疑似蛇毒液樣品的納升級超高效液相色譜-高分辨質(zhì)譜分析鑒定

李澤華,王 闖,2,徐 斌,陳 佳,張 瑛,郭 磊*,謝劍煒(.軍事科學院軍事醫(yī)學研究院毒物藥物研究所,抗毒藥物與毒理學國家重點實驗室,北京 00850;2.中央民族大學藥學院,民族醫(yī)藥教育部重點實驗室,北京 0008;.北京市公安司法鑒定中心,法庭毒物分析公安部重點實驗室,北京 0092)

世界范圍內(nèi),疑似蛇毒中毒事件經(jīng)常發(fā)生,其中蛇毒確證鑒定、種屬來源剖析成為該類事件判定的關(guān)鍵。每年多達270萬人因毒蛇咬傷中毒,其中8.1～13.8萬人因蛇咬傷致死[1,2]。世界上已發(fā)現(xiàn)蛇類3 000余種,其中毒蛇約有650種,對人體有致命威脅的毒蛇300種。我國有蛇類210種,隸屬9科53屬,其中毒蛇有100多種[3],但劇毒蛇類僅10余種,主要為眼鏡蛇、蝮蛇、竹葉青蛇、銀環(huán)蛇等[4]。蛇毒是毒蛇從毒腺中分泌出來的復雜混合物,含有蛋白質(zhì)、多肽、脂類、核苷、糖類、氨基酸、胺類、金屬離子等,主要成分則為蛋白質(zhì)和多肽[5];按毒理學分類可分為神經(jīng)毒素、抗凝及促凝血毒素、心臟毒素等各種毒素蛋白以及酶。蛋白質(zhì)和肽是蛇毒發(fā)揮毒性和藥性作用的關(guān)鍵組分。美國食品藥物管理局(Food and Drug Administration,FDA)已批準源自蛇毒的抗血栓藥鹽酸替羅非班注射液和降壓藥卡托普利上市[6]。目前蛇毒在抗腫瘤、抗菌、抗病毒方面的作用也逐漸引起人們的重視。近日Freire等研究發(fā)現(xiàn)巴西矛頭蝮蛇毒的衍生物可以抑制非洲綠猴腎細胞(Vero細胞)中新冠病毒的復制,抑制率可達75%[7]?？焖?、準確的蛇毒蛋白質(zhì)分析鑒定方法的建立,對蛇毒中毒司法鑒定、中毒救治以及蛇毒藥物的研發(fā)具有重要意義。

針對蛇毒鑒定,其經(jīng)典分析方法主要為針對DNA或蛋白質(zhì)的生化或免疫測定,例如聚合酶鏈反應、凝集測試、酶聯(lián)免疫吸附檢測、熒光免疫檢測、生物傳感等[8]。但均存在假陽性率高、靈敏度低、抗干擾能力差、種屬區(qū)分度有限等局限性。近年來,隨著質(zhì)譜技術(shù)的飛速發(fā)展,蛇毒毒液蛋白質(zhì)組學研究亦受到重視[9]。目前,蛇毒蛋白質(zhì)組學研究步驟分為粗毒分離、質(zhì)譜分析及生物信息學鑒定3個部分。粗毒分離的方法包括二維電泳、尺寸排阻色譜(SEC)及高效液相色譜等;質(zhì)譜分析方法包括基質(zhì)輔助激光解吸電離-飛行時間質(zhì)譜、液相色譜-質(zhì)譜(LC-MS)、電噴霧-傅里葉變換離子回旋共振質(zhì)譜等[10];而基于MS-Fit或Mascot搜索引擎訪問相應的蛋白質(zhì)網(wǎng)站,對所獲取質(zhì)譜肽段序列查詢比對,則是生物信息學鑒定的主要手段。迄今,利用蛋白質(zhì)組學技術(shù)已經(jīng)對游蛇科、眼鏡蛇科、蝰科中的58個屬100多種(亞種)蛇毒進行了研究,鑒定出了10多個蛋白質(zhì)家族[11]。根據(jù)數(shù)據(jù)采集方式,可將蛋白質(zhì)組學分為非靶向蛋白質(zhì)組學和靶向蛋白質(zhì)組學兩類。前者信息最為豐富,而后者具有更高的特異性和靈敏度。

