張 強,吳利民,李朋燕,趙 娜,戶申奧,陸寧海
(河南科技學院 資源與環(huán)境學院,河南 新鄉(xiāng) 453003)
小麥莖基腐病作為世界性病害,在美國、澳大利亞、意大利等國家和北非、中東等地區(qū)均有發(fā)生[1]。自2012 年首次在河南省報道以來,小麥莖基腐病已在河南、河北、陜西等麥區(qū)普遍發(fā)生[2‐5]。受耕作方式及秸稈還田等因素的影響,病原菌在土壤中大量殘留,導致小麥莖基腐病逐年加重,進而嚴重威脅小麥的高產(chǎn)和穩(wěn)產(chǎn)[5‐6]。多種鐮刀菌可以導致小麥莖基腐病的發(fā)生,我國小麥莖基腐病的病原菌包括禾谷鐮刀菌(Fusarium graminearum)、假禾谷鐮 刀 菌(F.pseudograminearum)、亞 洲 鐮 刀 菌(F.asiaticum)等[7]。目前,河南省小麥產(chǎn)區(qū)的主要病原為假禾谷鐮刀菌[6]。莖基腐病嚴重發(fā)生后,小麥莖稈中存在毒素積累,無法作為飼料原料,否則會給動物養(yǎng)殖帶來風險[8‐9]。由于缺少有效的抗病品種,小麥莖基腐病的防治主要采用化學措施[5,9]。與化學防治相比,對環(huán)境友好的生物防治也成為防治小麥莖基腐病的重要方式[10]。
目前,生物防治微生物中研究較為廣泛的為芽孢桿菌,芽孢桿菌在自然界中普遍存在,很多類群都具有抑制植物病原菌的能力。其中的解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)可以產(chǎn)生多種抗菌物質(zhì),具有有效抑制多種病原菌的活性[11]。HU等[12]研究發(fā)現(xiàn),解淀粉芽孢桿菌LYZ69 產(chǎn)生的脂肽類物質(zhì)可以誘導苜蓿炭疽病菌菌絲中活性氧的積累,從而導致病原菌細胞出現(xiàn)死亡。解淀粉芽孢桿菌FS6對人參真菌病原菌菌絲生長和孢子萌發(fā)過程具有明顯的抑制作用,而且能夠影響人參根際土壤中真菌和細菌的組成,從而對人參灰霉病起到防治效果[13]。此外,解淀粉芽孢桿菌對大豆疫霉菌[14]、香蕉枯萎病菌[15]、串珠鐮刀菌[16]都具有抑制作用。在小麥莖基腐病防治方面,解淀粉芽孢桿菌YB-161能夠抑制假禾谷鐮刀菌的菌絲生長,用菌液拌種后可以有效降低小麥莖基腐病的發(fā)生,并且還具有一定的增產(chǎn)效果[17]。
解淀粉芽孢桿菌HB-081 是河南科技學院資源與環(huán)境學院植物病理學實驗室從女貞葉片中分離獲得的1 株內(nèi)生細菌,前期研究發(fā)現(xiàn)該菌株對假禾谷鐮刀菌具有較好的拮抗效果[18]。為提升菌株HB-081 的發(fā)酵水平,采用單因素試驗和正交試驗對菌株HB-081 的培養(yǎng)基組成及發(fā)酵條件進行優(yōu)化,同時分析了無菌發(fā)酵液的穩(wěn)定性,從而為該菌株的開發(fā)和實際應(yīng)用奠定理論基礎(chǔ)。
1.1.1 供試菌株 假禾谷鐮刀菌、解淀粉芽孢桿菌HB-081,均由河南科技學院資源與環(huán)境學院植物病理學實驗室分離并保存。
1.1.2 供試培養(yǎng)基 PDA 培養(yǎng)基:馬鈴薯200.0 g、葡萄糖20.0 g、瓊脂15.0 g、水1 000 mL;BPY 培養(yǎng)基:牛肉浸膏5.0 g、蛋白胨10.0 g、酵母提取物5.0 g、葡萄糖5.0 g、水1 000 mL,pH 值7.2;LB 培養(yǎng)基:胰蛋白胨10.0 g、酵母提取物5.0 g、NaCl 10.0 g、水1 000 mL,pH 值7.2;NA 培養(yǎng)基:牛肉浸膏5.0 g、蛋白胨10.0 g、NaCl 5.0 g、水1 000 mL,pH值7.2;NB培養(yǎng)基:牛肉浸膏3.0 g、蛋白胨10.0 g、葡萄糖10.0 g、酵母提取物1.0 g、水1 000 mL,pH 值7.2;YT 培養(yǎng)基:蛋白胨10.0 g、酵母提取物5.0 g、葡萄糖1.0 g、NaCl 5.0 g、水1 000 mL,pH值7.2。
