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    室旁核TLR4阻斷改善2型糖尿病大鼠糖代謝及機制

    2023-02-28 10:03:46梁偉陳艷妹齊杰康玉明
    中國老年學雜志 2023年4期
    關(guān)鍵詞:神經(jīng)遞質(zhì)氧化應激胰島素

    梁偉 陳艷妹 齊杰 康玉明

    (1西安醫(yī)學高等??茖W校醫(yī)學技術(shù)學院,陜西 西安 710309;2西安交通大學醫(yī)學部基礎(chǔ)醫(yī)學院)

    糖尿病(DM)是以機體常年糖代謝紊亂為典型癥狀的代謝性疾病〔1,2〕。目前有證據(jù)顯示DM 及其并發(fā)癥的生理病理性發(fā)展與Toll樣受體(TLR)4密切相關(guān):DM時機體存在 TLR4 高表達,激活的 TLR4 及其相關(guān)信號通路可通過調(diào)控多種炎性細胞因子的釋放參與 DM 病理性進展,也可通過介導氧化應激和細胞異常凋亡引發(fā)DM不良轉(zhuǎn)歸〔3~5〕。特異性阻斷 TLR4 或敲除相關(guān)基因,DM 時期的胰島素抵抗得以改善〔6~8〕。然而相關(guān)研究多集中于外周,中樞研究較少。下丘腦室旁核(PVN) 是調(diào)節(jié)機體能量代謝的主要中樞核團之一〔9~12〕。然而PVN TLR4 是否參與DM不良病變,將其阻斷后能否成為治療 DM 的新靶點,目前尚未見到相關(guān)研究報道。本研究以2型DM(T2DM) 大鼠為實驗對象,通過PVN靶向給予TLR4特異性抑制劑(TAK-242),研究PVN TLR4 阻斷對T2DM大鼠糖代謝的影響,并從神經(jīng)-內(nèi)分泌角度探討可能的相關(guān)機制。

    1 材料與方法

    1.1動物及分組 健康雄性、體重160~180 g的SD大鼠由西安交通大學實驗動物中心購入?;A(chǔ)飼料飼喂大鼠1 w后,利用隨機數(shù)表法將大鼠分為:正常對照(NC+PVN vehicle)組、正常干預(NC+PVN TAK-242)組、DM(DM+PVN vehicle)組、DM干預(DM+PVN TAK-242)組。

    1.2主要試劑儀器 TAK-242購自美國MCE公司;鏈脲佐菌素(STZ)購自美國Sigma公司;葡萄糖和丙酮酸購自上海金賽醫(yī)藥化工有限公司;胰島素購自賽諾菲。大鼠腦立體定位儀MP-8003和動物手術(shù)顯微鏡 XTL-3400購自深圳瑞沃德生命科技有限公司;穩(wěn)豪/倍易型血糖儀和血糖試紙購自強生(中國)醫(yī)療器材有限公司;冷凍切片機 CM1900購自德國 LEICA;Western印跡電泳槽、轉(zhuǎn)膜機、成像分析儀等購自美國伯樂公司。

    1.3主要實驗方法

    1.3.1T2DM大鼠模型制備 高脂高糖飼料〔13〕飼喂SD大鼠4 w。飼喂結(jié)束后大鼠禁食 12 h,腹腔注射小劑量 STZ(35 mg/kg) 1次,3 d 后經(jīng)尾靜脈采血檢測大鼠空腹血糖(FBG),血糖水平 ≥11.1 mmol/L的大鼠認為建模成功。正常組大鼠則飼喂正常飼料,根據(jù)體重給予同等體積比例的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液。