目前法醫(yī)物證鑒定時基于蛋白質(zhì)組學的種屬鑒定尚處于起步階段。主要原因如下：一方面,蛋白質(zhì)組學的分析鑒定本質(zhì)是基于質(zhì)譜斷裂規(guī)律和理論計算的合理推測,但多肽序列的二級質(zhì)譜譜圖具有高度復雜性,法醫(yī)蛋白質(zhì)組學中基于MS/MS鑒定肽段時主要使用非靶向采集后數(shù)據(jù)庫匹配的途徑,具有一定的錯誤率。中毒樣品還可能存在中毒機體自身種屬蛋白質(zhì)的極大干擾;另一方面,針對未知物質(zhì)的確證鑒定,通常采用與標準品(參考品)進行比較的方式[12,13],但目前蛇毒的參考品仍缺乏。

本研究采用液相色譜-高分辨質(zhì)譜技術(shù),基于納升級超高效液相色譜-四極桿-靜電場軌道阱高分辨質(zhì)譜(Nano LC-MS/HRMS)系統(tǒng),針對5個疑似蛇毒樣品,經(jīng)胰蛋白酶溶液內(nèi)酶解后,首先以非靶向模式采集數(shù)據(jù)后進行蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫比對,獲得未知樣品中蛋白質(zhì)的物種來源信息;然后通過控制肽譜匹配度(PSM)、肽段錯誤發(fā)現(xiàn)率(FDR)值和特征肽段的數(shù)量來提高蛋白質(zhì)鑒定的準確度;再采用靶向采集模式對推斷的蛋白質(zhì)進行驗證,最終成功鑒定出5個疑似蛇毒樣品均含有來源于中華眼鏡蛇(Najaatra)的蛇毒。該分析策略簡便、嚴格、可靠性強,可為蛇毒中毒的司法案件鑒定、臨床中毒救治以及蛇毒藥物研發(fā)提供有效的技術(shù)支持。

1 實驗部分

1.1 儀器與試劑、材料

EASY-nLC 1200納升液相色譜、Orbitrap Exploris 480質(zhì)譜儀購自美國Thermo Scientific公司,AKTA Pure 25色譜系統(tǒng)購自美國Cytiva公司,十萬分之一天平R200 D購自德國Sartorious公司。ProteaseMAX表面活性劑購自美國Promega公司,胰蛋白酶(測序級)、乙腈(色譜純)、二硫蘇糖醇、碘乙酰胺均購自美國Thermo Scientific公司,低相對分子質(zhì)量標準蛋白質(zhì)(包含抑肽酶6.5 kDa、核糖核酸酶A 13.7 kDa、碳酸酐酶29 kDa、卵清蛋白43 kDa、伴清蛋白75 kDa 5種蛋白質(zhì))購自美國Citiva公司,三氟乙酸、甲酸(分析純)購自北京百靈威科技有限公司,碳酸氫銨(分析純)購自國藥集團化學試劑有限公司,實驗用水為Milli-Q A10型超純水系統(tǒng)(美國Millipore公司)制備的超純水(電阻率為18.2 MΩ·cm)。5個疑似蛇毒樣品均為同一種蛇毒液污染樣品,來自北京市公安局司法鑒定中心(見表1)。

