失率與肉制品出品率有關(guān),間接反映了肉及肉制品的持水力。如圖3 所示,隨著貯藏時間延長,體系內(nèi)氧化程度不斷加重,各組蒸煮損失率逐漸增加,7 d 時達到最大值。從組間來看,1 d 時,L0 組蒸煮損失率最小,且均大于KB 組,但并無顯著性差異(P>0.05)。蔣祎人等[28]認為輕度氧化將誘導(dǎo)部分蛋白結(jié)構(gòu)展開,這可能有助于形成均勻致密的蛋白凝膠網(wǎng)絡(luò),使更多水分被束縛并截留在凝膠網(wǎng)絡(luò)中,從而降低蒸煮損失率。在本試驗條件下L-Lys對于蒸煮損失并沒有起到明顯改善作用,這與Zhou等[6]的研究結(jié)果不同,其原因可能是本試驗是在氧化條件下進行的。L-Lys 也可以促進蛋白結(jié)構(gòu)伸展[29],展開后暴露出大量活性位點,受到更多氧化攻擊,凝膠結(jié)構(gòu)坍塌,不利于保持水分,但與KB 組相比并無顯著差異。

    圖3 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉蒸煮損失的影響Fig.3 Effect of L-Lys on cooking loss of yak meat under MDA induced oxidation

    2.1.4 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉MFI 值的影響 在宰后成熟過程中,由于內(nèi)源酶等其他因素,肌原纖維蛋白不斷斷裂成肌纖維片段,表現(xiàn)為MFI值的升高。由圖4 可知,隨著貯藏時間延長,各組的MFI 值均顯著升高(P<0.05)。整個貯藏過程內(nèi),各組MFI 值均高于KB 組,其原因可能是MDA 激活蛋白水解酶(Caspases)級聯(lián)反應(yīng),從而加快了肌纖維小片化速率[30]。3 d 時,L10 組MFI 值顯著低于L5 組(P<0.05),7 d 時,L5 和L10 組顯著低于L0 組(P<0.05)。據(jù)報道肉品嫩化關(guān)鍵酶calpain-1 和calpain-2 的活性與pH 有關(guān)[31],而根據(jù)前文,MDA和L-Lys 改變了體系pH,這可能對酶活有所影響。此外,有研究證明L-Lys 阻礙了肌鈣蛋白-T 等蛋白降解,并且LLys 處理過的樣品Z-盤破壞程度更小[32],肌節(jié)結(jié)構(gòu)相對完整,這是7 d 時L5 和L10 組MFI 值較低的另一原因,MFI 值較低可能有利于保持肌肉良好口感,避免其過于軟爛。

    圖4 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉MFI 值的影響Fig.4 Effect of L-Lys on MFI value of yak meat under MDA induced oxidation

    2.1.5 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉質(zhì)構(gòu)的影響 肌肉的質(zhì)構(gòu)直接影響產(chǎn)品的口感及品質(zhì)。由表2可知,在貯藏過程中KB 組和L5 組硬度均呈上升變化,L0 組和L10 組在5 d 達到最大值后又有所下降,但均大于KB 組,這與崔文斌等[33]的研究結(jié)果基本一致,原因可能是因為前期蛋白結(jié)構(gòu)展開,受到氧化,彼此交聯(lián),形成復(fù)合聚集體,導(dǎo)致硬度增大[34],后期隨著肌纖維碎片不斷積累,硬度又開始下降,而低濃度L-Lys 促進了肌原纖維蛋白等鹽溶蛋白溶解,使其形成均勻致密的凝膠結(jié)構(gòu),從而提高了肉樣硬度[35],當(dāng)L-Lys 大量添加后,不利于凝膠結(jié)構(gòu)的保持,硬度反而降低。黏性方面,除L5 組在3 d 時顯著升高外(P<0.05),其余各處理組在貯藏過程中變化并不顯著。彈性方面,整體來看,彈性隨著貯藏時間延長逐漸減小,但各組之間并無顯著差異,說明本試驗條件下MDA 和L-Lys 均對貯藏過程中肌肉的彈性沒有顯著影響。各組咀嚼性變化趨勢與硬度相同,這表明添加低濃度的L-Lys 可以協(xié)同MDA 增強硬度和咀嚼性,高濃度的L-Lys 可在一定程度上起到抑制作用。

    表2 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉質(zhì)構(gòu)的影響Table 2 Effect of L-Lys on the texture of yak meat under MDA induced oxidation