1.2.1 菌株HB-081發(fā)酵條件優(yōu)化
1.2.1.1 種子液制備 挑取菌株HB-081 適量菌體于50 mL 的LB 液體培養(yǎng)基中,28 ℃、180 r/min 培養(yǎng)24 h。
1.2.1.2 最適培養(yǎng)基篩選 將菌株HB-081 種子液1 mL 分別接種到50 mL 的BPY、LB、NA、NB、YT 液體培養(yǎng)基中,28 ℃、180 r/min 培養(yǎng)48 h 后,用紫外分光光度計對不同培養(yǎng)基中發(fā)酵液的OD600進行測量。另外,將發(fā)酵液于12 000 r/min 離心15 min,再將上清液用0.22μm 微孔濾膜過濾,以獲得無菌發(fā)酵液。將無菌發(fā)酵液按照10%體積比與PDA 培養(yǎng)基混合倒板,之后在平板中心接入直徑約5 mm 的假禾谷鐮刀菌菌餅。以不加無菌發(fā)酵液的PDA 培養(yǎng)基為對照,每個處理重復3 次。28 ℃培養(yǎng)5 d 左右,待對照即將長滿培養(yǎng)皿時,計算抑菌率。抑菌率=(對照菌落直徑-處理菌落直徑)/對照菌落直徑×100%。
1.2.1.3 最適碳源、氮源及無機鹽篩選 以最適培養(yǎng)基為基礎(chǔ)培養(yǎng)基,分別添加1 g/L的葡萄糖、果糖、甘露醇、麥芽糖、蔗糖作為碳源,制成不同碳源培養(yǎng)基;最適碳源確定后,分別添加10 g/L 的牛肉膏、蛋白胨、胰蛋白胨、酵母提取物和硝酸鉀制成不同氮源培養(yǎng)基;在最適碳源、氮源基礎(chǔ)上,分別添加5 g/L的氯化鈉、氯化鉀、硫酸鎂、碳酸鈣、磷酸二氫鉀制成不同無機鹽培養(yǎng)基。將菌株HB-081 種子液以2%接種量置于不同培養(yǎng)基中,28 ℃、180 r/min 培養(yǎng)48 h后,分別對發(fā)酵液的OD600和無菌發(fā)酵液的抑菌率進行計算。根據(jù)最適碳源、氮源、無機鹽的篩選結(jié)果,設(shè)計三因素三水平正交試驗確定不同培養(yǎng)基成分的最佳配比。
1.2.1.4 最適pH 值篩選 以上述篩選出來的最適培養(yǎng)基為基礎(chǔ),調(diào)整pH 值分別為4、5、6、7、8、9,按照2%接種量將菌株HB-081 種子液接種至不同pH值培養(yǎng)基中,28 ℃、180 r/min 培養(yǎng)48 h后,對無菌發(fā)酵液的抑菌率進行計算。
1.2.1.5 最適溫度篩選 按照2%接種量將菌株HB-081 種子液接種至最適pH 值培養(yǎng)基中,分別于24、28、32、36、40 ℃,180 r/min 培養(yǎng)48 h 后,對無菌發(fā)酵液的抑菌率進行計算。
1.2.1.6 最適裝液量篩選 在上述篩選出來的最適培養(yǎng)條件下,于250 mL 三角瓶中分別盛裝50、75、100、125、150 mL 最適培養(yǎng)基,并按照2%接種量接種菌株HB-081 種子液,28 ℃、180 r/min 培養(yǎng)48 h后,對無菌發(fā)酵液的抑菌率進行計算。
1.2.1.7 最適接種量篩選 在上述篩選出來的最適培養(yǎng)條件下,分別按照2%、4%、6%、8%、10%的接種量接種菌株HB-081種子液,28 ℃、180 r/min培養(yǎng)48 h后,對無菌發(fā)酵液的抑菌率進行計算。
1.2.1.8 最適發(fā)酵時間篩選 在上述篩選出來的最適培養(yǎng)條件下,分別發(fā)酵培養(yǎng)12、24、36、48、60、72 h,對無菌發(fā)酵液的抑菌率進行計算。
1.2.2 菌株HB-081無菌發(fā)酵液的穩(wěn)定性分析