表1 疑似蛇毒樣品的性狀Table 1 Characters of suspected snake venom samples

1.2 實驗條件

1.2.1Nano LC-MS/HRMS條件

脫鹽富集柱:Thermo Acclaim PepMapTM100柱(2 cm×75 μm,3 μm);分離柱:Thermo Acclaim PepMapTMRSLC納升分析柱(25 cm×75 μm,2 μm)。流動相A為0.1%(v/v)甲酸水溶液,流動相B為0.1%甲酸水溶液-乙腈(1∶4,v/v);洗脫程序:0～5 min,4%B～10%B;5～63 min,10%B～30%B;63～72 min,30%B～40%B;72～80 min,40%B～100%B。流速為300 nL/min;進樣量為1 μL。

離子源溫度:320 ℃;毛細管電壓:3.6 kV;輔助氣溫度:320 ℃;鞘氣流速:10 L/h;輔助氣流速:30 L/h;采集模式:全掃描-數(shù)據(jù)依賴型MS/MS(Full MS/dd MS2)和平行反應監(jiān)測(PRM);碰撞能量(CE):15、27.5、40 eV;采集范圍:200～2 200 Da;電離模式:ESI正離子模式;一級質(zhì)譜分辨率為35 000 FWHM,二級質(zhì)譜分辨率為17 500 FWHM。

1.2.2Proteome Discover參數(shù)設置

搜索引擎:SequestHT;數(shù)據(jù)庫:Swiss-Prot全庫、蛇亞目(Serpentes)、游蛇科(Colubroidea)、眼鏡蛇科(Elapidae)、眼鏡蛇亞科(Elapinae)、眼鏡蛇屬(Naja)蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫;胰蛋白酶(全切);最小肽段長度:6個氨基酸;最大肽段長度:144個氨基酸;最大漏切位點:2;碎片離子的質(zhì)量誤差:0.02 Da;肽段的質(zhì)量誤差:5×10-6(5 ppm);PSM和肽段置信度均為High,肽段的FDR設為小于0.01。

1.3 實驗步驟

1.3.1樣品前處理

5個樣品,每個約含0.8～1 mg蛋白質(zhì),分別加入2 mL 10 mmol/L磷酸鹽緩沖液(PBS),振搖1 min后14 000 g離心取上清液凍干備用。

1.3.2尺寸排阻色譜

采用Superdex 200 increase 10/300 GL預裝柱(Cytiva公司)進行分子尺寸排阻色譜分離。對預裝柱進行平衡后,利用10 mmol/L PBS以0.5 mL/min的流速對5個樣品凍干粉的PBS溶液進行洗脫,收集洗脫得到的各個組分,凍干備用,蛋白質(zhì)含量由280 nm處的峰高度估算得到(50 mAU=0.2 mg)。

1.3.3溶液胰蛋白酶酶切

取約100 μg樣品,加入2 μL 1% ProteaseMAX表面活性劑后,加入250 mmol/L 碳酸氫銨使其終濃度為50 mmol/L。加入1 μL 0.5 mol/L二硫蘇糖醇56 ℃孵育20 min,冷卻至室溫后加入2.7 μL 0.55 mol/L碘乙酰胺,室溫避光孵育15 min。向上述孵育體系中加入1 μL 1% ProteaseMAX表面活性劑和1.8 μL胰蛋白酶(樣品與胰蛋白酶的質(zhì)量比為1∶50),于37 ℃孵育3 h。加入三氟甲酸至終濃度為0.1%(v/v),室溫孵育5 min后終止反應。加入4倍體積的甲醇-乙腈(1∶3,v/v)混合液渦旋1 min后,14 000 g離心取上清液濃縮至干,以0.1%甲酸水溶液復溶至50 μL。

1.3.4Nano LC-MS/HRMS分析鑒定

樣品經(jīng)溶液內(nèi)酶解處理后,在Nano LC-MS/HRMS的Full MS/dd MS2模式下進行數(shù)據(jù)采集。將采集的數(shù)據(jù)信息導入Proteome Discover軟件(ver.2.5),利用SequestHT搜索引擎在Swiss-Prot蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫中搜尋匹配相關(guān)蛋白質(zhì),給出的信息包括匹配的蛋白質(zhì)和肽段、肽段覆蓋率、SequestHT評分以及與數(shù)據(jù)庫相匹配的y+、b+離子等信息[14]。