    1.3.2PVN插管術(shù)及給藥 大鼠稱重后施行腹腔麻醉(鹽酸氯胺酮90 mg/kg 和乙酰丙嗪7.5 mg/kg),剃毛后將頭部固定在腦立體定位儀上,參照 Paxinos 和 Watson 的大鼠腦立體定位圖譜定位PVN區(qū)域(前囟后 1.6~2.1 mm,中線兩側(cè)0.3~0.5 mm,垂直7.0~8.0 mm),將套管植入大鼠PVN中,并利用樹脂膠和螺釘在頭蓋骨上固定,微型滲透微泵(2006型)連接PVN套管后埋入皮下。手術(shù)成功率約為68%,術(shù)后大鼠分籠飼養(yǎng),以 0.11 μl/h連續(xù)28 d輸注TAK-242或人工腦嵴液(ACSF)。經(jīng)PVN輸注治療的大鼠用于研究分析。

    1.3.3大鼠體重和FBG監(jiān)測 在大鼠開始給藥后每周固定時間測量各組體重和FBG。利用體重計稱取大鼠體重;大鼠禁食不禁水12 h,尾靜脈取血測量大鼠FBG。測量4 w。

    1.3.4大鼠糖代謝水平監(jiān)測 葡萄糖耐量試驗(GTT)、胰島素耐量試驗(ITT)和丙酮酸耐量試驗(PTT)檢測各組大鼠體內(nèi)糖代謝水平。大鼠禁食不禁水 12 h,腹腔注射15%葡萄糖(2 g/kg)、胰島素(1 U/kg)、丙酮酸(2 g/kg),鼠尾靜脈采血記錄各組大鼠0、15、30、60、120 min 的血糖值,計算相對血糖變化比值(相對血糖變化=即時血糖/0 min血糖),以算出的數(shù)值為統(tǒng)計值繪制曲線,以血糖曲線下面積進行統(tǒng)計學意義比較。

    1.3.5腎交感神經(jīng)放電(RSNA)檢測 大鼠稱重后施行腹腔麻醉,剃毛、固定、消毒后,右側(cè)腰部縱形切口后清楚暴露腎臟,分離腎交感神經(jīng)并浸潤石蠟油后,將分離出的腎交感神經(jīng)懸空掛于銀絲電極,利用BL-420S 監(jiān)測記錄RSNA。實驗結(jié)束時,滴加硝普鈉測量最大RSNA,后切斷腎交感神經(jīng),記錄背景噪音。實際RSNA減去背景噪音后占最大RSNA的百分比,用作統(tǒng)計學意義比較。

    1.3.6Western印跡檢測 Western印跡檢測PVN中還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)氧化酶(NOX)4(Santa Cruz)、Cu-Zn 超氧化物歧化酶(SOD,Santa Cruz)、酪氨酸羥化酶(TH,Abcam)、谷氨酸脫羧酶67(GAD67,Abcam)蛋白表達。參照Kang等〔14〕所述提取PVN中總蛋白,將稀釋的總蛋白載入十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)上,電泳分離目的蛋白,采用半干轉(zhuǎn)的方法將目的蛋白轉(zhuǎn)置聚偏氟乙烯(PVDF)膜上,5%牛血清白蛋白封閉后孵育一抗(β-actin 1∶2 000,NADPH 1∶1 000,Cu-Zn SOD 1∶800,TH 1∶1 000,GAD67 1∶800)過夜,磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌(6 min×4次),用稀釋的二抗(1∶2 000)孵育2 h,洗滌后滴加現(xiàn)配的電化學發(fā)光(ECL)液并置于Western成像分析儀中發(fā)光、觀察并保存結(jié)果。采用 NIH ImageJ軟件進行圖像灰度分析,以目的蛋白占β-actin的百分比用作統(tǒng)計學意義比較。

    1.3.7二氫乙啶(DHE)、免疫熒光和免疫組化 參照Kang〔14〕所述收集各組大鼠PVN區(qū)域的腦部切片,DHE(sigma,1∶300)檢測活性氧簇(ROS)水平,免疫熒光檢測TLR4(abcam,1∶50)和TH(1∶200)陽性神經(jīng)元表達,免疫組化檢測神經(jīng)元激活標志物(c-FOS,Santa Cruz,1∶100)、NF-κB通路激活標志物(p-IKKβ,Santa Cruz,1∶100)。在Nikon 熒光顯微鏡下觀察組織各抗體陽性神經(jīng)元數(shù)量表達并拍照記錄。對腦組織切片PVN核團部位5個視野進行熒光強度分析作為DHE數(shù)據(jù)結(jié)果,對腦組織切片PVN核團部位5個視野進行TLR4、TH、c-FOS、p-IKKβ陽性神經(jīng)元計數(shù)作為免疫熒光和免疫組化數(shù)據(jù)結(jié)果。