1.2.2.1 熱穩(wěn)定性 將菌株HB-081 在最適發(fā)酵條件下培養(yǎng)后獲得的無菌發(fā)酵液分別在40、60、80、100 ℃條件下水浴30 min,冷卻至室溫后,按照10%體積比與PDA 培養(yǎng)基混合倒板,皿內(nèi)接入直徑約5 mm 的假禾谷鐮刀菌菌餅。以未用溫度處理的無菌發(fā)酵液為對照,以不加無菌發(fā)酵液的PDA 培養(yǎng)基為空白對照,每個處理重復3 次。28 ℃培養(yǎng)5 d 后,計算不同溫度處理下無菌發(fā)酵液的相對抑菌率。相對抑菌率=(空白對照菌落直徑-處理菌落直徑)/(空白對照菌落直徑-未處理菌落直徑)×100%。
1.2.2.2 紫外線穩(wěn)定性 將菌株HB-081 無菌發(fā)酵液置于40 W 紫外燈下照射(距離30 cm),照射時間分別為30、60、120、180、240 min。以未用紫外線處理的無菌發(fā)酵液為對照,以不加無菌發(fā)酵液的PDA培養(yǎng)基為空白對照,對無菌發(fā)酵液的相對抑菌率進行計算。
1.2.2.3 酸堿穩(wěn)定性 將菌株HB-081 無菌發(fā)酵液用1 mol/L HCl和1 mol/L NaOH 分別調(diào)整pH 值為3、5、7、9、11,室溫靜置2 h 后,再將pH 值調(diào)為7。以未用酸堿處理的無菌發(fā)酵液為對照,以不加無菌發(fā)酵液的PDA 培養(yǎng)基為空白對照,對無菌發(fā)酵液的相對抑菌率進行計算。
1.2.2.4 蛋白酶穩(wěn)定性 在菌株HB-081 無菌發(fā)酵液中分別加入1 mg/mL 終質(zhì)量濃度的胃蛋白酶、胰蛋白酶及蛋白酶K,37 ℃處理2 h。以未用蛋白酶處理的無菌發(fā)酵液為對照,以不加無菌發(fā)酵液的PDA培養(yǎng)基為空白對照,對無菌發(fā)酵液的相對抑菌率進行計算。
1.2.3 菌株HB-081脂肽類物質(zhì)合成基因的PCR 檢測 利用細菌基因組DNA 提取試劑盒(北京天根生化科技有限公司)對菌株HB-081 基因組DNA 進行提取。采用通用引物分別對bacAB、bamC、eriSa、fenB、ituC、sfp基因進行PCR 擴增[19](表1)。PCR 反應(yīng) 體 系:2×TaqPCR Mix 12.5 μL,BACD/BAMC/ERISA/FENB/ITUC/SFP-F(10 μmol/L)1.0 μL,BACD/BAMC/ERISA/FENB/ITUC/SFP-R(10 μmol/L)1.0 μL,DNA 模板1.0 μL,ddH2O 9.5 μL。PCR 反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性30 s,57 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min,30個循環(huán);72 ℃終延伸5 min。擴增產(chǎn)物利用1%的瓊脂糖凝膠電泳進行檢測。
表1 脂肽類物質(zhì)合成基因的PCR檢測引物Tab.1 PCR primers of lipopeptide antibiotics synthetic genes
1.2.4 菌株HB-081 對小麥莖基腐病的防治效果試驗 挑選顆粒飽滿的周麥22種子(河南科技學院小麥中心提供),表面消毒后置于濕潤濾紙上進行催芽,待種子露白后分別放入1×108cfu/mL 菌株HB-081 的原始發(fā)酵液(以LB 培養(yǎng)基培養(yǎng)獲得)和優(yōu)化發(fā)酵液中浸種12 h,然后將種子播種于直徑15 cm 的塑料盆缽中,每盆播種20 粒。露白后的種子分別用清水和3%苯醚甲環(huán)唑懸浮劑浸種12 h 作為空白對照(CK)和藥劑對照,每個處理重復3 次,25 ℃、14 L∶10 D 條件下培養(yǎng)。當小麥長到一葉一心時,將直徑約5 mm 的生長于PDA 培養(yǎng)基上的新鮮假禾谷鐮刀菌菌餅置于小麥幼苗莖基部,每株麥苗接種一塊菌餅,表面覆土2 cm 并保濕48 h。14 d后參照潘婭梅等[20]的方法對小麥莖基腐病的發(fā)病情況進行調(diào)查,并計算病情指數(shù)和防治效果。病情指數(shù)=Σ(各病情分級×該病級的發(fā)病株數(shù))/(分級標準中最高級別數(shù)×調(diào)查總株數(shù))×100,防治效果=(空白對照組病情指數(shù)-處理組病情指數(shù))/空白對照組病情指數(shù)×100%。