圖1 5個樣品以10 mmol/L PBS洗脫的SEC色譜圖Fig.1 Size exclusion chromatograms (SEC) of the five samples eluted by 10 mmol/L phosphate-buffered saline

2 結(jié)果與討論

2.1 質(zhì)譜分析前的分離分析

進行質(zhì)譜分析前,對樣品進行適當?shù)姆蛛x純化是一種獲取高蛋白質(zhì)組覆蓋范圍、提高蛋白質(zhì)鑒定數(shù)量的有效方式[15]。蛇毒的組成豐富、多樣,且由于新鮮的蛇毒含有65%～80%的水分,新鮮蛇毒樣品并不十分穩(wěn)定,多數(shù)新鮮蛇毒室溫下容易發(fā)生降解變質(zhì)[6]。在目前常見的蛇毒分離途徑[8]中,SEC簡捷、快速、載樣量高,一般在低溫下進行分離,有利于保持樣品的穩(wěn)定性[16]。我們即采用SEC對5個樣品進行了分離。如圖1所示,樣品均可分離得到3個譜峰且對應的洗脫體積基本一致。與低相對分子質(zhì)量的標準蛋白質(zhì)比較,5個樣品中的蛋白質(zhì)質(zhì)量范圍均小于43 kDa,多數(shù)蛋白質(zhì)分布于6.5～29 kDa范圍內(nèi),少量蛋白質(zhì)小于6.5 kDa,這與蛇毒中大量的蛋白質(zhì)為低相對分子質(zhì)量蛋白質(zhì)這一特征相符合[17]。

近年來Nano LC在蛋白質(zhì)組學領(lǐng)域成為主要的分離手段,其流速為幾十到幾百nL/min,色譜柱單位截面積的進樣濃度大于常規(guī)色譜柱,樣品的稀釋效應低,展現(xiàn)出更高的靈敏度[18]。因此,本研究采用Nano LC代替了UPLC用于質(zhì)譜前酶解肽段的分離,針對樣品E,考察了60、90、120 min 3個梯度,與Swiss-Prot數(shù)據(jù)庫比對后分別可匹配到82、87和83種蛋白質(zhì),我們在此選擇90 min這一梯度,為法醫(yī)蛋白質(zhì)組學中未知樣品的鑒定提供了更豐富的信息。

2.2 非靶向蛋白質(zhì)組學鑒定

法醫(yī)蛋白質(zhì)組學中未知樣本的鑒定最具挑戰(zhàn)。經(jīng)數(shù)據(jù)庫搜索匹配來識別多肽進行蛋白質(zhì)鑒定時,數(shù)據(jù)庫的選擇嚴重影響檢測到的蛋白質(zhì)數(shù)量和種類。在生物醫(yī)學蛋白質(zhì)組學研究中常用的解決方案是將蛋白質(zhì)組學與基因組學相結(jié)合,基因組學可提供樣本匹配的蛋白質(zhì)序列數(shù)據(jù)庫用于數(shù)據(jù)庫搜索匹配[19,20]。但當未聯(lián)合測定基因組時,盡可能獲取豐富信息的蛋白質(zhì)組數(shù)據(jù)就成為先決條件。

我們首先采用了Full MS/dd MS2非靶向數(shù)據(jù)采集模式,獲得樣品中肽段的精確相對分子質(zhì)量以及部分碎片信息,隨后將其導入Proteome Discover軟件,利用SequestHT搜索引擎進行蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫匹配。對于來自5個樣品的15個SEC組分,分別進行多次蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫搜索匹配,每次根據(jù)上一次的搜庫結(jié)果不斷縮小數(shù)據(jù)庫規(guī)模,以提高推斷未知樣品蛋白質(zhì)物種來源的準確度。大型數(shù)據(jù)庫的搜索匹配可提供樣本最豐富的信息,但過多與樣品不相關(guān)的蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)會增加假陽性率,而本研究中采用的“減小數(shù)據(jù)庫規(guī)模將多肽分配到適當?shù)姆诸惣墑e”這一途徑可解決這一問題。