    1.4統(tǒng)計學方法 采用SPSS13.0 統(tǒng)計軟件進行兩兩比較的方差分析,所有定量資料正式統(tǒng)計分析之前,均經(jīng)正態(tài)性檢驗和方差齊性檢驗。

    2 結(jié) 果

    2.1慢性輸注TAK-242對T2DM大鼠PVN中TLR4陽性神經(jīng)元的影響 如圖1、表1所示:與NC+PVN vehicle和NC+PVN TAK-242組相比,DM+vehicle和DM+TAK-242組PVN中TLR4陽性神經(jīng)元顯著高表達(P<0.05)。DM+PVN TAK-242相比于DM+PVN vehicle組,PVN中TLR4陽性神經(jīng)元數(shù)目顯著降低(P<0.05),表明TLR4被有效阻斷。

    圖1 免疫熒光檢測各組PVN中TLR4 陽性神經(jīng)元表達(×200)

    2.2PVN阻斷TLR4對T2DM大鼠體重的影響 如表1所示:DM+PVN vehicle組和 DM+PVN TAK-242組給藥后2~4 w體重較NC+PVN vehicle和NC+PVN TAK-242組顯著下降(P<0.05)。DM+PVN TAK-242組較DM+PVN vehicle組給藥后體重下降減緩,并在給藥后4 w時體重有顯著差異(P<0.05)。表明PVN靶向給TAK-242可有效控制T2DM大鼠體重的減少。

    2.3PVN阻斷TLR4對T2DM大鼠空腹血糖的影響 如表2所示:DM+PVN vehicle組和 DM+PVN TAK-242組較NC+PVN vehicle組和NC+PVN TAK-242組給藥期間FBG顯著升高(P<0.01)。DM+PVN TAK-242組較DM+PVN vehicle組,慢性輸注TAK-242后3~4 w時,F(xiàn)BG并未繼續(xù)升高并且逐漸趨于平穩(wěn),但血糖值沒有出現(xiàn)顯著差異,表明PVN給予TAK-242一定程度上可控制T2DM大鼠FBG的上升。

    2.4PVN阻斷TLR4對T2DM大鼠糖代謝的影響 與NC+PVN vehicle和NC+PVN TAK-242組比較,DM+PVN vehicle組和 DM+PVN TAK-242組在空腹注射15%葡萄糖60 min和120 min時,相對血糖變化值出現(xiàn)顯著性差異(P<0.05),在空腹注射胰島素30 min、60 min和120 min時,相對血糖變化值出現(xiàn)顯著性差異(P<0.05),表明T2DM大鼠體內(nèi)存在胰島素抵抗。DM+PVN TAK-242組相比DM+PVN vehicle組,在空腹注射15%葡萄糖120 min時相對血糖變化值出現(xiàn)顯著性差異(P<0.05),表明PVN給予TAK-242可有效增加T2DM大鼠機體內(nèi)胰島素敏感性,抑制胰島素抵抗,然而在空腹注射胰島素后的各時間點的相對血糖變化值無統(tǒng)計學差異,表明PVN給予TAK-242對T2DM大鼠肌肉等組織攝取葡萄糖的敏感性改善作用不顯著。與NC+vehicle和NC+TAK-242組比較,DM+PVN vehicle和 DM+PVN TAK-242組在空腹注射丙酮酸60 min和120 min時,相對血糖變化值出現(xiàn)顯著性差異(P<0.05),表明T2DM大鼠體內(nèi)存在糖異生。與DM+PVN vehicle組比較,DM+PVN TAK-242組在空腹注射丙酮酸后的120 min相對血糖變化值出現(xiàn)顯著性差異(P<0.05),表明PVN給予TAK-242可顯著降低T2DM大鼠體內(nèi)的糖異生能力。見圖2。