2.1.1 最適培養(yǎng)基篩選 在5 種培養(yǎng)基條件下,菌株HB-081 的無菌發(fā)酵液都可以抑制假禾谷鐮刀菌的菌落生長,其中以YT為培養(yǎng)基時OD600最大,同時無菌發(fā)酵液的抑菌率最高,為52.09%;而LB、NA、NB 培養(yǎng)基中菌株生長較慢,并且無菌發(fā)酵液的抑菌活性相對較低,都在40.00%以內(nèi)(圖1)。由此說明,菌株HB-081的最適基礎(chǔ)培養(yǎng)基為YT培養(yǎng)基。
2.1.2 最適碳源、氮源及無機鹽篩選 以葡萄糖、果糖、甘露醇和麥芽糖為碳源時,菌株HB-081 的無菌發(fā)酵液具有明顯的抑菌活性,其中以麥芽糖為碳源時的抑菌率最高,為60.00%,并且發(fā)酵液的OD600也最大;以蔗糖為碳源時,菌株HB-081 的OD600和抑菌率最低,分別為0.33 和1.30%(圖2)。因此,選擇麥芽糖為發(fā)酵培養(yǎng)基的最適碳源。
以蛋白胨和胰蛋白胨為氮源時,菌株HB-081發(fā)酵液的OD600相當,都在1.60 左右,但以蛋白胨為氮源時無菌發(fā)酵液的抑菌率最高,為64.35%;硝酸鉀為氮源時,發(fā)酵液的OD600和無菌發(fā)酵液的抑菌率最低,分別僅為0.11和12.17%(圖3)。因此,選擇蛋白胨為發(fā)酵培養(yǎng)基的最適氮源。
圖3 不同氮源對菌株HB-081生長量及無菌發(fā)酵液抑菌活性的影響Fig.3 Effects of different nitrogen sources on the growth of strain HB?081 and inhibition activity of cell?free fermentation broth
以氯化鉀為無機鹽時,菌株HB-081 發(fā)酵液的OD600和無菌發(fā)酵液的抑菌率最高,分別為1.96 和63.36%;氯化鈉為無機鹽時,無菌發(fā)酵液的抑菌率為58.20%,但發(fā)酵液的OD600只有1.27;磷酸二氫鉀為無機鹽時,無菌發(fā)酵液的抑菌率最低,僅為21.55%(圖4)。所以,選擇氯化鉀為發(fā)酵培養(yǎng)基的最適無機鹽。
圖4 不同無機鹽對菌株HB-081生長量及無菌發(fā)酵液抑菌活性的影響Fig.4 Effects of different inorganic salts on the growth of strain HB?081 and inhibition activity of cell?free fermentation broth
根據(jù)單因素試驗所得最佳碳源、氮源及無機鹽設(shè)計三因素三水平正交試驗,由于菌株HB-081 在3種條件下的發(fā)酵液OD600都較好,所以正交試驗僅以無菌發(fā)酵液對假禾谷鐮刀菌的抑菌率為指標。結(jié)果表明,3種因素影響菌株HB-081無菌發(fā)酵液抑菌效果的順序為A(麥芽糖)>B(蛋白胨)>C(氯化鉀),最佳水平組合為A3B2C2,即最佳培養(yǎng)基配方為麥芽糖10.0 g/L,蛋白胨15.0 g/L,氯化鉀5.0 g/L(表2)。
表2 菌株HB-081營養(yǎng)條件正交試驗結(jié)果Tab.2 Results of the orthogonal experiment about medium composition of strain HB?081
2.1.3 發(fā)酵條件篩選 在初始pH 值為6~8 的條件下,菌株HB-081 無菌發(fā)酵液的抑菌率都在60.00%左右,且pH 值為6 時的抑菌率最高,為63.59%;在pH 值為4和9的條件下,抑菌率分別只有23.24%和10.97%(圖5A)。因此,菌株HB-081 最佳發(fā)酵初始pH值為6。
