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    敲低PRPF19對胰腺癌細胞增殖、遷移和侵襲的影響

    2023-03-08 08:59:30侯丹陽黑鈺徐向榮王逢會
    腫瘤防治研究 2023年2期
    關(guān)鍵詞:檢測能力

    侯丹陽,黑鈺,徐向榮,王逢會

    0 引言

    胰腺導(dǎo)管腺癌(pancreatic ductal adenocarcinoma,PDAC)簡稱胰腺癌,是最常見的消化系統(tǒng)惡性腫瘤之一,其病情發(fā)展迅速,臨床預(yù)后比較差,而其臨床預(yù)后較差的原因主要是缺乏有效的治療[1-2]、腫瘤轉(zhuǎn)移、復(fù)發(fā)以及化療耐藥性[3-4]。因此尋找與胰腺癌發(fā)生有關(guān)的新的癌基因,掌握胰腺癌的具體分子調(diào)控機制,開發(fā)新的治療靶點和藥物迫在眉睫。

    前RNA加工因子19(PRPF19)又稱Pso4、SNEV或NMP200,位于染色體11q12.2,主要參與DNA損傷反應(yīng)(DDR)和mRNA加工[5],是Prp19/19復(fù)合體(NTC)的重要組成之一,參與各種生理過程,包括mRNA剪接[6]、DDR和基因組維護[7]。同時,PRPF19可作為應(yīng)激反應(yīng)蛋白在提高細胞對氧化應(yīng)激抵抗力[8-9]、降低細胞凋亡和DNA損傷程度[10]、抑制細胞衰老等方面發(fā)揮其功能[11]。除了在細胞基礎(chǔ)生物進程中發(fā)揮作用外,PRPF19利用其多效能在腫瘤等諸多疾病中發(fā)揮重要的調(diào)控作用,有研究發(fā)現(xiàn)PRPF19的表達在肝細胞癌中升高,并與疾病的不良預(yù)后相關(guān)[12],而通過去泛素化PRPF19可促進肝癌細胞的遷移和侵襲[13];PRPF19是應(yīng)激條件下p21表達所必需的[14],它可通過上調(diào)p21表達來抑制肺癌的生長和發(fā)展[5];在舌癌中,PRPF19被證實其表達與預(yù)后不良有關(guān),可以促進舌癌細胞的增殖、遷移和腫瘤的發(fā)展,甚至促進舌癌細胞對放療和順鉑的耐藥[15]。但是,目前PRPF19在胰腺癌中的相關(guān)作用研究尚未見報道。PRPFs剪接因子普遍表達于體內(nèi)的每一種細胞類型中,Zhen等[16]利用生物信息學(xué)方法和生物學(xué)驗證,證實與PRPF19同屬前mRNA加工因子的PRPF40A,在胰腺癌中顯著上調(diào)并發(fā)揮癌基因的作用,與其不良預(yù)后顯著相關(guān),可以作為胰腺癌診斷和獨立的預(yù)后生物標(biāo)志物。本研究擬通過系列體外實驗揭示PRPF19在胰腺癌發(fā)生發(fā)展中的調(diào)控作用,從而為胰腺癌的診療研究提供新的思路。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    人胰腺癌細胞系MIA PaCa-2、ASPC-1和人正常胰腺導(dǎo)管細胞系HPNE為延安大學(xué)醫(yī)學(xué)研究實驗中心保存,其中HPNE為永生化上皮細胞作為正常對照細胞系。PANC-1和BXPC-3購于武漢博士德生物工程有限公司。胎牛血清(FBS,04-001-1ACS)、DMEM培養(yǎng)基(C3113-0500)、青霉素-鏈霉素雙抗溶液(10 mg/ml)均購自以色列BI公司;反轉(zhuǎn)錄(AE311)、qPCR定量(AQ601)試劑盒購自北京全式金生物技術(shù)有限公司;轉(zhuǎn)染試劑購于法國Polyplus公司;CCK-8試劑購于上海TargetMol公司;Transwell小室培養(yǎng)板購于美國Corning公司,基質(zhì)膠(0827045)購于上海諾娃醫(yī)藥科技有限公司;siRNA序列設(shè)計及合成由上海吉瑪公司完成;qRT-PCR相關(guān)引物均由北京奧科鼎盛生物技術(shù)公司合成。

    1.2 方法

    1.2.1 數(shù)據(jù)庫分析 通過GEPIA、TCGA和GTEx數(shù)據(jù)庫篩選胰腺癌組織的相關(guān)資料,結(jié)合其他相關(guān)文獻研究[17-18],分析PRPF19在胰腺癌組織及其癌旁組織中的表達差異,利用統(tǒng)計學(xué)軟件進行數(shù)據(jù)處理,對PRPF19在胰腺癌中的表達差異預(yù)測結(jié)果進行描述,并繪制箱式圖。