另外,從PSM、肽段置信度和特征肽段數(shù)目方面,進一步提高未知樣品中蛋白質(zhì)物種來源的推斷準確度。國際人類蛋白質(zhì)組組織[21]和國際禁止化學武器組織[22]提出的指南中,分別明確強調(diào)了人類蛋白質(zhì)和蓖麻毒素法醫(yī)檢測時特征肽段的重要性,且均規(guī)定至少需要兩條特征肽段來進行蛋白質(zhì)鑒定。因此,參考上述指南,我們將PSM和肽段的FDR值控制在1%以下,特征肽段的數(shù)目≥2,符合目前蛋白質(zhì)鑒定中的較嚴格標準。

首先搜索匹配了經(jīng)驗證和注釋的涵蓋所有物種蛋白質(zhì)的Swiss-Prot數(shù)據(jù)庫,去除污染物庫后所有特征肽段數(shù)目≥2的蛋白質(zhì)其物種來源均為蛇,15個組分得到的蛋白質(zhì)總數(shù)為84。將數(shù)據(jù)再次提交至涵蓋所有與蛇相關(guān)蛋白質(zhì)的蛇亞目數(shù)據(jù)庫,所有特征肽段數(shù)目≥2的蛋白質(zhì)其物種來源均為游蛇科,得到的蛋白質(zhì)總數(shù)為117。再次將數(shù)據(jù)提交至涵蓋所有游蛇科相關(guān)蛋白質(zhì)的游蛇科數(shù)據(jù)庫,發(fā)現(xiàn)所有特征肽段數(shù)目≥2的蛋白質(zhì)其物種來源均為眼鏡蛇科,得到的蛋白質(zhì)總數(shù)為114。

圖2 5個樣品的蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫匹配結(jié)果Fig.2 Results of protein database matching of the five samples The sections are named by the sample number-SEC eluted peak number;for example,A-p1 represents the first SEC eluted peak of sample A.

如圖2所示,搜索Elapidae數(shù)據(jù)庫可匹配到Acanthophiinae、Bungarinae、Elapinae、Laticaudinae、Notechinae 5個眼鏡蛇亞科的蛋白質(zhì)125種,其中Elapinae亞科的蛋白質(zhì)數(shù)量為107種,占鑒定蛋白質(zhì)總數(shù)的85%以上。因此,我們將數(shù)據(jù)庫縮小至涵蓋所有眼鏡蛇亞科相關(guān)蛋白質(zhì)的Elapinae數(shù)據(jù)庫,15個組分可匹配到Naja、Ophiophagus、Dendroaspispolylepis、Hemachatus、Walterinnesia、Micrurus6個屬的蛋白質(zhì)共113種,其中Naja屬的蛋白質(zhì)數(shù)量為100種,占鑒定蛋白質(zhì)總數(shù)的88%以上。最后,將數(shù)據(jù)庫鎖定至涵蓋所有眼鏡蛇屬相關(guān)蛋白質(zhì)的Naja數(shù)據(jù)庫,其中特征肽段數(shù)目≥2的蛋白質(zhì)其物種來源可歸屬至Najaatra、Najakaouthia、Najanaja、Najapallida、Najamossambica、Najasagittifera、Najasputatrix、Najamelanoleuca、Najaoxiana、Najaannulifera、Najahajehaje、Najasamarensis12個種,其中物種來源歸屬為Najaatra的蛋白質(zhì)數(shù)目最多,有32種。因此推斷樣品含有來自Najaatra的蛇毒。