圖5 不同發(fā)酵條件對菌株HB-081無菌發(fā)酵液抑菌活性的影響Fig.5 Effect of different fermentation conditions on the inhibition activity of strain HB?081 cell?free fermentation broth
在發(fā)酵溫度為28~32 ℃的條件下,菌株HB-081無菌發(fā)酵液的抑菌率都在60.00%以上,且溫度為28 ℃時的抑菌率最高,為63.05%;溫度過低和過高都會影響無菌發(fā)酵液的抑菌效果,24 ℃時的抑菌率最低,只有41.74%(圖5B)。因此,菌株HB-081 最佳發(fā)酵溫度為28~32 ℃。
在裝液量為50~75 mL 條件下,菌株HB-081 無菌發(fā)酵液的抑菌率最高,為62.00%;隨著裝液量的增加,抑菌率下降,裝液量為150 mL 時的抑菌率為53.26%(圖5C)。因此,菌株HB-081 最佳發(fā)酵裝液量為50~75 mL。
在接種量為2%~4%的條件下,菌株HB-081 無菌發(fā)酵液的抑菌率相對最好,都在62.00%左右;隨著接種量的增加,抑菌率下降,接種量為10%時的抑菌率最低,為51.94%(圖5D)。因此,菌株HB-081最佳發(fā)酵接種量為2%~4%。
在發(fā)酵時間為12 h 時,菌株HB-081 無菌發(fā)酵液的抑菌率最低,為13.94%;48 h 時的抑菌率明顯提高,為61.48%;隨著培養(yǎng)時間的延長,抑菌率出現(xiàn)下降,72 h 時的抑菌率下降到45.89%(圖5E)。因此,菌株HB-081最佳發(fā)酵時間為48 h。
菌株HB-081 無菌發(fā)酵液經(jīng)40~100 ℃分別處理30 min 后,無菌發(fā)酵液的抑菌效果幾乎不受影響,相對抑菌率都保持在99.00%以上(圖6A)。說明無菌發(fā)酵液中的活性物質(zhì)具有較好的熱穩(wěn)定性。
圖6 不同條件下菌株HB-081無菌發(fā)酵液的穩(wěn)定性Fig.6 Antifungal stability of strain HB?081 cell?free fermentation broth under different conditions
利用紫外線對菌株HB-081 無菌發(fā)酵液進行照射,在30~180 min 的時間內(nèi),相對抑菌率都可以保持在95.00%以上;紫外線照射240 min后,相對抑菌率下降為77.23%(圖6B)??梢?,無菌發(fā)酵液具有較好的紫外線穩(wěn)定性。
菌株HB-081 無菌發(fā)酵液在pH 值為5~9 的條件下進行處理后,抑菌效果不受影響,相對抑菌率保持在100.00%左右;但是在pH值分別為3和11的條件下,抑菌活性有所下降,相對抑菌率分別為73.38%和83.74%(圖6C)。由此說明,抑菌活性物質(zhì)不耐強酸和強堿,適宜pH值為5~9。
分別用胃蛋白酶、胰蛋白酶及蛋白酶K 對菌株HB-081 無菌發(fā)酵液進行處理,相對抑菌率未出現(xiàn)明顯變化,都可以保持在99.00%以上(圖6D)。表明抑菌活性物質(zhì)對供試蛋白酶不敏感。
選擇6 種脂肽類物質(zhì)相關(guān)基因的引物對菌株HB-081基因組DNA進行PCR擴增,電泳結(jié)果表明,成功擴增出bacAB和fenB基因(圖7)。由此推測,菌株HB-081 可能存在芽孢桿菌溶素及豐原素B 合成基因,并產(chǎn)生相應(yīng)的抗菌物質(zhì)。
圖7 菌株HB-081脂肽類物質(zhì)合成基因的PCR擴增結(jié)果Fig.7 PCR amplification results of lipopeptide biosynthesis genes of strain HB?081