    表1 各組PVN中TLR4陽性神經(jīng)元表達及給藥后不同時間體重比較

    表2 各組給藥不同時間FBG比較

    (a)各組不同時刻GTT變化;(b) 各組不同時刻葡萄糖耐量變化;(c)各組不同時刻PTT變化; NC+PVN vehicle組, NC+PVN TAK-242組, DM+PVN vehicle組, DM+PVN TAK-242組圖2 室旁核TLR4阻斷對T2DM大鼠胰島素抵抗的影響

    2.5PVN阻斷TLR4對T2DM大鼠腎交感神經(jīng)活性的影響 與NC+vehicle和NC+TAK-242組比較,DM+PVN vehicle和 DM+PVN TAK-242組RSNA最大百分比顯著增加(P<0.05),表明T2DM大鼠體內(nèi)存在交感神經(jīng)激活;與DM+PVN vehicle 組比較,DM+PVN TAK-242 組RSNA最大百分比顯著降低(P<0.05),表明PVN阻斷TLR4可降低T2DM大鼠交感神經(jīng)活性。見表3、圖3。

    表3 各組RSNA最大百分比、PVN中NOX4、Cu-Zn SOD蛋白相對表達、ROS活性、TH及 GAD67蛋白表達

    圖3 各組RSNA

    2.6PVN阻斷TLR4對T2DM大鼠中樞氧化應激的影響 與NC+vehicle和NC+TAK-242組比較,DM+PVN vehicle和 DM+PVN TAK-242組NOX4 蛋白表達水平顯著升高,Cu-Zn SOD 蛋白表達水平顯著降低,ROS活性顯著升高(P<0.05),表明T2DM

    大鼠PVN中存在氧化應激。與DM+vehicle組比較,DM +TAK-242組NOX4 蛋白表達和ROS活性顯著降低(P<0.05)。表明PVN阻斷TLR4可降低T2DM大鼠中樞氧化應激。見表3、圖4、圖5。

    圖4 各組PVN中NOX4、Cu-Zn SOD蛋白表達

    圖5 各組PVN中ROS活性表達(DHE,×40)

    2.7PVN阻斷TLR4對T2DM大鼠中樞神經(jīng)遞質(zhì)的影響 與NC+vehicle和NC+TAK-242組比較,DM+PVN vehicle和 DM+PVN TAK-242組TH蛋白表達水平顯著升高,GAD67蛋白表達水平顯著降低,TH陽性神經(jīng)元數(shù)量顯著增多(P<0.05)。表明T2DM大鼠PVN中樞存在興奮性神經(jīng)遞質(zhì)和抑制性神經(jīng)遞質(zhì)的失平衡。與DM+vehicle組比較,DM+TAK-242組TH蛋白表達水平降低,GAD67蛋白表達水平升高,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);TH陽性神經(jīng)元數(shù)量顯著減少(P<0.05),表明PVN阻斷TLR4可改善T2DM大鼠中樞神經(jīng)遞質(zhì)的失平衡,進而降低外周交感神經(jīng)活性。見表3、圖6、圖7。

    圖6 各組PVN中TH、GAD67蛋白表達

    2.8PVN阻斷TLR4對T2DM大鼠中樞神經(jīng)元凋亡的影響 DM+PVN vehicle組和 DM+PVN TAK-242組相比于NC+vehicle和NC+TAK-242組PVN 中 P-IKKβ、c-FOS陽性神經(jīng)元數(shù)目明顯增多(P<0.05),提示T2DM時 PVN 神經(jīng)元中 TLR4/NF-κB信號通路被顯著激活,神經(jīng)元出現(xiàn)大范圍凋亡;DM+PVN TAK-242組P-IKKβ、c-FOS陽性神經(jīng)元數(shù)目顯著低于DM+PVN vehicle組(P<0.05)。見圖8、表4。