從以上逐級收縮匹配到的蛋白質(zhì)數(shù)量可以看出,蛇物種數(shù)據(jù)庫匹配到的蛋白質(zhì)數(shù)量反而小于蛇亞目、游蛇科、蛇亞科等數(shù)據(jù)庫,原因在于當設定同樣的FDR閾值范圍(<1%)時,數(shù)據(jù)庫越大,誘餌庫也越大,導致符合FDR閾值的PSM和肽段數(shù)目降低,鑒定到的蛋白質(zhì)數(shù)目可能相應減少。

圖3 3個SEC洗脫峰鑒定到的來自Naja atra的蛋白質(zhì)Fig.3 Identified proteins of Naja atra from the three SEC elution peaks

對鑒定到的蛋白質(zhì)進行比較(見圖3),5個樣品的SEC第1、2、3個洗脫峰分別鑒定到來自Najaatra的26、26、22種蛋白質(zhì),其中10、5、5種蛋白質(zhì)為共有蛋白質(zhì);5個樣品的3個SEC洗脫峰共鑒定到32種蛋白質(zhì),其中D3TTC2、D5LMJ3、Q7T1K6、Q9DEQ3、Q9YGI4為共同鑒定到的蛋白質(zhì)。圖4列舉了其經(jīng)非靶向蛋白質(zhì)組學鑒定到的蛋白質(zhì)種類及其Sequest得分。

圖4 5個樣品的SEC洗脫峰鑒定到的蛋白質(zhì)Fig.4 Identified proteins from SEC elution peaks of the five samplesThe score is the scoring of the proteins identified in each component that matched the Naja database in the Sequest engine.

2.3 靶向蛋白質(zhì)組學鑒定

在法醫(yī)蛋白質(zhì)組學領(lǐng)域,進行未知樣品的靶向蛋白質(zhì)組學研究需要通過非靶向蛋白質(zhì)組學提供樣品所含的蛋白質(zhì)信息或?qū)奈锓N信息。這種非靶向篩查與靶向驗證相結(jié)合的分析策略可提高未知樣品中蛋白質(zhì)鑒定的準確度[14]。在確認樣品的蛋白質(zhì)或者物種來源信息后,常選取與目標蛋白質(zhì)的特征肽段保留時間和MS/MS信息比對的策略進行樣品中蛋白質(zhì)的分析鑒定。

考慮到多肽的MS/MS譜圖復雜性高,且相近物種存在多種同源性多肽的現(xiàn)象,一條多肽特征肽段并不足以歸屬到特征蛋白質(zhì)。在此,我們對非靶向篩查鑒定到的32種來自Najaatra的蛋白質(zhì)采用每種蛋白質(zhì)選取兩條特征肽段的PRM模式進行靶向驗證。國際禁化武組織指南認為[22],當兩條特征肽段均滿足至少75%的與理論碎片相匹配的y+和b+離子的Δm/z小于5 ppm時,可確證相應蛋白質(zhì)的存在。我們即在此采用該嚴格標準以盡可能排除假陽性。圖5展示了進行PRM靶向驗證的蛋白質(zhì)的提取離子流色譜圖。每個樣品中的3個SEC組分在非靶向篩查中鑒定到的全部蛋白質(zhì)均符合該標準。因此,進一步確證出5個樣品中蛋白質(zhì)的物種來源均為Najaatra。

在靶向驗證中,特征肽段的界定與選擇以及使用兩條特征肽段對蛋白質(zhì)進行確證是否足夠充分或過于嚴格等問題值得后續(xù)探究。目前,這種方法可能存在兩方面的問題,一是低估非特征肽段所提供的信息,二是肽段的特征性與選取的蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫相關(guān)。當只考慮人類蛋白質(zhì)組時,一種特定人類蛋白質(zhì)的特征肽段可能在哺乳動物中廣泛共享[23]。此外,隨著測序技術(shù)的發(fā)展,蛋白質(zhì)序列數(shù)據(jù)庫將不斷擴大,新增加的蛋白質(zhì)亦會造成原有特征肽段可能失去其特征性[13]。