盆栽試驗結(jié)果顯示,對照組小麥莖基腐病的病情指數(shù)為21.57,菌株HB-081 原始發(fā)酵液對小麥莖基腐病的防治效果為64.31%,優(yōu)化后發(fā)酵液的防病效果上升到69.74%。此外,使用3%苯醚甲環(huán)唑懸浮劑拌種,小麥莖基腐病的病情指數(shù)為3.88,防治效果為81.97%(表3)。以上結(jié)果表明,菌株HB-081對小麥莖基腐病的發(fā)生具有一定的防病能力。
表3 菌株HB-081對小麥莖基腐病的防病效果Tab.3 Effect of strain HB?081 against wheat crown rot
生防菌株發(fā)酵培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件的優(yōu)化,與其是否能夠應(yīng)用于生產(chǎn)密切相關(guān)[21]。本研究以菌株HB-081 的菌體量和對假禾谷鐮刀菌的抑菌效果作為指標,利用培養(yǎng)基組分的單因素試驗和正交試驗明確了解淀粉芽孢桿菌HB-081 的最適碳源為麥芽糖(10.0 g/L),氮源為蛋白胨(15.0 g/L),無機鹽為氯化鉀(5.0 g/L)。采用單因素試驗對發(fā)酵條件進行優(yōu)化,結(jié)果表明,最適發(fā)酵初始pH 值為6、溫度為28~32 ℃、裝液量為50~75 mL、接種量為2%~4%、發(fā)酵時間為48 h。通過對培養(yǎng)基組分和發(fā)酵條件的優(yōu)化,提高了菌株HB-081的抑菌效果。
適宜的發(fā)酵條件能夠促進拮抗菌產(chǎn)生代謝產(chǎn)物,但不同菌株產(chǎn)生抑菌活性的發(fā)酵條件各有不同。如解淀粉芽孢桿菌DP03-4 和Xe01 的最適碳源同為葡萄糖,但最適氮源、無機鹽、pH值、溫度、轉(zhuǎn)速及培養(yǎng)時間都存在差異[21‐22]。本研究中,菌株HB-081 的最適發(fā)酵條件與菌株DP03-4 和Xe01 均有所不同。菌株之間發(fā)酵條件存在差異的原因可能與菌株自身特征、分離來源以及靶標病原菌選擇不同有關(guān)。后續(xù)還需進一步完善發(fā)酵條件,以符合生產(chǎn)實際的需要。
生防菌能否應(yīng)用于生產(chǎn)與其穩(wěn)定性有關(guān),例如芽孢桿菌QHZ-3的發(fā)酵液經(jīng)高溫、紫外照射以及強酸強堿的處理后,仍然可以保持較好的抑菌效果[23]。解淀粉芽孢桿菌ck-05 的發(fā)酵液耐受80 ℃以下的溫度,pH 值為6~8 條件下具有較好的抑制效果,并且對紫外線和自然光照射不敏感,對胃蛋白酶等3種蛋白酶不敏感[16]。本研究發(fā)現(xiàn),菌株HB-081 無菌發(fā)酵液經(jīng)100 ℃處理后相對抑菌率可在99.00%左右,在pH 值為5~9 的條件下抑菌活性不受影響,耐受紫外線的照射,對胃蛋白酶等3 種酶的處理不敏感。可見,菌株HB-081 無菌發(fā)酵液穩(wěn)定性較好,具有應(yīng)用于田間生產(chǎn)的潛力。
芽孢桿菌產(chǎn)生的拮抗物質(zhì)主要包括抗生素及抗菌蛋白等,其中的脂肽類物質(zhì)結(jié)構(gòu)多樣、性質(zhì)穩(wěn)定,對多種植物病原菌都具有較好的生物活性[24]。高振峰等[25]研究發(fā)現(xiàn),貝萊斯芽孢桿菌ZSY-1 脂肽物質(zhì)能夠有效降低番茄早疫病的發(fā)生,并延緩果實軟化。對金黃色葡萄球菌具有顯著抑菌作用的解淀粉芽孢桿菌SY11 具有fenA等3 種脂肽類物質(zhì)的功能基因,并且質(zhì)譜分析結(jié)果顯示,該菌株產(chǎn)生的主要抑菌物質(zhì)為Bacillomycin D[26]。解淀粉芽孢桿菌JY-d1 基因組中具有fenB和ituD基因,而且伊枯草菌素粗提物具有較好的抑菌效果[27]。本研究通過PCR 檢測發(fā)現(xiàn),菌株HB-081 存在bacAB和fenB基因,后續(xù)還應(yīng)對該菌株產(chǎn)生的脂肽類抗菌物質(zhì)進行分離與鑒定,為進一步的開發(fā)利用提供依據(jù)。