    1.2.2 引物和siRNA的設(shè)計與合成 從NCBI數(shù)據(jù)庫查找PRPF19(Gene ID: 27339)mRNA 的序列。依據(jù)Benjamin等[5]的研究設(shè)計合成其特異性檢測引物,引物序列見表1。結(jié)合目的基因CDS區(qū)域進行小干擾RNA設(shè)計并合成2條PRPF19 siRNA用于后續(xù)實驗,siRNA及對照(si-NC)序列見表2。

    表1 PRPF19和β-actin引物Table 1 PRPF19 and β-actin primers

    表2 PRPF19 siRNA序列Table 2 PRPF19 siRNA sequences

    1.2.3 細胞培養(yǎng)及模型建立 將液氮保存的MIA PaCa-2、PANC-1、BXPC-3、ASPC-1和HPNE細胞取出復(fù)蘇后,加入含10%胎牛血清(FBS)和1%(10 mg/ml)青鏈霉素雙抗的DMEM培養(yǎng)基,置于37℃、5%CO2環(huán)境中培養(yǎng)。期間使用胰酶消化傳代,待細胞增殖狀態(tài)良好時將其接種到6孔板,相同條件繼續(xù)培養(yǎng)細胞生長至密度90%~95%時,分別進行處理、收集并進行mRNA及蛋白水平檢測。將MIA PaCa-2細胞培養(yǎng)接種于6孔板,當(dāng)細胞生長至密度達70%~80%時分別處理建立實驗?zāi)P图磳φ战M轉(zhuǎn)染si-NC 75 μmol/L;實驗組分別用siPRPF19-1和siPRPF19-2(均為75 μmol/L)處理6 h后進行換液,建立目的基因敲低細胞模型,繼續(xù)培養(yǎng)24~48 h后進入后續(xù)實驗。

    1.2.4 總RNA提取及實時熒光定量PCR(qRTPCR)采用TRIzo1法提取各組細胞總RNA,酶標(biāo)儀檢測RNA純度和濃度,利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒,以總RNA為模板,設(shè)置25℃ 10 min;42℃15 min;85℃ 5 s;16℃ 10 min條件進行反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。以cDNA為模板,利用設(shè)計合成好的PRPF19 mRNA特異性檢測引物,以β-actin作為內(nèi)參進行實時熒光定量PCR,檢測各細胞模型中PRPF19 mRNA表達水平。qRT-PCR反應(yīng)體系為cDNA 2 μl,2×TransStart top Green qPCR Supermix 10 μl,上下游引物各1 μl,無酶水補充至20 μl體系。設(shè)置反應(yīng)程序為:94℃預(yù)變性5 min;94℃ 30 s;58℃ 15 s;72℃ 30 s;循環(huán)擴增40次,每組設(shè)置3個平行復(fù)孔,計算平均值,采用相對定量法2-ΔΔCt分析PRPF19 mRNA的表達情況。

    1.2.5 PRPF19蛋白表達水平的檢測 利用上述構(gòu)建的細胞模型進行目的基因蛋白水平檢測,培養(yǎng)48 h后收集各組細胞,將裂解液與蛋白酶抑制劑按100:1比例配置,加入到各組細胞中,置于冰上4 min,劇烈振蕩30 s,重復(fù)5次,12 000 r/min離心20 min,收集上清液,BCA法檢測各組蛋白濃度,調(diào)整各組上樣量至30 μg。經(jīng)高溫變性,SDSPAGE凝膠電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉后,進行PRPF19抗體孵育(1:1000),以β-actin作為內(nèi)參,再經(jīng)清洗、二抗結(jié)合孵育以及清洗后進行曝光顯影,采用Image J軟件分析免疫印跡條帶。

    1.2.6 CCK-8法檢測細胞的增殖能力 取各處理組細胞以1 500個/孔鋪于96孔板,每組設(shè)置5個復(fù)孔,待細胞完全貼壁(0 h)后,每孔加入10 μl CCK-8試劑,在培養(yǎng)箱中避光孵育2 h后轉(zhuǎn)移至酶標(biāo)儀,在450 nm波長下測定其吸光度值,相同方式分別檢測各處理組細胞培養(yǎng)至24 h、48 h和72 h的吸光度值,采用GraphPad 7.00軟件繪制細胞增殖曲線。