    2.2 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉脂質(zhì)氧化程度的影響

    2.2.1 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉POV 的影響 POV 代表氫過氧化物含量,可反映脂質(zhì)初級氧化程度。由圖5a 可知,在前5 d 內(nèi),隨著時間推移,脂質(zhì)氧化程度不斷加重,氫過氧化物逐漸積累,各組POV 持續(xù)增大,5 d 后,KB 組和L0 組繼續(xù)增大并達到最大值(0.78、0.83 mmol/kg),而L5、L10 組POV在7 d 時明顯下降并顯著低于KB 組和L0 組(P<0.05),許鵬[36]在其研究中得到了類似結(jié)果,并認為脂質(zhì)過氧化物不穩(wěn)定,可轉(zhuǎn)化成醛、酮、羧酸等次級氧化產(chǎn)物,導(dǎo)致POV 下降。L5 組POV 在貯藏過程中均低于L0 組,并從3 d 開始低于KB 組,說明5 mmol/L L-Lys 在前5 d 能夠有效抑制脂質(zhì)氧化?,F(xiàn)有研究表明,自由基、氧化產(chǎn)物等物質(zhì)均可引發(fā)脂質(zhì)氧化鏈?zhǔn)椒磻?yīng)[37],而L-Lys 具有較強的羥自由基(·OH)清除能力[36],這可能是L5 組POV 處在較低水平的原因。另外,Mb 氧化也是脂質(zhì)氧化的誘導(dǎo)因素之一[37],而L-Lys 對Mb 具有保護作用,這為L-Lys 抑制脂質(zhì)氧化提供了另一合理解釋。

    2.2.2 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉TBARS 值的影響 TBARS 值可反映油脂次級氧化產(chǎn)物中醛酮類物質(zhì)的含量,是另一表征脂質(zhì)氧化的重要指標(biāo)。由圖5b 可知,貯藏過程中,各組TBARS 值整體呈先上升后下降變化,3 d 時有最大值,L0 組達到1.10 mg/100 g。前3 d 內(nèi),由于脂質(zhì)初級過氧化物逐漸分解轉(zhuǎn)化,MDA 大量積累,3 d 后MDA 與氨基反應(yīng)生成1-氨基-3-氨基丙烯導(dǎo)致TBARS 值減小[38]。L0 組、L5 組、L10 組TBARS 值在貯藏過程中均顯著高于KB 組(P<0.05),這一方面是由于本試驗直接注射了大量MDA,另一方面是因為MDA 注射后加劇了體系內(nèi)脂質(zhì)氧化反應(yīng),導(dǎo)致氧化產(chǎn)物大幅增加。3 d 后L5 組和L10 組TBARS 值顯著低于L0 組(P<0.05),這表明L-Lys 可在一定程度上抑制脂質(zhì)氧化,這可歸因于L-Lys 清除自由基、螯合金屬離子的作用。

    2.3 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉蛋白氧化程度的影響

    2.3.1 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉羰基含量的影響 羰基化是肌肉蛋白質(zhì)氧化的表現(xiàn)之一。如圖6 所示,各組羰基含量隨貯藏時間的延長均顯著增大(P<0.05)。L10 組羰基含量在1 和3 d 時明顯低于KB 組,除此之外,各組在整個貯藏過程中均高于同期KB 組,表明MDA 氧化脅迫加速了蛋白羰基化。研究表明TBARS 值與羰基值呈極顯著相關(guān)(P<0.01)[36],而根據(jù)前文,L-Lys 能夠顯著降低TBARS 值(P<0.05),這可能間接抑制了蛋白羰基化,另外,L-Lys 清除自由基的功能可能也直接做出了一定貢獻。雖然L-Lys 可抑制蛋白氧化,但7 d 時L5 組和L10 組羰基含量顯著高于其他組(P<0.05),L10 組甚至高達158.51 nmol/mg。這是由外源添加物L(fēng)-Lys 和MDA 直接反應(yīng)生成羰基化合物導(dǎo)致的[2],因此L5 和L10 組的羰基值并不能完全反映肌肉本身氧化程度,反而L-Lys 消耗了MDA,可能避免了蛋白氧化。

    圖6 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉羰基含量的影響Fig.6 Effect of L-Lys on carbonyl content of yak meat under MDA induced oxidation