我們對經(jīng)靶向驗證的32種蛋白質(zhì)進行了進一步的分類分析,確定其可歸屬于Najaatra的10種蛋白質(zhì)家族,圖6展示了它們之間的進化關(guān)系。這10種蛋白質(zhì)家族分別是三指毒素(17種)、金屬蛋白酶(4種)、磷脂酶A2(3種)、富含半胱氨酸的分泌蛋白(2種)、肽酶S1(1種)、kunitz肽(1種)、利鈉肽(1種)、5′-核酸酶(1種)、黃素單胺氧化酶家族(1種)和核苷酸焦磷酸酶(1種)。三指毒素是眼鏡蛇毒液中含量最豐富的蛋白質(zhì)家族[24],可大致分為細胞毒素、α-神經(jīng)毒素、κ-神經(jīng)毒素和毒蕈堿毒素[25]。我們共鑒定到12種細胞毒素,這與眼鏡蛇毒液又被歸類為細胞毒性毒液[26]相符合。另一方面,較之我們以前的針對樣品E的分析鑒定工作[14],該工作使用UPLC-MS/MS,使用Swiss-Prot注釋驗證庫和Uniprot注釋驗證和未驗證庫,鑒定到歸屬于Najaatra、Najanaja、Najakaouthia、Najamelanoleuca、Najasputatrix、Najanivea、Najaannulifera的共計15種蛋白質(zhì),此次鑒定到的32種來自Najaatra的蛋白質(zhì)涵蓋了原鑒定到的10種Najaatra蛋白質(zhì)中的7種,但多鑒定出25種蛋白質(zhì),此點歸屬于Nano LC提升靈敏度以及使用較長梯度洗脫程序(90 min)的貢獻。未鑒定到的3種蛋白質(zhì)中,P60304和P80958在本工作中僅歸屬了一條特征肽段,未匹配到E2IU03。

圖5 PRM驗證蛋白質(zhì)的特征肽段提取離子色譜圖Fig.5 Extracted ion chromatograms of unique peptides of proteins by parallel reaction monitoring (PRM)A total of 64 peptides for 32 proteins are shown,where -1 and -2 represent two separate unique peptides.

圖6 來自于5個樣品的32種鑒定蛋白質(zhì)的進化樹Fig.6 Evolution tree of 32 identified proteins in five samples Taking the first row as an example,sp,P01443,N2,3SA4 NAJAT Cytotoxin 4,OS Naja atra,81 AAs,9.1 kDa,pI 9.01 represent the validated protein database,UniProt number of protein,nth protein from Naja atra,function of protein,species source,number of amino acids,relative molecular mass,and isoelectric point,respectively.

3 結(jié)論

本研究采用Nano LC-MS/HRMS法分析鑒定疑似蛇毒樣品中蛋白質(zhì)的物種來源。首先對經(jīng)尺寸排阻色譜分離和胰蛋白酶溶液內(nèi)酶解的樣品進行非靶向采集,提出多次收斂蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫比對的思路,在5個樣品的3個SEC洗脫峰中共鑒定到32種來自Najaatra的蛋白質(zhì)。蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫的逐級收斂結(jié)合嚴格肽段鑒定規(guī)則(PSM、肽段FDR值、特征肽段數(shù)量)有效提高了蛋白質(zhì)的鑒定準確度。然后,采用PRM靶向采集模式結(jié)合肽段理論碎片嚴格閾值的手段對樣品中鑒定到的蛋白質(zhì)進行驗證。最終成功鑒定出5個疑似蛇毒樣品均含有來源于Najaatra的蛇毒。該分析策略可為蛇毒中毒的司法案件鑒定、臨床中毒救治以及蛇毒藥物研發(fā)提供有效的技術(shù)支持。