    1.2.7 克隆形成實驗 取生長狀態(tài)良好的各處理組細胞,以1 000個/孔接種到12孔板中,每組3個復(fù)孔,置于5%CO2、37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每隔3~4天換液,培養(yǎng)大約兩周時間出現(xiàn)肉眼可見的細胞集落即形成克隆,此時開始收集細胞,使用4%多聚甲醛固定30 min后,0.1%結(jié)晶紫染色15 min,使用PBS緩沖液將染料等非特異性物質(zhì)清洗晾干,采集圖像并進行克隆計數(shù)。

    1.2.8 Transwell實驗檢測細胞的遷移和侵襲能力 細胞侵襲能力檢測,先預(yù)處理培養(yǎng)小室,將Matrigel(基質(zhì)膠)涂抹在上室底部(冰上操作)置于37℃培養(yǎng)箱孵育30 min使基質(zhì)膠均勻覆蓋。取各處理組細胞以50 000個/孔混懸于200 μl無血清DMEM中并全部轉(zhuǎn)移至預(yù)處理的上室中,同時用600 μl DMEM(20%FBS)填充下室。培養(yǎng)48 h后,4%多聚甲醛室溫下固定30 min,清洗,0.1%結(jié)晶紫染色15 min,擦除上室表面細胞,光學(xué)顯微鏡下觀察(×10),并采集圖片,進行計數(shù)分析。不使用Matrigel預(yù)處理小室,其余步驟與上述相同即可完成細胞遷移能力檢測。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)方法

    采用SPSS23.0軟件對獲得數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學(xué)分析。各實驗均獨立重復(fù)三次,多組間比較采用單因素方差分析;胰腺癌組織與正常胰腺組織中PRPF19的表達差異分析采用t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 PRPF19在胰腺癌組織和正常組織中的差異表達

    通過對GEPIA等數(shù)據(jù)庫中胰腺癌相關(guān)數(shù)據(jù)進行分析,并對PRPF19在胰腺癌組織(179例)和正常胰腺組織(171例)中的mRNA水平的比較發(fā)現(xiàn),PRPF19在胰腺癌組織中的表達量顯著高于正常組織,見圖1,提示PRPF19或?qū)⒆鳛榘┗蛟谝认侔┲邪l(fā)揮作用。

    圖1 PRPF19在胰腺癌組織及正常組織中的差異表達Figure 1 Differential expression of PRPF19 in pancreatic cancer tissues and normal tissues

    2.2 PRPF19在正常胰腺導(dǎo)管細胞和胰腺癌細胞系中的表達

    Western blot檢測結(jié)果顯示:與正常對照細胞系(HPNE)相比,PRPF19在MIA PaCa-2等胰腺癌細胞系中表達量明顯升高(P=0.02),見圖2A。qRT-PCR檢測結(jié)果顯示:在MIA PaCa-2中PRPF19 mRNA的表達量顯著高于正常對照細胞系(P=0.02),見圖2B。

    圖2 PRPF19在胰腺癌細胞系中蛋白和mRNA的表達水平Figure 2 Protein and mRNA expression level of PRPF19 in pancreatic cancer cell lines

    2.3 構(gòu)建敲低PRPF19的胰腺癌細胞模型

    利用siRNA技術(shù)設(shè)計合成si PRPF19-1和si PRPF19-2,轉(zhuǎn)染入MIA PaCa-2細胞中,建立敲低PRPF19細胞模型,通過qRT-PCR和Western blot檢測其敲低效率。實驗結(jié)果顯示,與對照組(si-NC)相比,轉(zhuǎn)染si PRPF19-1和si PRPF19-2后,MIA PaCa-2細胞系中PRPF19蛋白和mRNA的表達水平均明顯下調(diào)(均P=0.03),見圖3,表明成功構(gòu)建敲低PRPF19細胞模型并可以進行后續(xù)功能實驗。

    圖3 敲低PRPF19細胞系的構(gòu)建Figure 3 Construction of MIA PaCa-2 cell lines with PRPF19 knockdown

    2.4 敲低PRPF19對MIA PaCa-2細胞增殖的影響

    與對照組相比,敲低PRPF19后,細胞數(shù)量明顯下降,見圖4A;與si-NC組相比,隨著時間的增加,敲低PRPF19后,MIA PaCa-2細胞的增殖能力逐漸減弱,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.000),見圖4B。

    圖4 敲低PRPF19對胰腺癌細胞增殖的影響Figure 4 Effect of knockdown of PRPF19 on proliferation of pancreatic cancer cells

    2.5 敲低PRPF19對MIA PaCa-2細胞克隆形成能力的影響

    相較于si-NC組,敲低PRPF19后MIA PaCa-2細胞形成的克隆數(shù)量顯著減少(P=0.000),見圖5。上述結(jié)果表明敲低PRPF19可以抑制胰腺癌細胞的增殖及后期的克隆形成能力。