    圖7 免疫熒光檢測各組PVN中TH陽性神經(jīng)元表達(×400)

    圖8 免疫組化檢測各組PVN中P-IKKβ、c-FOS陽性神經(jīng)元表達

    表4 各組PVN中P-IKKβ、c-FOS陽性神經(jīng)元 表達

    3 討 論

    本研究結(jié)果表明PVN TLR4阻斷改善T2DM大鼠糖代謝。PVN是交感神經(jīng)系統(tǒng)重要的整合中樞,直接或者間接參與交感神經(jīng)的調(diào)控〔14~16〕,提示PVN可能通過調(diào)控交感神經(jīng)活性影響DM進程。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),T2DM 大鼠腎交感神經(jīng)存在過度激活,證明了外周交感神經(jīng)激活是 T2DM 發(fā)病的重要機制之一,這與以往學者的觀點是相一致的〔17,18〕;特異性阻斷T2DM大鼠PVN TLR4后,可顯著降低外周交感神經(jīng)活性,改善T2DM大鼠糖代謝。

    交感神經(jīng)活性受中樞各種神經(jīng)內(nèi)分泌因素調(diào)控。氧化應激是ROS蓄積損傷組織的病理狀態(tài)。機體ROS的產(chǎn)生主要依賴機體細胞利用葡萄糖時進行的氧化磷酸化反應,NADPH參與其中主要擔當遞氫體的角色;ROS的清除則主要依賴于SOD、過氧化氫酶(CAT)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-px)等抗氧化酶系。本研究結(jié)果說明PVN TLR4阻斷能降低中樞氧化應激,進而降低交感神經(jīng)活性。

    中樞神經(jīng)遞質(zhì)的異常紊亂可以造成機體交感神經(jīng)活性發(fā)生異常。去甲腎上腺素是一種重要的興奮性神經(jīng)遞質(zhì),體內(nèi)調(diào)控去甲腎上腺素合成的關(guān)鍵限速酶之一是TH,腦內(nèi)TH含量可以反映去甲腎上腺素能神經(jīng)纖維終末中樞分布情況。γ-氨基丁酸是一種重要的抑制性神經(jīng)遞質(zhì),始終貫穿于神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育過程中并控制γ-氨基丁酸合成的關(guān)鍵限速酶之一是GAD67。本研究結(jié)果表明,T2DM大鼠PVN內(nèi)興奮性神經(jīng)遞質(zhì)和抑制性神經(jīng)遞質(zhì)發(fā)生紊亂;PVN TLR4阻斷對中樞神經(jīng)遞質(zhì)有影響,但不明顯。

    中樞神經(jīng)元非正常、大范圍的凋亡是DM引發(fā)的神經(jīng)退行性疾病的重要發(fā)病機制〔19,20〕。TLR4/NF-κB信號通路激活可誘導細胞凋亡〔20〕,P-IKKβ是NF-κB活化經(jīng)典途徑的關(guān)鍵亞基;神經(jīng)元c-Fos表達一定程度上可預測細胞凋亡即將發(fā)生。本研究發(fā)現(xiàn)T2DM大鼠相比于正常大鼠TLR4/NF-κB信號通路過度激活、PVN神經(jīng)元凋亡異常。特異性阻斷T2DM大鼠室旁核TLR4后發(fā)現(xiàn),T2DM大鼠中樞TLR4/NF-κB信號通路不能建立,PVN神經(jīng)元異常凋亡現(xiàn)象被逆轉(zhuǎn)。

    綜上,下丘腦PVN TLR4阻斷可一定程度改善T2DM大鼠糖代謝,其可能通過抑制中樞氧化應激和神經(jīng)元凋亡,平衡興奮性神經(jīng)遞質(zhì)和抑制性神經(jīng)遞質(zhì),降低外周交感神經(jīng)活性機制展開。本研究為中樞使用TLR4特異性抑制劑治療T2DM提供了相應實驗證據(jù)。

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