    2.3.2 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉巰基含量的影響 巰基含量是表征蛋白氧化程度的另一重要指標(biāo),活性巰基是指存在于蛋白表面的巰基。由圖7 可知,總巰基和活性巰基含量均隨時間的延長呈顯著下降趨勢(P<0.05),7 d 時L0 組顯著低于其他組(P<0.05),這表明MDA 加快了蛋白氧化速率,此結(jié)果與Lü等[39]的研究結(jié)果一致。另外,在整個貯藏過程內(nèi),總巰基和活性巰基含量均與L-Lys 濃度成正比,表明L-Lys 對巰基損失有明顯的抑制作用,且添加量越大,效果越強,呈現(xiàn)出明顯的濃度依賴效應(yīng)。呂遠奇[40]研究發(fā)現(xiàn)MDA 可與蛋白胺基發(fā)生共價交聯(lián),形成大量聚集體,表現(xiàn)為溶解度下降,蛋白聚集后又會促進巰基相互作用形成二硫鍵,而Li 等[29]認為L-Lys 通過使肌原纖維腫脹,肌球蛋白細絲解離,二級、三級結(jié)構(gòu)展開等機制提高了肌原纖維蛋白的溶解度。這可能對MDA 氧化應(yīng)激造成的巰基損失起到了修復(fù)作用。

    圖7 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉巰基含量的影響Fig.7 Effect of L-Lys on sulfhydryl content of yak meat under MDA induced oxidation

    2.4 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉肌肉組織學(xué)特性的影響

    由圖8 可知,牦牛肉肌纖維在貯藏過程中排列逐漸變得松散,組織內(nèi)白色間隙逐漸增多增大,細胞輪廓不再清晰。3 d 時,L0 組已經(jīng)開始出現(xiàn)細胞組織破裂現(xiàn)象,胞內(nèi)物質(zhì)外流,輪廓難以辨認,肌纖維大量溶解,肌束間空隙過大,與之相比,L5 組和L10 組細胞形狀明顯更加規(guī)則,形態(tài)完整飽滿,細胞排列較為緊密,輪廓清晰可見,且斷裂組織較少,組織內(nèi)裂紋更小。7 d 時,L0 組肌肉致密結(jié)構(gòu)已遭到嚴(yán)重破壞,肌纖維大量斷裂降解,KB 組肌細胞結(jié)構(gòu)完整性也開始逐漸喪失,且二者細胞大小和胞間距離不再均勻,而L5 組和L10 組與3 d 相比,雖然肌束內(nèi)裂紋增多增大,但其完整度仍明顯高于KB 組和L0 組,沒有出現(xiàn)組織破裂,胞外空間大小均勻,尤其是L10 組。以上結(jié)果說明,MDA 嚴(yán)重破壞了肌纖維顯微結(jié)構(gòu),而L-Lys 在整個貯藏過程中對肌肉組織有明顯保護作用,并具有濃度依賴性。

    圖8 L-Lys 對MDA 誘導(dǎo)氧化下牦牛肉肌肉組織學(xué)特性的影響(400×)Fig.8 Effect of L-Lys on histological characteristics of yak meat under MDA induced oxidation (400×)

    3 結(jié)論

    與KB 相比,MDA 作為脂質(zhì)氧化產(chǎn)物可誘導(dǎo)并促進脂質(zhì)和蛋白發(fā)生氧化,并導(dǎo)致牦牛肉蒸煮損失率提高、顏色劣變、硬度和咀嚼性增大。而L-Lys 能夠明顯抑制MDA 促氧化作用,減輕脂質(zhì)氧化程度,降低POV 以及TBARS 值,并濃度依賴性地抑制OMb轉(zhuǎn)化成MMb 而延緩肉色惡化(提高L*值、a*值),對巰基、活性巰基以及肌纖維組織結(jié)構(gòu)完整性的保護作用也呈明顯濃度依賴效應(yīng);此外,10 mmol/L LLys 可在貯藏前期抑制蛋白羰基化。以上結(jié)果說明,L-Lys 可在一定程度上減輕MDA 誘導(dǎo)的脂質(zhì)和蛋白氧化應(yīng)激,修復(fù)MDA 造成的氧化損傷,提高肌肉氧化穩(wěn)定性,改善肉品品質(zhì),且L-Lys 濃度為10 mmol/L 時效果較好。此研究結(jié)果可為L-Lys 在肉及肉制品加工中的應(yīng)用提供數(shù)據(jù)支持和理論參考。

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