    圖5 敲低PRPF19對胰腺癌細胞克隆形成能力的影響Figure 5 Effect of knockdown of PRPF19 on colony formation ability of pancreatic cancer cells

    2.6 敲低PRPF19對MIA PaCa-2細胞遷移和侵襲能力的影響

    與對照組相比,敲低PRPF19后MIA PaCa-2細胞遷移數(shù)量減少,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.005),見圖6。敲低PRPF19后MIA PaCa-2細胞穿過基質(zhì)膠的數(shù)量明顯下降,即侵襲能力減弱(P=0.004),見圖7。上述結(jié)果表明,敲低PRPF19可通過抑制胰腺癌細胞的遷移和侵襲能力從而參與腫瘤的生長調(diào)控。

    圖6 敲低PRPF19對胰腺癌細胞遷移能力的影響Figure 6 Effect of knockdown of PRPF19 on migration ability of pancreatic cancer cells

    圖7 敲低PRPF19對胰腺癌細胞侵襲能力的影響Figure 7 Effect of knockdown of PRPF19 on invasion ability of pancreatic cancer cells

    3 討論

    胰腺癌因其侵襲性強、進展快、治療耐藥等特點在一眾腫瘤中呈現(xiàn)出高度致命性[19]。盡管許多研究已經(jīng)揭示了胰腺癌的一些相關(guān)基因表達等分子層面的異常變化,但其具體調(diào)控機制尚不明確,致使此類腫瘤治療缺乏可用藥的分子靶點。目前臨床上,對于胰腺癌的治療仍然只能依賴吉西他濱、NaB-紫杉醇[20-22]等常規(guī)細胞毒化療藥物,效果不佳。研究顯示近5年胰腺癌患者的生存率仍然很低,不足9%[23]。因此,研究胰腺癌發(fā)生發(fā)展的分子機制以及開發(fā)有效的分子靶向藥物來對抗胰腺癌是十分必要的。目前胰腺癌的分子調(diào)控機制研究主要聚焦在腫瘤常見信號通路,如AKT/mTOR、Wnt/β-catenin信號通路等,分子也屬經(jīng)典腫瘤調(diào)控基因,在胰腺癌中不具有特異性,使胰腺癌的診療機制研究處于困境。

    以往研究發(fā)現(xiàn)PRPF19蛋白在人類諸多腫瘤中異常表達,可能作為一個潛在的癌基因發(fā)揮作用。Voglauer[11]通過使用博萊霉素或博萊霉素與BSO聯(lián)合處理SNEV(PRPF19)過表達細胞,從而誘導(dǎo)DNA損傷以及活性氧物質(zhì),并使細胞凋亡水平降低,該研究證明PRPF19具有DNA損傷修復(fù)的能力,可通過上調(diào)其表達增強細胞的抗凋亡能力,使細胞壽命延長。此外有研究[24]顯示PRPF19在腫瘤調(diào)控中可能是通過參與基因剪切來發(fā)揮作用的,而且是在mRNA剪切過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用。眾所周知,真核生物轉(zhuǎn)錄本的選擇性剪接作為一種基本生理機制,它可極大地擴展基因的編碼能力,以產(chǎn)生多樣化的蛋白質(zhì)。Inoue等[25]也發(fā)現(xiàn)糾正攜帶SF3B1突變的癌細胞當(dāng)中的BRD9(一種抑癌基因)的錯誤剪接可有效抑制腫瘤生長,因此選擇性剪接過程中的一些關(guān)鍵基因可以成為靶向癌癥治療的基礎(chǔ)。結(jié)合當(dāng)前胰腺癌的診療困境和PRPF19的異常表達可能會破壞人類的抗腫瘤機制,我們對胰腺癌中該分子相關(guān)的表達和功能影響進行了分析和初步探究。

    本研究通過不同方法從增殖、遷移和侵襲等多個層面檢測PRPF19對胰腺癌細胞的功能影響,結(jié)果顯示敲低PRPF19可抑制胰腺癌細胞的增殖、克隆形成及遷移侵襲,因此明確PRPF19可能作為癌基因在胰腺癌的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要調(diào)控作用。當(dāng)然,我們的研究僅僅揭示了PRPF19在胰腺癌中的角色,其具體調(diào)控的分子機制尚不可知,以后我們也將繼續(xù)全面探究PRPF19調(diào)控胰腺癌的具體機制,以期為胰腺癌的臨床診斷、分子治療及預(yù)后監(jiān)測等提供理論基礎(chǔ)和新視角。

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